Species list
1) Abies alba Mill.
2) Achillea collina (Wirtg.) Heimel x Achillea millefolium L.
3) Achillea collina (Wirtg.) Heimerl
4) Achillea collina (Wirtg.) Heimerl / Achillea pratensis Saukel et R. Länger
5) Achillea crithmifolia Waldst. et Kit.
6) Achillea filipendulina Lam.
7) Achillea-Hybride
8) Achillea millefolium L.
9) Achillea millefolium L. subsp. millefolium
10) Achillea millefolium L. x Achillea pannonica Scheele
11) Achillea nobilis L.
12) Achillea pannonica Scheele
13) Achillea pratensis Saukel et R. Länger
14) Achillea ptarmica L.
15) Achillea roseoalba Ehrend.
16) Achillea setacea Waldst. et Kit.
17) Acinos alpinus (L.) Moench
18) Acinos arvensis (Lam.) Dandy
19) Aconitum lycoctonum L. subsp. lycoctonum
20) Aconitum napellus L. subsp. lusaticum Rouy
21) Aconitum plicatum Rchb.
22) Aconitum plicatum Rchb. x Aconitum variegatum L.
23) Aconitum tauricum Wulfen
24) Aconitum tauricum Wulfen x Aconitum variegatum L.
25) Aconitum variegatum L.
26) Aconitum x cammarum L.
27) Aconogonon polystachyum (Meisn.) Small
28) Acorus calamus L.
29) Actaea spicata L.
30) Adonis vernalis L.
31) Adoxa moschatellina L.
32) Aethusa cynapium L.
33) Aethusa cynapium L. subsp. cynapium
34) Agrimonia eupatoria L.
35) Agrimonia procera Wallr.
36) Agrostemma githago L.
37) Agrostis canina L.
38) Agrostis capillaris L.
39) Agrostis gigantea Roth
40) Agrostis schleicheri Jord. et Verl.
41) Agrostis stolonifera L.
42) Agrostis vinealis Schreb.
43) Aira caryophyllea L.
44) Aira caryophyllea L. subsp. caryophyllea
45) Aira praecox L.
46) Ajuga genevensis L.
47) Ajuga pyramidalis L.
48) Ajuga reptans L.
49) Alchemilla filicaulis Buser
50) Alchemilla monticola Opiz
51) Alchemilla splendens H. Christ
52) Alisma lanceolatum With.
53) Alisma plantago-aquatica L.
54) Alliaria petiolata (M. Bieb.) Cavara et Grande
55) Allium atropurpureum Waldst. et Kit.
56) Allium carinatum L. subsp. carinatum
57) Allium carinatum L. subsp. pulchellum (G. Don) Bonnier et Layens
58) Allium lusitanicum Lam.
59) Allium oleraceum L.
60) Allium paradoxum (M. Bieb.) Don
61) Allium roseum L.
62) Allium rotundum L.
63) Allium schoenoprasum L.
64) Allium scorodoprasum L.
65) Allium suaveolens Jacq.
66) Allium ursinum L.
67) Allium victorialis L.
68) Allium vineale L.
69) Alnus glutinosa (L.) Gaertn.
70) Alopecurus myosuroides Huds.
71) Alyssum montanum L.
72) Alyssum montanum L. subsp. gmelinii (Jord. et Fourr.) Thell.
73) Alyssum montanum L. subsp. gmelinii (Jord. et Fourr.) Thell. x Alyssum montanum L. subsp. montanum
74) Alyssum montanum L. subsp. montanum
75) Amaranthus albus L.
76) Amaranthus blitum L.
77) Amaranthus emarginatus Uline et W.L. Bray
78) Amaranthus emarginatus Uline et W.L. Bray subsp. emarginatus
79) Amaranthus emarginatus Uline et W.L. Bray subsp. pseudogracilis (Thell.) Hügin
80) Amaranthus powellii S. Watson
81) Amaranthus retroflexus L.
82) Amelanchier ovalis Medik. subsp. embergeri Favarger et Stearn
83) Amelanchier ovalis Medik. subsp. ovalis
84) Ammophila arenaria (L.) Link
85) Anagallis arvensis L.
86) Anchusa officinalis L.
87) Androsace hausmannii Leyb.
88) Anemonastrum narcissiflorum L.
89) Anemone nemorosa L.
90) Anemone ranunculoides L.
91) Anemone sylvestris L.
92) Angelica archangelica L. subsp. archangelica
93) Angelica sylvestris L.
94) Anthemis arvensis L.
95) Anthemis cotula L.
96) Anthemis tinctoria L.
97) Anthericum liliago L.
98) Anthericum ramosum L.
99) Anthoxanthum nipponicum Honda
100) Anthoxanthum odoratum L.
101) Anthriscus caucalis M. Bieb.
102) Anthriscus cerefolium (L.) Hoffm.
103) Anthriscus cerefolium (L.) Hoffm. var. trichocarpus Neilr.
104) Anthriscus nitidus (Wahlenb.) Hazsl.
105) Anthriscus sylvestris (l.) Hoffm.
106) Anthriscus sylvestris (L.) Hoffm. subsp. stenophyllus (Rouy et E.G. Camus) Briq.
107) Anthyllis vulneraria L.
108) Aphanes australis Rydb.
109) Apium graveolens L.
110) Aquilegia atrata W.D.J. Koch
111) Aquilegia einseleana F.W. Schultz
112) Aquilegia vulgaris L.
113) Arabidopsis arenosa (L.) Lawalrée
114) Arabidopsis arenosa (L.) Lawalrée subsp. arenosa
115) Arabidopsis arenosa (L.) Lawalrée subsp. borbasii (Zapał) Pawł.
116) Arabidopsis halleri (L.) O'Kane et Al-Shehbaz
117) Arabidopsis petraea (L.) V.I. Dorof.
118) Arabidopsis thaliana (L.) Heynh.
119) Arabis alpina L.
120) Arabis bellidifolia Crantz subsp. bellidifolia
121) Arabis ciliata Clairv.
122) Arabis hirsuta (L.) Scop.
123) Arabis nemorensis (Hoffm.) W.D.J. Koch
124) Arabis nemorensis (Hoffm.) W.D.J. Koch x sagittata (Bertol.) DC.
125) Arabis sagittata (Bertol.) DC.
126) Arabis soyeri Reut. et A. Huet subsp. subcoriacea (Gren.) Breistr.
127) Arctium lappa L.
128) Arctium minus (Hill) Bernh.
129) Arctium minus (Hill) Bernh. x Arctium tomentosum Mill.
130) Arctium nemorosum Lej.
131) Arctium tomentosum Mill.
132) Arctostaphylos uva-ursi (L.) Spreng.
133) Aremonia agrimonoides (L.) DC.
134) Arenaria leptoclados (Rchb.) Guss.
135) Arenaria serpyllifolia L.
136) Arenaria serpyllifolia L. subsp. glutinosa (Mert. et W.D.J. Koch) Arcang.
137) Arenaria serpyllifolia L. subsp. serpyllifolia
138) Armeria maritima (Mill.) Willd. subsp. elongata (Hoffm.) Bonnier
139) Armeria maritima (Mill.) Willd. subsp. purpurea (W.D.J. Koch) Á. Löve et D. Löve
140) Arnoseris minima (L.) Schweigg. et Körte
141) Arrhenatherum elatius (L.) J. Presl et C. Presl
142) Artemisia absinthium L.
143) Artemisia campestris L.
144) Artemisia maritima L.
145) Artemisia tournefortiana Rchb.
146) Artemisia verlotiorum Lamotte
147) Artemisia vulgaris L.
148) Arum cylindraceum Gasp.
149) Arum italicum Mill.
150) Arum maculatum L.
151) Asarum europaeum L. subsp. caucasicum (Duch.) Soó
152) Asarum europaeum L. subsp. europaeum
153) Asperula cynanchica L.
154) Asperula neilreichii Beck
155) Asperula tinctoria L.
156) Asplenium adiantum-nigrum L.
157) Asplenium adulterinum Milde
158) Asplenium adulterinum Milde x Asplenium trichomanes L. subsp. quadrivalens D.E. Mey.
159) Asplenium adulterinum Milde x Asplenium viride L.
160) Asplenium billotii F. W. Schultz
161) Asplenium capillus-veneris L.
162) Asplenium ceterach L.
163) Asplenium ceterach L. x Asplenium ruta-muraria L.
164) Asplenium cuneifolium Viv.
165) Asplenium cuneifolium Viv. x Asplenium septentrionale (L.) Hoff.
166) Asplenium fissum Willd.
167) Asplenium fissum Willd. x Asplenium viride Huds.
168) Asplenium foreziense Magnier
169) Asplenium ruta-muraria L.
170) Asplenium ruta-muraria L. x Asplenium septentrionale (L.) Hoffm.
171) Asplenium ruta-muraria L. x Asplenium viride Huds.
172) Asplenium scolopendrium L.
173) Asplenium seelosii Leyb.
174) Asplenium septentrionale (L.) Hoffm.
175) Asplenium-trichomanes-Hybride
176) Asplenium trichomanes L.
177) Asplenium trichomanes L. subsp. hastatum (Christ) S. Jeßen
178) Asplenium trichomanes L. subsp. hastatum (Christ) S. Jeßen x Asplenium trichomanes L. subsp. pachyrachis (H. Christ) Lovis et Reichst.
179) Asplenium trichomanes L. subsp. hastatum (Christ) S. Jeßen x Asplenium trichomanes L. subsp. quadrivalens D.E. Mey.
180) Asplenium trichomanes L. subsp. quadrivalens D.E. Mey.
181) Asplenium trichomanes L. subsp. quadrivalens D. E. Mey x Asplenium trichomanes L. subsp. trichomanes
182) Asplenium trichomanes L. subsp. quadrivalens D.E. Mey. (?) x Asplenium viride Huds.
183) Asplenium trichomanes L. subsp. trichomanes
184) Asplenium viride Huds.
185) Asplenium x alternifolium Wulfen nothosubsp. alternifolium
186) Asplenium x alternifolium Wulfen nothosubsp. heufleri (Reichst.) Aizpuru, Catalan et Salvo
187) Aster alpinus L.
188) Aster amellus L.
189) Astragalus cicer L.
190) Astragalus danicus Retz.
191) Astragalus glycyphyllos L.
192) Astrantia bavarica F.W. Schultz
193) Astrantia major L.
194) Athyrium distentifolium Opiz
195) Athyrium filix-femina (L.) Roth
196) Athyrium filix-femina (L.) Roth x Athyrium distentifolium Opiz
197) Atriplex glabriuscula Edmondston
198) Atriplex laciniata L.
199) Atriplex littoralis L.
200) Atriplex micrantha Ledeb.
201) Atriplex patula L.
202) Atriplex pedunculata L.
203) Atriplex portulacoides L.
204) Atriplex prostrata DC.
205) Atropa bella-donna L.
206) Aurinia saxatilis (L.) Desv.
207) Azolla filiculoides Lam.
208) Ballota nigra L. subsp. meridionalis (Bég.) Bég.
209) Ballota nigra L. subsp. nigra
210) Barbarea vulgaris W.T. Aiton
211) Bartsia alpina L.
212) Bassia hirsuta (L.) Asch.
213) Bellis perennis L.
214) Berula erecta (Huds.) Coville
215) Beta corolliflora Buttler
216) Betula humilis Schrank
217) Betula nana L.
218) Betula pendula Roth
219) Betula pendula Roth x Betula pubescens Ehrh.
220) Betula pubescens Ehrh.
221) Betula pubescens Ehrh. subsp. carpatica (Willd.) Simonk.
222) Betula pubescens Ehrh. subsp. pubescens
223) Betula pubescens ssp. carpatica (Willd.) Simonk
224) Betula verrucosa Ehrh. x Betula pubescens Ehrh.
225) Bidens frondosus L.
226) Bidens tripartitus L.
227) Biscutella laevigata L.
228) Biscutella laevigata L. cf. subsp. subaphylla Mach.-Laur.
229) Biscutella laevigata L. subsp. gracilis Mach.-Laur.
230) Biscutella laevigata L. subsp. guestfalica Mach.-Laur.
231) Biscutella laevigata L. subsp. kerneri Mach.-Laur.
232) Biscutella laevigata L. subsp. laevigata
233) Biscutella laevigata L. subsp. subaphylla Mach.-Laur.
234) Biscutella laevigata L. subsp. tenuifolia (Bluff et Fingerh.) Mach.-Laur.
235) Biscutella laevigata L. subsp. varia (Dumort.) Rouy et Foucaud
236) Bistorta officinalis Delarbre
237) Bolboschoenus maritimus (L.) Palla
238) Brachypodium phoenicoides (L.) Roem. et Schult.
239) Brachypodium pinnatum (L.) P. Beauv.
240) Brachypodium sylvaticum (Huds.) P. Beauv.
241) Brassica napus L. subsp. napus
242) Brassica nigra (L.) W.D.J. Koch
243) Brassica oleracea L. subsp. oleracea
244) Brassica rapa L.
245) Briza media L.
246) Bromus arvensis L.
247) Bromus arvensis L. subsp. arvensis
248) Bromus benekenii (Lange) Trimen
249) Bromus erectus Huds.
250) Bromus incisus R. Otto et H. Scholz
251) Bromus inermis Leyss.
252) Bromus japonicus Thunb.
253) Bromus racemosus L. subsp. lusitanicus (Sales et P.M. Sm.)
254) Bromus ramosus Huds.
255) Bromus sterilis L.
256) Bromus tectorum L.
257) Bryonia alba L.
258) Bryonia dioica Jacq.
259) Buglossoides arvenses (L.) I.M. Johnst. subsp. sibthorpiana (Griseb.) R. Fern.
260) Buglossoides arvensis (L.) I.M. Johnst.
261) Buglossoides purpurocaerulea (L.) I.M. Johnst.
262) Bunium bulbocastanum L.
263) Bupleurum falcatum L.
264) Bupleurum longifolium L.
265) Bupleurum rotundifolium L.
266) Bupleurum tenuissimum L.
267) Butomus umbellatus L.
268) Calamagrostis arundinacea (L.) Roth
269) Calamagrostis arundinacea (L.) Roth x Calamagrostis canescens (F.H. Wigg.) Roth
270) Calamagrostis canescens (F.H. Wigg.) Roth
271) Calamagrostis epigejos (L.) Roth
272) Calamagrostis phragmitoides Hartm.
273) Calamagrostis pseudophragmites (Haller f.) Koeler
274) Calamagrostis rivalis H. Scholz
275) Calamagrostis stricta (Timm) Koehler
276) Calamagrostis varia (Schrad.) Host
277) Calamagrostis villosa (Chaix) J.F. Gmelin
278) Calamintha menthifolia Host
279) Calendula arvensis L.
280) Calla palustris L.
281) Callitriche brutia Petagna
282) Callitriche cophocarpa Sendtn.
283) Callitriche cophocarpa Sendtn. x Callitriche platycarpa Kütz.
284) Callitriche hamulata W.D.J. Koch
285) Callitriche obtusangula Le Gall
286) Callitriche palustris L.
287) Callitriche platycarpa Kütz.
288) Callitriche stagnalis Scop.
289) Caltha palustris L.
290) Calystegia pulchra Brummit et Heywood
291) Calystegia sepium (L.) R. Br.
292) Calystegia silvatica (Kit.) Griseb.
293) Campanula barbata L.
294) Campanula baumgartenii Becker
295) Campanula baumgartenii Becker x Campanula rotundifolia L.
296) Campanula bononiensis L.
297) Campanula cervicaria L.
298) Campanula cochleariifolia Lam.
299) Campanula gentilis Kovanda
300) Campanula persicifolia L.
301) Campanula pulla L.
302) Campanula rapunculoides L.
303) Campanula rapunculus L.
304) Campanula rotundifolia L.
305) Campanula scheuchzeri Vill.
306) Campanula trachelium L.
307) Capsella bursa-pastoris (L.) Medik.
308) Cardamine amara L. subsp. amara
309) Cardamine amara L. subsp. austriaca Marhold
310) Cardamine dentata Schult.
311) Cardamine flexuosa With.
312) Cardamine hirsuta L.
313) Cardamine occulta Hornem.
314) Cardamine pratensis L.
315) Cardamine udicola Jord.
316) Carduus acanthoides L. subsp. acanthoides
317) Carduus crispus L.
318) Carduus crispus L. subsp. crispus
319) Carduus defloratus L. subsp. defloratus
320) Carduus nutans L.
321) Carex acuta L.
322) Carex acutiformis Ehrh.
323) Carex alba Scop.
324) Carex aquatilis Wahlenb.
325) Carex arenaria L.
326) Carex bohemica Schreb.
327) Carex brachystachys Schrank
328) Carex brizoides L.
329) Carex buxbaumii Wahlenb.
330) Carex capillaris L.
331) Carex cespitosa L.
332) Carex colchica J. Gay
333) Carex davalliana Sm.
334) Carex demissa Hornem.
335) Carex depauperata With.
336) Carex digitata L.
337) Carex distans L.
338) Carex disticha Huds.
339) Carex echinata Murray
340) Carex elata All. subsp. elata
341) Carex ericetorum Pollich
342) Carex extensa Good.
343) Carex ferruginea Scop.
344) Carex firma Host
345) Carex flava L.
346) Carex frigida All.
347) Carex fuliginosa Schkuhr
348) Carex humilis Leyss.
349) Carex laevigata Sm.
350) Carex lasiocarpa Ehrh.
351) Carex lepidocarpa Tausch
352) Carex leporina L.
353) Carex limosa L.
354) Carex montana L.
355) Carex mucronata All.
356) Carex muricata L. / Carex pairae F.W. Schultz
357) Carex nigra (L.) Reichard
358) Carex ornithopoda Willd. subsp. ornithopoda
359) Carex pairae F.W. Schultz
360) Carex pallescens L.
361) Carex panicea L.
362) Carex paniculata L.
363) Carex pilosa Scop.
364) Carex pilulifera L.
365) Carex praecox Schreb.
366) Carex praecox Schreb. subsp. intermedia (Čelak.) W. Schultze-Motel
367) Carex praecox Schreb. subsp. praecox
368) Carex pulicaris L.
369) Carex sempervirens Vill.
370) Carex spicata Huds.
371) Carex tomentosa L.
372) Carex umbrosa Host
373) Carex vesicaria L.
374) Carex vulpina L.
375) Carlina acaulis L. subsp. acaulis
376) Carlina acaulis L. subsp. caulescens (Lam.) Schübl. et G. Martens
377) Carlina vulgaris L.
378) Carpinus betulus L.
379) Centaurea angustifolia (DC.) Gremli
380) Centaurea angustifolia (DC.) Gremli / Centaurea jacea L.
381) Centaurea diffusa Lam. x Centaurea stoebe L.
382) Centaurea jacea L.
383) Centaurea jacea L. x Centaurea nemoralis Jord.
384) Centaurea jacea L. x Centaurea pseudophrygia C.A. Mey.
385) Centaurea nemoralis Jord.
386) Centaurea nemoralis Jord. / Centaurea nigra L.
387) Centaurea nigrescens Willd.
388) Centaurea pseudophrygia C.A. Mey.
389) Centaurea scabiosa L.
390) Centaurea scabiosa L. subsp. scabiosa
391) Centaurea stenolepis A. Kern.
392) Centaurea stoebe L. subsp. australis (A. Kern.) Greuter
393) Centaurea stoebe L. subsp. australis (A. Kern.) Greuter x Centaurea stoebe L. subsp. stoebe
394) Centaurea stoebe L. subsp. stoebe
395) Centaurium erythraea Rafn
396) Centaurium littorale (Turner) Gilmour subsp. littorale
397) Centaurium pulchellum (Sw.) Druce
398) Cephalanthera damasonium (Mill.) Druce
399) Cephalanthera rubra (L.) Rich.
400) Cerastium arvense L. subsp. arvense
401) Cerastium diffusum Pers.
402) Cerastium glomeratum Thuill.
403) Cerastium holosteoides Fr.
404) Cerastium lucorum (Schur) Möschl
405) Cerastium semidecandrum L.
406) Ceratocapnos claviculata (L.) Lidén
407) Ceratophyllum submersum L.
408) Cerinthe minor L.
409) Chaenorhinum minus (L.) Lange
410) Chaerophyllum aromaticum L.
411) Chaerophyllum aureum L.
412) Chaerophyllum bulbosum L.
413) Chaerophyllum byzantinum Boiss.
414) Chaerophyllum hirsutum L.
415) Chaerophyllum temulum L.
416) Chaerophyllum villarsii W.D.J. Koch
417) Chelidonium majus L.
418) Chenopodium album L.
419) Chenopodium ficifolium Sm.
420) Chenopodium lobodontum H. Scholz
421) Chenopodium opulifolium W.D.J. Koch et Ziz
422) Chenopodium probstii Aellen
423) Chenopodium striatiforme J. Murr
424) Chenopodium strictum Roth
425) Chenopodium suecicum J. Murr
426) Chondrilla juncea L.
427) Cicendia filiformis (L.) Delarbre
428) Cicerbita alpina (L.) Wallr.
429) Cichorium intybus L.
430) Circaea alpina L. x Circaea lutetiana L.
431) Cirsium acaule Scop.
432) Cirsium arvense (L.) Scop.
433) Cirsium canum (L.) All.
434) Cirsium oleraceum (L.) Scop.
435) [Cirsium oleraceum (L.) Scop. x Cirsium palustre (L.) Scop.] x Cirsium oleraceum (L.) Scop. / Cirsium palustre (L.) Scop.
436) Cirsium palustre (L.) Scop.
437) Cirsium spinosissimum (L.) Scop.
438) Cirsium vulgare (Savi) Ten.
439) Cladium mariscus (L.) Pohl
440) Claytonia perfoliata Willd.
441) Clinopodium vulgare L.
442) Cochlearia anglica L.
443) Cochlearia danica L.
444) Cochlearia pyrenaica DC.
445) Cochlearia x bavarica Vogt
446) Collomia grandiflora Lindl.
447) Comarum palustre L.
448) Conium maculatum L.
449) Conyza canadensis (L.) Cronqist
450) Conyza sumatrensis (Retz.) E. Walker
451) Cornus sanguinea L. subsp. hungarica (Kárpáti) Soó
452) Cornus suecica L.
453) Coronilla coronata L.
454) Coronilla vaginalis Lam.
455) Corydalis intermedia (L.) Mérat
456) Corydalis solida (L.) Clairv.
457) Corylus avellana L.
458) Corynephorus canescens (L.) P. Beauv.
459) Cotoneaster integerrimus Medik.
460) Crambe maritima L.
461) Crataegus laevigata (Poir.) DC.
462) Crataegus x macrocarpa Hegetschw.
463) Crepis aurea (L.) Cass.
464) Crepis biennis L.
465) Crepis capillaris (L.) Wallr.
466) Crepis mollis (Jacq.) Asch.
467) Crepis tectorum L.
468) Crepis terglouensis (Hacq.) A. Kern.
469) Crocus albiflorus Schult.
470) Cuscuta europaea L.
471) Cyanus segetum Hill
472) Cyanus triumfettii (All.) Á. Löve et D. Löve
473) Cyclamen purpurascens Mill.
474) Cynoglossum germanicum Jacq.
475) Cynoglossum officinale L.
476) Cyrtomium fortunei J. Smith var. clivicola (Makino) Tagawa
477) Cystopteris dickieana R. Sim
478) Cystopteris fragilis (L.) Bernh.
479) Cystopteris sudetica A. Braun et Milde
480) Cytisus scoparius (L.) Link subsp. scoparius
481) Dactylis glomerata L. subsp. glomerata
482) Dactylis glomerata L. subsp. slovenica (Domin) Domin
483) Dactylis polygama Horv.
484) Dactylorhiza curvifolia (Nyl.) Czerep.
485) Dactylorhiza fuchsii (Druce) Soó
486) Dactylorhiza fuchsii (Druce) Soó subsp. fuchsii
487) Dactylorhiza fuchsii (Druce) Soó subsp. psychrophila (Schltr.) Holub
488) Dactylorhiza fuchsii (Druce) Soó x Dactylorhiza curvifolia (Nyl.) Czerep.
489) Dactylorhiza incarnata (L.) Soó
490) Dactylorhiza incarnata (L.) Soó subsp. incarnata
491) Dactylorhiza incarnata (L.) Soó subsp. ochroleuca (Boll) P.F. Hunt et Summerh.
492) Dactylorhiza incarnata (L.) Soó x Dactylorhiza maculata (L.) Soó
493) Dactylorhiza incarnata (L.) Soó x Dactylorhiza majalis (Rchb.) P.F. Hunt et Summerh.
494) Dactylorhiza maculata (L.) Soó
495) Dactylorhiza maculata (L.) Soó subsp. maculata
496) Dactylorhiza majalis (Rchb.) P.F. Hunt et Summerh. subsp. brevifolia (Bisse) Senghas
497) Dactylorhiza majalis (Rchb.) P.F. Hunt et Summerh. subsp. majalis
498) Dactylorhiza majalis (Rchb.) P.F. Hunt et Summer. x Dactylorhiza incarnata (L.) Soó
499) Dactylorhiza sphagnicola (Höppner) Soó
500) Dactylorhiza traunsteineri (Rchb.) Soó
501) Danthonia decumbens (L.) DC.
502) Danthonia decumbens (L.) DC. subsp. decipiens Bässler
503) Danthonia decumbens (L.) DC. subsp. decumbens
504) Daucus carota L. subsp. carota
505) Deschampsia cespitosa (L.) P. Beauv.
506) Deschampsia flexuosa (L.) Trin.
507) Deschampsia littoralis (Gaudin) Reut.
508) Deschampsia media (Gouan) Roem. et Schult.
509) Deschampsia setacea (Huds.) Hack.
510) Deschampsia wibeliana (Sond.) Parl.
511) Dianthus armeria L.
512) Dianthus carthusianorum L.
513) Dianthus deltoides L.
514) Dianthus gratianopolitanus Vill.
515) Dianthus superbus L. subsp. superbus
516) Dianthus superbus L. subsp. sylvestris Čelak.
517) Digitalis purpurea L.
518) Digitaria ischaemum (Schreb.) Muhl.
519) Digitaria sanguinalis (L.) Scop.
520) Diphasiastrum alpinum (L.) Holub
521) Diphasiastrum alpinum (L.) Holub x Diphasiastrum issleri (Rouy) Holub
522) Diphasiastrum alpinum (L.) Holub x Diphasiastrum oellgaardii Stoor et al.
523) Diphasiastrum complanatum (L.) Holub
524) Diphasiastrum complanatum (L.) Holub x Diphasiastrum issleri (Rouy) Holub
525) Diphasiastrum issleri (Rouy) Holub
526) Diphasiastrum oellgaardii Stohr et al.
527) Diphasiastrum tristachyum (Pursh) Holub
528) Diphasiastrum zeilleri (Rouy) Holub
529) Diplotaxis muralis (L.) DC.
530) Diplotaxis tenuifolia (L.) DC.
531) Dipsacus fullonum L.
532) Dipsacus pilosus L.
533) Doronicum columnae Ten.
534) Dorycnium herbaceum Vill.
535) Draba aizoides L.
536) Draba fladnitzensis Wulfen
537) Draba muralis L.
538) Draba praecox Stev. / Draba spathulata (Láng) Sadler / Draba verna L.
539) Draba sauteri Hoppe
540) Draba siliquosa M. Bieb.
541) Draba tomentosa Clairv.
542) Drosera anglica Huds.
543) Drosera intermedia Hayne
544) Drosera rotundifolia L.
545) Drymocallis rupestris (L.) Soják
546) Dryopteris affinis (Lowe) Fraser-Jenk.
547) Dryopteris affinis (Lowe) Fraser-Jenk. subsp. affinis
548) Dryopteris affinis (Lowe) Fraser-Jenk. subsp. affinis var. affinis
549) Dryopteris affinis (Lowe) Fraser-Jenk. subsp. affinis var. disjuncta (Fomin) Fraser-Jenk.
550) Dryopteris affinis (Löwe) Fraser-Jenk. subsp. affinis var. disjuncta (Fomin) Fraser-Jenk. x Dryopteris filix-mas (L.) Schott
551) Dryopteris affinis (Lowe) Fraser-Jenk. subsp. affinis x Dryopteris filix-mas (L.) Schott
552) Dryopteris affinis (Lowe) Fraser-Jenk. subsp. punctata Fraser-Jenk.
553) Dryopteris affinis (Lowe) Fraser-Jenk. subsp. punctata Fraser-Jenk. x Dryopteris filix-mas (L.) Schott
554) Dryopteris affinis (Lowe) Fraser-Jenk. x Dryopteris filix-mas (L.) Schott
555) Dryopteris borreri (Newman) Oberholzer et Tavel
556) Dryopteris borreri (Newman) Oberholzer et Tavel / Dryopteris lacunosa S. Jessen et al.
557) Dryopteris borreri (Newman) Oberholzer et Tavel x Dryopteris filix-mas (L.) Schott
558) Dryopteris cambrensis (Fraser-Jenk.) Breitel et W. Buck subsp. insubrica (Fraser-Jenk.) Fraser-Jenk.
559) Dryopteris cambrensis (Fraser-Jenk.) Breitel et W. Buck subsp. insubrica (Fraser-Jenk.) Fraser-Jenk. x Dryopteris filix-mas (L.) Schott
560) Dryopteris carthusiana (Vill.) H.P. Fuchs
561) Dryopteris carthusiana (Vill.) H.P. Fuchs x Dryopteris dilatata (Hoffm.) A. Gray
562) Dryopteris carthusiana (Vill.) H.P. Fuchs x Dryopteris expansa (C. Presl) Fraser-Jenk. et Jermy
563) Dryopteris carthusiana (Vill.) H.P. Fuchs x Dryopteris filix-mas (L.) Schott
564) Dryopteris carthusiana (Vill.) H.P. Fuchs x Dryopteris remota (Döll) Druce
565) Dryopteris dilatata (Hoffm.) A. Gray
566) Dryopteris dilatata (Hoffm.) A. Gray x Dryopteris expansa (C. Presl) Fraser-Jenk. et Jermy
567) Dryopteris expansa (C. Presl) Fraser-Jenk. et Jermy
568) Dryopteris filix-mas (L.) Schott
569) Dryopteris filix-mas (L.) Schott x Dryopteris pseudodisjuncta (Fraser-Jenk.) Fraser-Jenk.
570) Dryopteris lacunosa S. Jess., Bujnoch, Zenner et Ch. Stark
571) Dryopteris oreades Fomin
572) Dryopteris pseudodisjuncta (Fraser-Jenk.) Fraser-Jenk.
573) Dryopteris remota (Döll) Druce
574) Dryopteris spec.
575) Echinochloa crus-galli (L.) P. Beauv.
576) Echinops sphaerocephalus L.
577) Echium vulgare L.
578) Eleocharis mamillata (H. Lindb.) H. Lindb. subsp. austriaca (Hayek) Strandh.
579) Eleocharis mamillata (H. Lindb.) H. Lindb. subsp. mamillata
580) Eleocharis palustris (L.) Roem. et Schult.
581) Eleocharis parvula (Roem. et Schult.) Bluff et al.
582) Eleocharis uniglumis (Link) Schult.
583) Eleocharis uniglumis (Link) Schult. x Eleocharis vulgaris À. Löve et D. Löve
584) Eleocharis vulgaris Á. Löve et D. Löve
585) El‌y‌m‌u‌s‌ a‌r‌e‌n‌‌os‌u‌s‌ (Spenn.) Conert
586) Elymus repens (L.) Gould subsp. repens
587) Empetrum hermaphroditum Hagerup
588) Empetrum nigrum L.
589) Epilobium brachycarpum C. Presl
590) Epilobium montanum L.
591) Epilobium obscurum Schreb.
592) Epilobium palustre L.
593) Epipactis atrorubens (Hoffm.) Besser
594) Equisetum hyemale L.
595) (Equisetum hyemale L. x Equisetum ramosissimum Desf.) x Equisetum hyemale L.
596) Equisetum hyemale L. x Equisetum ramosissimum Desf. x Equisetum variegatum Schleich.
597) (Equisetum hyemale L. x Equisetum variegatum Schleich.) x Equisetum hyemale L.
598) Equisetum ramosissimum Desf.
599) Equisetum ramosissimum Desf. x Equisetum variegatum Schleich.
600) Equisetum variegatum Schleich.
601) Equisetum x moorei Newman
602) Equisetum x trachyodon (A. Braun) W.D.J. Koch
603) Eragrostis albensis H. Scholz
604) Erigeron acris L.
605) Erigeron acris L. subsp. acris
606) Erigeron alpinus L.
607) Erigeron annuus (L.) Desf.
608) Erigeron glabratus Bluff et Fingerh.
609) Erigeron neglectus A. Kern.
610) Erigeron uniflorus L.
611) Eriophorum latifolium L.
612) Eriophyllum lanatum (Pursh) Forbes
613) Erodium cicutarium (L.) L'Hér.
614) Erodium lebelii Jord.
615) Erucastrum gallicum (Willd.) O.E. Schulz
616) Eryngium campestre L.
617) Eryngium maritimum L.
618) Eryngium planum L.
619) Erysimum cheiranthoides L.
620) Erysimum crepidifolium Rchb.
621) Erysimum odoratum Ehrh.
622) Erysimum repandum L.
623) Erysimum virgatum Roth
624) Euonymus europaeus L.
625) Euonymus latifolius (L.) Mill.
626) Eupatorium cannabinum L.
627) Euphorbia cyparissias L.
628) Euphorbia cyparissias L. x Euphorbia esula L.
629) Euphorbia dulcis L.
630) Euphorbia esula L.
631) Euphorbia esula L. x Euphorbia pseudovirgata (Schur) Soó
632) Euphorbia exigua L.
633) Euphorbia helioscopia L.
634) Euphorbia megapolitana Henker et Kiesewetter
635) Euphorbia peplus L.
636) Euphorbia pseudovirgata (Schur) Soó
637) Euphorbia verrucosa L.
638) Euphorbia waldsteinii (Soják) Czerep.
639) Euphrasia nemorosa (Pers.) Wallr.
640) Euphrasia officinalis L. subsp. rostkoviana (Hayne) F. Towns.
641) Euphrasia stricta J.F. Lehm.
642) Fagus sylvatica L.
643) Falcaria vulgaris Bernh.
644) Fallopia convolvulus (L.) Á. Löve
645) Fallopia japonica (Houtt.) Ronse Decr.
646) Fallopia japonica (Houtt.) Ronse Decr. x Fallopia sachalinensis (F. Schmidt) Ronse Decr.
647) Fallopia sachalinensis (F. Schmidt) Ronse Decr.
648) Festuca albensis M. Toman
649) Festuca amethystina L.
650) Festuca amethystina L. subsp. amethystina
651) Festuca amethystina L. subsp. ritschlii (Hack.) Markgr.-Dann.
652) Festuca arundinacea Schreb.
653) Festuca arundinacea Schreb. subsp. arundinacea
654) Festuca brevipila R. Tracey
655) Festuca csikhegyensis Simonk.
656) Festuca duvalii (St.-Yves) Stohr
657) Festuca filiformis Pourr.
658) Festuca gigantea (L.) Vill.
659) Festuca heteromalla Pourr.
660) Festuca heteropachys (St.-Yves) Auquier
661) Festuca heterophylla Lam.
662) Festuca nigrescens Lam.
663) Festuca norica (Hack.) K. Richt.
664) Festuca ovina L. subsp. guestfalica (Rchb.) K. Richt.
665) Festuca ovina L. subsp. ovina
666) Festuca ovina L. x Festuca pallens Host
667) Festuca ovina L. x Festuca polesica Zapał.
668) Festuca pallens Host
669) Festuca patzkei Markgr.-Dann.
670) Festuca polesica Zapał.
671) Festuca pratensis Huds.
672) Festuca psammophila (Čelak.) Fritsch
673) Festuca pulchra Schur
674) Festuca pulveridolomiana Höcker et T. Gregor
675) Festuca rhenana Korneck et T. Gregor
676) Festuca rubra L.
677) Festuca rubra L. subsp. arenaria (Osbeck) F. Aresch.
678) Festuca rubra L. subsp. juncea (Hack.) K. Richt.
679) Festuca rubra L. subsp. litoralis (G. Mey.) Auquier
680) Festuca rubra L. subsp. rubra
681) Festuca rupicola Heuff.
682) Festuca sp.
683) Festuca trichophylla (Gaudin) K. Richter
684) Festuca valesiaca Gaudin
685) Ficaria calthifolia Rchb.
686) Ficaria verna Huds.
687) Filago minima (Sm.) Pers.
688) Filipendula ulmaria (L.) Maxim.
689) Filipendula vulgaris Moench
690) Fourraea alpina (L.) Greuter et Burdet
691) Fragaria moschata Weston
692) Fragaria vesca L.
693) Fragaria vesca L. x Fragaria viridis Weston
694) Fragaria viridis Weston
695) Frangula alnus Mill.
696) Fumaria officinalis L.
697) Fumaria schleicheri Soy.-Will.
698) Fumaria vaillantii Loisel.
699) Fumaria wirtgenii W.D.J. Koch
700) Gagea lutea (L.) Ker Gawl.
701) Gagea minima (L.) Ker Gawl.
702) Gagea pratensis (Pers.) Dumort.
703) Gagea spathacea (Hayne) Salisb.
704) Gagea villosa (M. Bieb.) Sweet
705) Gagea x pomeranica R. Ruthe
706) Galeobdolon argentatum Smejkal
707) Galeobdolon argentatum Smejkal x Galeobdolon luteum Huds.
708) Galeobdolon argentatum Smejkal x Galeobdolon montanum (Pers.) Rchb.
709) Galeobdolon flavidum (F. Herm.) Holub
710) Galeobdolon luteum Huds.
711) Galeobdolon montanum (Pers.) Rchb.
712) Galeopsis bifida Boen.
713) Galeopsis segetum Neck.
714) Galeopsis speciosa Mill.
715) Galinsoga quadriradiata Ruiz et Pav.
716) Galium album Mill.
717) Galium album Miller / Galium mollugo L.
718) Galium album Mill. subsp. pycnotrichum (Heinr. Braun) O. Schwarz
719) Galium album Mill. x Galium verum L.
720) Galium anisophyllon Vill.
721) Galium aparine L.
722) Galium aristatum L.
723) Galium aristatum L. x Galium sylvaticum L.
724) Galium boreale L.
725) Galium elongatum C. Presl
726) Galium elongatum C. Presl / Galium palustre L.
727) Galium glaucum L.
728) Galium intermedium Schult.
729) Galium megalospermum All.
730) Galium mollugo L.
731) Galium noricum Ehrend.
732) Galium palustre L.
733) Galium pumilum Murray
734) Galium rotundifolium L.
735) Galium saxatile L.
736) Galium sylvaticum L.
737) Galium tricornutum Dandy
738) Galium truniacum (Ronniger) Wettst.
739) Galium uliginosum L.
740) Galium valdepilosum H. Braun
741) Galium verum L.
742) Galium wirtgenii F.W. Schultz
743) Genista germanica L.
744) Gentiana verna L.
745) Gentianella aspera (Hegetschw. et Heer) Skalicky et al.
746) Gentianella germanica (Willd.) Börner
747) Geranium bohemicum L.
748) Geranium columbinum L.
749) Geranium dissectum L.
750) Geranium divaricatum Ehrh.
751) Geranium lucidum L.
752) Geranium molle L.
753) Geranium palustre L.
754) Geranium phaeum L.
755) Geranium pratense L.
756) Geranium purpureum Vill.
757) Geranium purpureum Vill. x Geranium robertianum L.
758) Geranium pusillum Burm. f.
759) Geranium pyrenaicum Burm. f.
760) Geranium reflexum L.
761) Geranium robertianum L.
762) Geranium rotundifolium L.
763) Geranium sibiricum L.
764) Glaux maritima L.
765) Glebionis segetum (L.) Fourr.
766) Glechoma hederacea L.
767) Globularia bisnagarica L.
768) Globularia cordifolia L.
769) Globularia nudicaulis L.
770) Gnaphalium norvegicum Gunnerus
771) Gnaphalium supinum L.
772) Gnaphalium sylvaticum L.
773) Gnaphalium uliginosum L.
774) Gymnadenia conopsea (L.) R. Br.
775) Gymnadenia densiflora (Wahlenb.) K. Richt.
776) Helianthemum canum (L.) Baumg.
777) Helianthemum nummularium (L.) Mill.
778) Helianthemum nummularium (L.) Mill. subsp. obscurum (Wahlenb.) Holub
779) Helianthemum nummullarium (L.) Mill. subsp. glabrum (Koch) Wilczek
780) Helichrysum arenarium (L.) Moench
781) Helictotrichon pratense (L.) Besser
782) Helictotrichon pubescens (Huds.) Pilg.
783) Helictotrichon pubescens (Huds.) Pilg. subsp. pubescens
784) Helminthotheca echioides (l.) Holub
785) Helosciadium inundatum (L.) W.D.J. Koch
786) Heracleum sphondylium L.
787) Heracleum sphondylium L. subsp. sphondylium
788) Hieracium alpinum L.
789) Hieracium bifidum Hornem.
790) Hieracium bupleuroides C.C. Gmel.
791) Hieracium caesium (Fr.) Fr.
792) Hieracium dentatum Hoppe
793) Hieracium dollineri Neilr.
794) Hieracium franconicum (Griseb.) Zahn
795) Hieracium glabratum Hoppe
796) Hieracium glaucinum Jord.
797) Hieracium glaucum All.
798) Hieracium harzianum Zahn
799) Hieracium humile Jacq.
800) Hieracium hypochoeroides Gibson
801) Hieracium laevigatum Willd.
802) Hieracium leucophaeum Gren. et Godron
803) Hieracium lycopifolium Froel.
804) Hieracium maculatum Schrank
805) Hieracium mixtum Froel.
806) Hieracium murorum L.
807) Hieracium nigrescens Willd.
808) Hieracium obscurisquamum (Zahn) Schuhwerk
809) Hieracium pallescens Waldst. et Kit.
810) Hieracium pilosum Froel.
811) Hieracium porrectum Fr.
812) Hieracium pseudocorymbosum Gremli
813) Hieracium sabaudum L.
814) Hieracium saxifragum Fr.
815) Hieracium schmidtii Tausch
816) Hieracium scorzonerifolium Vill.
817) Hieracium subspeciosum Prantl
818) Hieracium umbellatum L.
819) Hieracium umbrosum Jord.
820) Hieracium valdepilosum Vill.
821) Hierochloë australis (Schrad.) Roem. et Schult.
822) Hierochloë hirta (Schrank) Borbás subsp. hirta
823) Hierochloë hirta (Schrank) Borbás subsp. praetermissa G. Weim.
824) Hierochloë odorata (L.) P. Beauv.
825) Hierochloë odorata (L.) P. Beauv. subsp. odorata
826) Hippophaë rhamnoides L. subsp. rhamnoides
827) Holcus lanatus L.
828) Holcus mollis L.
829) Holosteum umbellatum L.
830) Homogyne alpina (L.) Cass.
831) Honckenya peploides (L.) Ehrh.
832) Hordelymus europaeus (L.) Harz
833) Hordeum murinum L.
834) Hordeum murinum L. subsp. leporinum (Link) Arcang.
835) Hordeum murinum L. subsp. murinum
836) Hornungia procumbens (L.) Hayek
837) Hottonia palustris L.
838) Hylotelephium maximum (L.) Holub
839) Hylotelephium maximum (L.) Holub / Hylotelephium telephium (L.) H. Ohba / Hylotelephium vulgare (L.) Holub
840) Hylotelephium telephium (L.) H. Ohba
841) Hylotelephium vulgare (Haw.) Holub
842) Hypericum hirsutum L.
843) Hypericum maculatum Crantz
844) Hypericum maculatum Crantz subsp. maculatum
845) Hypericum maculatum Crantz subsp. obtusiusculum (Tourlet) Hayek
846) Hypericum maculatum Crantz subsp. obtusiusculum (Tourlet) Hayek / Hypericum x desetangsii Lamotte
847) Hypericum maculatum Crantz x Hypericum perforatum L.
848) Hypericum montanum L.
849) Hypericum perforatum L.
850) Hypericum perforatum L. subsp. perforatum
851) Hypericum tetrapterum Fr.
852) Hypochaeris glabra L.
853) Hypochaeris maculata L.
854) Hypochaeris radicata L.
855) Hypochaeris uniflora Vill.
856) Impatiens capensis Meerb.
857) Impatiens parviflora DC.
858) Inula conyzae (Griess.) DC.
859) Inula germanica L.
860) Inula hirta L.
861) Iris pseudacorus L.
862) Iris sibirica L.
863) Isatis tinctoria L.
864) Isolepis fluitans (L.) R. br.
865) Isolepis setacea (L.) R. Br.
866) Jasione montana L.
867) Juncus acutiflorus Hoffm.
868) Juncus acutiflorus Hoffm. x Juncus articulatus L.
869) Juncus alpinoarticulatus Chaix
870) Juncus anceps Laharpe
871) Juncus articulatus L.
872) Juncus bufonius L.
873) Juncus bulbosus L.
874) Juncus conglomeratus L.
875) Juncus effusus L.
876) Juncus filiformis L.
877) Juncus gerardii Loesel.
878) Juncus maritimus Lam.
879) Juncus sphaerocarpus Nees
880) Juncus squarrosus L.
881) Knautia arvensis (L.) J.M. Coult.
882) Knautia dipsacifolia Kreutzer
883) Knautia dipsacifolia Kreutzer subsp. dipsacifolia
884) Knautia dipsacifolia Kreutzer subsp. gracilis (Szabó) Ehrend.
885) Knautia serpentinicola Kolář et al.
886) Koeleria glauca (Schrad.) DC.
887) Koeleria grandis Gorski
888) Koeleria macrantha (Ledeb.) Schult.
889) Koeleria pyramidata (Lam.) P. Beauv.
890) Koeleria vallesiana (Honck.) Gaudin ssp. vallesiana
891) Lactuca quercina L.
892) Lactuca serriola L.
893) Lamium hybridum Vill.
894) Lapsana communis L. subsp. communis
895) Lathyrus aphaca L.
896) Lathyrus japonicus Willd. subsp. maritimus (L.) P.W. Ball
897) Lathyrus linifolius (Reichard) Bäßler
898) Lathyrus nissolia L.
899) Lathyrus palustris L.
900) Lathyrus pratensis L.
901) Lathyrus sativus L.
902) Lemna gibba L.
903) Lemna minor L.
904) Lemna trisulca L.
905) Leontodon hispidus L.
906) Leontodon hispidus L. subsp. dubius (Hoppe) Pawłowska
907) Leontodon hispidus L. subsp. hispidus
908) Leontodon hispidus L. subsp. hyoseroides (Rchb.) J. Murr
909) Leontodon saxatilis Lam.
910) Leonurus cardiaca L.
911) Leonurus cardiaca L. subsp. cardiaca
912) Leonurus cardiaca L. subsp. villosus (D'Urv.) Hyl.
913) Lepidium campestre (L.) W.T. Aiton
914) Lepidium densiflorum Schrad.
915) Lepidium heterophyllum Benth.
916) Lepidium latifolium L.
917) Lepidium ruderale L.
918) Lepidium virginicum L.
919) Leucanthemopsis alpina (L.) Heywood
920) Leucanthemum adustum (W.D.J. Koch) Gremli
921) Leucanthemum halleri (Vitman) Duccomun
922) Leucanthemum ircutianum DC.
923) Leucanthemum maximum (Ramond) DC.
924) Leucanthemum vulgare (Vaill.) Lam.
925) Ligularia przewalskii (Maxim.) Diels
926) Limonium gerberi Soldano
927) Limonium vulgare Mill.
928) Linaria vulgaris Mill.
929) Linum alpinum Jacq.
930) Linum austriacum L.
931) Linum catharticum L.
932) Linum leonii F.W. Schultz
933) Linum perenne L.
934) Listera ovata (L.) R. Br.
935) Lithospermum officinale L.
936) Littorella uniflora (L.) Asch.
937) Lobelia dortmanna L.
938) Lonicera periclymemum L.
939) Lotus corniculatus L.
940) Lotus pedunculatus Cav.
941) Lotus tenuis Willd.
942) Luzula alpina Hoppe
943) Luzula campestris (L.) DC.
944) Luzula congesta (Thuill.) Lej.
945) Luzula glabrata (Hoppe) Desv.
946) Luzula luzulina (Vill.) Racib.
947) Luzula luzuloides (Lam.) Dandy et Wilmott
948) Luzula multiflora (Ehrh.) Lej.
949) Luzula nivea (L.) DC.
950) Luzula pallescens Sw.
951) Luzula pilosa (L.) Willd.
952) Luzula sudetica (Willd.) Schult.
953) Luzula sylvatica (Huds.) Gaudin
954) Luzula sylvatica (Huds.) Gaudin subsp. sieberi (Tausch) K. Richter
955) Luzula sylvatica (Huds.) Gaudin subsp. sylvatica
956) Lychnis flos-cuculi L.
957) Lychnis viscaria L.
958) Lycopus europaeus L.
959) Lysimachia nemorum L.
960) Lysimachia nummularia L.
961) Lysimachia punctata L.
962) Lysimachia thyrsiflora L.
963) Lysimachia vulgaris L.
964) Lythrum salicaria L.
965) Malva moschata L.
966) Malva sylvestris L. subsp. sylvestris
967) Matricaria discoidea DC.
968) Medicago arabica (L.) Huds.
969) Medicago falcata L.
970) Melampyrum cristatum L.
971) Melampyrum nemorosum L.
972) Melica altissima L.
973) Melica ciliata L. subsp. glauca (F.W. Schultz) K. Richt.
974) Melica ciliata L. x Melica transsilvanica Schur
975) Melica transsilvanica Schur
976) Melica uniflora Retz.
977) Melilotus albus Medik.
978) Melilotus altissimus Thuill.
979) Melilotus officinalis (L.) Lam.
980) Melissa officinalis L.
981) Mentha aquatica L.
982) Mentha aquatica L. x Mentha longifolia (L.) L.
983) Mentha aquatica L. x Mentha spicata L.
984) Mentha aquatica L. x Mentha x verticillata L.
985) Mentha arvensis L.
986) Mentha arvensis L. subsp. arvensis
987) Mentha arvensis L. subsp. austriaca (Jacq.) Briq.
988) Mentha arvensis L. subsp. parietariifolia (Becker) Briq.
989) Mentha arvensis L. x Mentha aquatica L.
990) Mentha arvensis L. x Mentha spicata L.
991) Mentha arvensis L. x Mentha x verticillata L.
992) Mentha longifolia (L.) L.
993) Mentha longifolia (L.) L. x Mentha spicata L
994) Mentha longifolia (L.) L. x Mentha suaveolens Ehrh.
995) Mentha pulegium L.
996) Mentha spicata L.
997) Mentha spicata L. x Mentha suaveolens Ehrh.
998) Mentha suaveolens Ehrh.
999) Mercurialis annua L.
1000) Mercurialis ovata Sternb. et Hoppe
1001) Mercurialis perennis L.
1002) Microthlaspi erraticum (Jord.) T. Ali et Thienes
1003) Microthlaspi perfoliatum (L.) F.K. Mey.
1004) Milium effusum L.
1005) Mimulus guttatus DC.
1006) Minuartia hybrida (Vill.) Schischkin subsp. tenuifolia (L.) Kerguelen
1007) Minuartia mediterranea (Link) K. Malý
1008) Misopates orontium (L.) Raf.
1009) Moehringia trinervia (L.) Clairv.
1010) Molinia arundinacea Schrank
1011) Molinia caerulea (L.) Moench
1012) Molinia spec.
1013) Montia fontana L.
1014) Montia fontana L. subsp. chondrosperma (Fenzl) Walters
1015) Muscari armeniacum Baker
1016) Muscari neglectum Ten.
1017) Mycelis muralis (L.) Dumort.
1018) Myosotis alpestris F.W. Schmidt
1019) Myosotis arvensis Hill subsp. arvensis
1020) Myosotis arvensis Hill subsp. umbrata (Rouy) O. Schwarz
1021) Myosotis discolor Pers.
1022) Myosotis dubia Arrond.
1023) Myosotis laxa Lehm.
1024) Myosotis nemorosa Besser
1025) Myosotis nemorosa Besser x Myosotis scorpioides L.
1026) Myosotis ramosissima Rochel
1027) Myosotis rehsteineri Wartm.
1028) Myosotis scorpioides L.
1029) Myosotis sparsiflora Pohl
1030) Myosotis stricta Roem. et Schult.
1031) Myosotis sylvatica Hoffm.
1032) Myriophyllum alterniflorum DC.
1033) Myriophyllum heterophyllum Michx.
1034) Myriophyllum verticillatum L.
1035) Najas marina L.
1036) Najas marina L. subsp. intermedia (Górski) Casper
1037) Najas marina L. subsp. marina
1038) Narthecium ossifragum (L.) Huds.
1039) Nasturtium microphyllum (Boenn.) Rchb.
1040) Nasturtium officinale W.T. Aiton
1041) Nasturtium officinale W.T. Aiton x Nasturtium microphyllum (Boenn.) Rchb.
1042) Neottia nidus-avis (L.) Rich.
1043) Nepeta cataria L.
1044) Nepeta nuda L.
1045) Nigella arvensis L.
1046) Noccaea caerulescens (J. Presl et C. Presl) F.K. Mey. subsp. caerulescens
1047) Nuphar lutea (L.) Sm.
1048) Odontites litoralis (Fr.) Fr.
1049) Odontites luteus (L.) Clairv.
1050) Odontites vernus (Bellardi) Dumort.
1051) Odontites vulgaris Moench
1052) Oenanthe aquatica (L.) Poir.
1053) Oenanthe fistulosa L.
1054) Oenanthe lachenalii C.C. Gmel.
1055) Oenanthe peucedanifolia Pollich
1056) Oenothera ammophila Focke
1057) Oenothera biennis L.
1058) Oenothera coronifera Renner
1059) Oenothera depressa Greene
1060) Oenothera oakesiana (A. Gray) S. Watson et J.M. Coult.
1061) Oenothera parviflora L.
1062) Oenothera rubricaulis Kleb.
1063) Oenothera sp.
1064) Oenothera suaveolens Pers.
1065) Oenothera villosa Thunb.
1066) Omphalodes scorpioides (Haenke) Schrank
1067) Ononis repens L. subsp. procurrens (Wallr.) Bonnier et Layens
1068) Onopordum acanthium L.
1069) Onosma arenaria Waldst. & Kit.
1070) Ophrys holosericea (Burm. f.) Greuter subsp. elatior (R. Engel et Quentin) H. Baumann et Künkele
1071) Orchis mascula (L.) L.
1072) Orchis palustris Jacq.
1073) Origanum vulgare L.
1074) Origanum vulgare L. subsp. vulgare
1075) Orlaya grandiflora (L.) Hoffm.
1076) Ornithogalum angustifolium Boreau
1077) Ornithogalum boucheanum (Kunth) Asch.
1078) Ornithogalum boucheanum (Kunth) Asch. x Ornithogalum nutans L.
1079) Ornithogalum divergens Boreau / Ornithogalum vulgare Sailer
1080) Ornithogalum nutans L.
1081) Ornithogalum pyrenaicum L.
1082) Ornithogalum umbellatum L.
1083) Ornithogalum vulgare Sailer
1084) Ornithopus perpusillus L.
1085) Orobanche alba Stephan
1086) Orobanche alsatica Kirschl. subsp. alsatica
1087) Orobanche alsatica Kirschl. subsp. libanotidis (Rupr.) Tzvelev
1088) Orobanche alsatica Kirschl. subsp. mayeri (Suess. et Ronniger) Kreutz
1089) Orobanche arenaria Borkh.
1090) Orobanche artemisiae-campestris Gaudin
1091) Orobanche bohemica Čelak.
1092) Orobanche caryophyllacea Sm.
1093) Orobanche coerulescens Stephan
1094) Orobanche elatior Sutton
1095) Orobanche flava F.W. Schultz
1096) Orobanche lucorum F.W. Schultz
1097) Orobanche lutea Baumg.
1098) Orobanche ramosa L.
1099) Orobanche reticulata Wallr.
1100) Oxalis acetosella L.
1101) Oxalis corniculata L.
1102) Oxalis stricta L.
1103) Papaver argemone L.
1104) Papaver confine Jord.
1105) Papaver confine Jord. / Papaver dubium L.
1106) Papaver dubium L.
1107) Papaver rhoeas L.
1108) Parietaria judaica L.
1109) Parietaria officinalis L.
1110) Parnassia palustris L.
1111) Pastinaca sativa L.
1112) Pedicularis palustris L.
1113) Peplis portula L.
1114) Persicaria amphibia (L.) Delarbre
1115) Persicaria hydropiper (L.) Delarbre
1116) Persicaria lapathifolia (L.) Delarbre
1117) Persicaria lapathifolia (L.) Delarbre subsp. brittingeri (Opiz) Soják
1118) Persicaria lapathifolia (L.) Delarbre subsp. lapathifolia
1119) Persicaria lapathifolia (L.) Delarbre subsp. pallida (With.) Á. Löve
1120) Persicaria maculosa Gray
1121) Persicaria minor (Huds.) Opiz
1122) Persicaria mitis (Schrank) Assenov
1123) Petasites albus (L.) Gaertn.
1124) Petrorhagia prolifera (L.) P.W. Ball et Heywood
1125) Peucedanum alsaticum L.
1126) Phalaris arundinacea L.
1127) Phleum nodosum L.
1128) Phleum nodosum L. x Phleum pratense L.
1129) Phleum paniculatum Huds.
1130) Phleum pratense L.
1131) Phragmites australis (Cav.) Steudel
1132) Phyteuma betonicifolium Vill.
1133) Phyteuma spicatum L.
1134) Phytolacca esculenta Van Houtte
1135) Picris hieracioides L.
1136) Pilosella arida (Freyn) Soják
1137) Pilosella aurantiaca (L.) F.W. Schultz et Sch. Bip.
1138) Pilosella aurantiaca (L.) F.W. Schultz et Sch. Bip. x Pilosella officinarum (L.) Vaill.
1139) Pilosella aurantiaca (L.) F.W. Schultz et Sch. Bip. x Pilosella piloselloides Vill.
1140) Pilosella bauhini (Schult.) Arv.-Touv.
1141) Pilosella bauhini (Schult.) Arv.-Touv. subsp. bauhini
1142) Pilosella blyttiana (Fr.) F.W. Schultz et Sch. Bip.
1143) Pilosella brachiata (DC.) F.W. Schultz et Sch. Bip.
1144) Pilosella caespitosa (Dumort.) P.D. Sell et C. West
1145) Pilosella calodon (Peter) Soják
1146) Pilosella cinereiformis (R. Meissner et Zahn) S. Bräut. et Greuter
1147) Pilosella corymbuloides (Arv.-Touv.) S. Bräut. et Greuter
1148) Pilosella crassiseta (Peter) Soják
1149) Pilosella cymiflora (Nägeli et Peters) S. Bräut. et Greuter
1150) Pilosella cymosa (L.) F.W. Schultz et Sch. Bip.
1151) Pilosella densiflora (Tausch) Soják
1152) Pilosella derubella (Gottschl. et Schuhw.) S. Bräut. et Greuter
1153) Pilosella dubia (L.) F.W. Schultz et Sch. Bip.
1154) Pilosella echioides (Lumn.) F.W. Schultz et Sch. Bip.
1155) Pilosella erythrochrista (Nägeli et Peter) S. Bräut. et Greuter
1156) Pilosella fallacina (F.W. Schultz) F.W. Schultz
1157) Pilosella floribunda (Wimm. et Grab.) Fr.
1158) Pilosella fusca (Vill.) Arv.-Touv.
1159) Pilosella glomerata (Froel.) Fr.
1160) Pilosella guthnikiana (Hegetschw.) Soják
1161) Pilosella hoppeana (Schult.) F.W. Schultz et Sch. Bip.
1162) Pilosella hoppeana (Schult.) F.W. Schultz et Sch. Bip. subsp. testimonialis (Peter) P.D. Sell et West
1163) Pilosella hybrida (Chaix) F.W. Schultz et Sch. Bip.
1164) Pilosella hypeurya (Peter) Soják
1165) Pilosella inops (Peter) Soják
1166) Pilosella iserana (R. Uechtr.) Soják
1167) Pilosella kalksburgensis (Wiesb.) Soják
1168) Pilosella lactucella (Wallr.) P.D. Sell et C. West
1169) Pilosella leptoclados (Peter) Soják
1170) Pilosella leptophyton (Nägeli et Peter) S. Bräut. et Greuter
1171) Pilosella longisquama (Peter) Holub
1172) Pilosella macranthela (Nägeli et Peter) Soják
1173) Pilosella macrostolona (Gus. Schneider) Soják
1174) Pilosella officinarum (L.) Vaill.
1175) Pilosella officinarum (L.) Vaill. x Pilosella stolonifera (Waldst. et Kit.) F.W. Schultz et Sch. Bip.
1176) Pilosella peleteriana (Mérat) F.W. Schultz et Sch. Bip.
1177) Pilosella pilosellina (F.W. Schultz) Soják
1178) Pilosella piloselloides (Vill.) Soják
1179) Pilosella piloselloides (Vill.) Soják subsp. praealta (Gochnat) S. Bräut. et Greuter
1180) Pilosella promeces (Peter) Holub
1181) Pilosella rothiana (Wallr.) F.W. Schultz et Sch. Bip.
1182) Pilosella rubra (Peter) Soják
1183) Pilosella schneidii (Schack et Zahn) S. Bräut. et Greuter
1184) Pilosella schultesii (F.W. Schultz) F.W. Schultz et Sch. Bip.
1185) Pilosella sphaerocephala (Rchb.) F.W. Schultz et Sch. Bip.
1186) Pilosella stolonifera (Waldst. et Kit.) F.W. Schultz et Sch. Bip.
1187) Pilosella stolonifera (Waldst. et Kit.) Soják
1188) Pilosella viridifolia (Peter) Holub
1189) Pilosella visianii F.W. Schultz et Sch. Bip.
1190) Pilosella ziziana (Tausch) F.W. Schultz et Sch. Bip.
1191) Pimpinella major (L.) Huds.
1192) Pimpinella nigra Mill. / Pimpinella saxifraga L.
1193) Pimpinella peregrina L.
1194) Pimpinella saxifraga L.
1195) Pinguicula gypsophila Wallr.
1196) Pinguicula vulgaris L.
1197) Pinus sylvestris L. subsp. sylvestris
1198) Plantago alpina L.
1199) Plantago arenaria Waldst. et Kit.
1200) Plantago coronopus L.
1201) Plantago lanceolata L.
1202) Plantago major L.
1203) Plantago major L. subsp. major
1204) Plantago major L. subsp. winteri (Wirtg.) W. Ludwig
1205) Plantago maritima L.
1206) Plantago media L.
1207) Plantago uliginosa F.W. Schmidt
1208) Platanthera bifolia (L.) Rich.
1209) Poa angustifolia L.
1210) Poa angustifolia L. / Poa humilis Hoffm. / Poa pratensis L.
1211) Poa annua L.
1212) Poa annua L. x Poa supina Schrad.
1213) Poa badensis Willd.
1214) Poa cenisia All.
1215) Poa chaixii Vill.
1216) Poa chaixii Vill x Poa remota Forselles
1217) Poa compressa L.
1218) Poa humilis Hoffm.
1219) Poa nemoralis L.
1220) Poa pratensis L.
1221) Poa remota Forselles
1222) Poa supina Schrad.
1223) Poa trivialis
1224) Polygala alpestris Rchb.
1225) Polygala amara L. subsp. brachyptera (Chodat) Hayek
1226) Polygala amarella Crantz
1227) Polygala chamaebuxus L.
1228) Polygala comosa Schkuhr
1229) Polygala serpyllifolia Hose
1230) Polygala vulgaris L. subsp. collina (Rchb.) Borbás
1231) Polygala vulgaris L. subsp. oxyptera (Rchb.) Schübl. et G. Martens
1232) Polygala vulgaris L. subsp. vulgaris
1233) Polygonatum multiflorum (L.) All.
1234) Polygonum arenastrum Boreau subsp. arenastrum
1235) Polygonum arenastrum Boreau subsp. calcatum (Lindm.) Wißkirchen
1236) Polygonum aviculare L.
1237) Polygonum aviculare L. subsp. aviculare
1238) Polygonum aviculare L. subsp. ruvivagum (Boreau) Berher
1239) Polypodium cambricum L. x Polypodium interjectum Shivas
1240) Polypodium interjectum Shivas
1241) Polypodium interjectum Shivas x Polypodium vulgare L.
1242) Polypodium vulgare L.
1243) Polystichum aculeatum (L.) Roth
1244) Polystichum aculeatum (L.) Roth x Polystichum setiferum (Forssk.) Woyn.
1245) Polystichum setiferum (Forssk.) Woyn.
1246) Populus tremula L.
1247) Portulaca oleracea L. subsp. oleracea
1248) Potamogeton crispus L.
1249) Potamogeton crispus L. x Potamogeton friesii Rupr.
1250) Potamogeton natans L. x Potamogeton nodosus Poir.
1251) Potamogeton perfoliatus L.
1252) Potamogeton praelongus Wulfen
1253) Potamogeton x nitens Weber
1254) Potentilla alba L.
1255) Potentilla anglica Laichard.
1256) Potentilla anglica Laichard. x erecta (L.) Raeusch.
1257) Potentilla argentea L.
1258) Potentilla argentea L. x Potentilla cinerea Vill. subsp. incana (G. Gaertn. et al.) Asch.
1259) Potentilla argentea L. x Potentilla neumanniana Rchb.
1260) Potentilla argentea L. x Potentilla schultzii F.W. Schultz
1261) Potentilla cinerea Vill. subsp. incana (G. Gaertn. et al.) Asch.
1262) Potentilla cinerea Vill. subsp. incana (G. Gaertn. et al.) Asch. x Potentilla neumanniana Rchb.
1263) Potentilla crantzii (Crantz) Fritsch
1264) Potentilla erecta (L.) Raeusch.
1265) Potentilla heptaphylla L.
1266) Potentilla heptaphylla L. x Potentilla neumanniana Rchb.
1267) Potentilla inclinata Vill.
1268) Potentilla intermedia L.
1269) Potentilla leucopolitana P.J. Müll.
1270) Potentilla lindackeri Tausch
1271) Potentilla micrantha DC.
1272) Potentilla neumanniana Rchb.
1273) Potentilla norvegica L.
1274) Potentilla praecox F.W. Schultz
1275) Potentilla recta L.
1276) Potentilla reptans L.
1277) Potentilla rhenana Zimmeter
1278) Potentilla schultzii F.W. Schultz
1279) Potentilla sterilis (L.) Garcke
1280) Potentilla supina L.
1281) Potentilla thuringiaca Bernh.
1282) Potentilla wismariensis T. Gregor et Henker
1283) Primula auricula L. subsp. auricula
1284) Primula clusiana Tausch
1285) Primula elatior (L.) Hill
1286) Primula farinosa L.
1287) Primula veris L.
1288) Prunella vulgaris L.
1289) Pseudoturritis turrita (L.) Al-Shebaz
1290) Pteris cretica L.
1291) Pteris cretica L. var. albo-lineata Hooker
1292) Pteris multifida Poir.
1293) Puccinellia distans (Jacq.) Parl.
1294) Puccinellia distans (Jacq.) Parl. / Puccinellia limosa (Schur) Holmb.
1295) Puccinellia fontana (Portal) Amarell et T. Gregor
1296) Puccinellia limosa (Schur) Holmberg
1297) Puccinellia maritima (Huds.) Parl.
1298) Pulicaria dysenterica (L.) Bernh.
1299) Pulmonaria angustifolia L.
1300) Pulmonaria collina W. Sauer
1301) Pulmonaria mollis Hornem.
1302) Pulmonaria mollis Hornem. subsp. alpigena W. Sauer
1303) Pulmonaria mollis Hornem. subsp. alpigena W. Sauer x Pulmonaria officinalis L.
1304) Pulmonaria mollis Hornem. subsp. mollis
1305) Pulmonaria montana Lej.
1306) Pulmonaria obscura Dumort.
1307) Pulmonaria obscura Dumort. / Pulmonaria officinalis L.
1308) Pulmonaria obscura Dumort. x Pulmonaria officinalis L.
1309) Pulmonaria officinalis L.
1310) Pulmonaria rubra Schott
1311) Pulmonaria sp.
1312) Pulsatilla patens (L.) Mill.
1313) Pulsatilla pratensis (L.) Mill. subsp. nigricans (Störck) Zämelis
1314) Pulsatilla vulgaris Mill.
1315) Quercus petraea Liebl.
1316) Quercus robur L.
1317) Ranunculus aconitifolius L.
1318) Ranunculus acris L.
1319) Ranunculus acris L. subsp. acris
1320) Ranunculus acris L. subsp. friesianus (Jord.) Syme
1321) Ranunculus aemulans O. Schwarz
1322) Ranunculus aquatilis L.
1323) Ranunculus argoviensis W. Koch
1324) Ranunculus auricomus agg.
1325) Ranunculus biformis W. Koch
1326) Ranunculus borchers-kolbiae Ericsson
1327) Ranunculus breitfeldii Dunkel
1328) Ranunculus breyninus Crantz
1329) Ranunculus cassubicifolius W. Koch
1330) Ranunculus circinatus Sibth.
1331) Ranunculus circinatus Sibth. x Ranunculus fluitans Lam.
1332) Ranunculus confervoides (Fries) Fries
1333) Ranunculus connivens Dunkel
1334) Ranunculus cottanus Dunkel
1335) Ranunculus dactylophyllus Borch.-Kolb
1336) Ranunculus doerrii Borch.-Kolb
1337) Ranunculus dolichodon Dunkel
1338) Ranunculus fallacior Dunkel
1339) Ranunculus ferocior Dunkel
1340) Ranunculus fluitans Lam.
1341) Ranunculus fluitans Lam. x ?
1342) Ranunculus fluitans Lam. x Ranunculus trichophyllus Chaix
1343) Ranunculus haasii Soó
1344) Ranunculus hederaceus L.
1345) Ranunculus hevellus (Asch. et Graebn.) O. Schwarz
1346) Ranunculus homophyllus Dunkel
1347) Ranunculus integerrimus (Julin) Borch.-Kolb
1348) Ranunculus irregularis Dunkel
1349) Ranunculus koerneri Dunkel
1350) Ranunculus lipsiensis Dunkel
1351) Ranunculus lucorum (R. Engel) Borch.-Kolb
1352) Ranunculus lunaris Brodtb.
1353) Ranunculus lusaticus Dunkel
1354) Ranunculus macrotis Brodtb.
1355) Ranunculus mecacarpus W. Koch
1356) Ranunculus medioformis Dunkel
1357) Ranunculus misniensis Dunkel
1358) Ranunculus monacensis Dunkel
1359) Ranunculus montanus Willd.
1360) Ranunculus mosellanus Dunkel
1361) Ranunculus nissaënsis Dunkel
1362) Ranunculus opimus O. Schwarz
1363) Ranunculus palmularis O. Schwarz
1364) Ranunculus peltatus Schrank subsp. baudotii (Godr.) C.D.K. Cook
1365) Ranunculus peltatus Schrank subsp. fucoides (Freyn) Muńos Garm.
1366) Ranunculus peltatus Schrank subsp. peltatus
1367) Ranunculus peltatus Schrank subsp. peltatus x Ranunculus penicillatus (Dumort.) Bab. subsp. penicillatus
1368) Ranunculus penicillatus (Dumort.) Bab.
1369) Ranunculus penicillatus (Dumort.) Bab. subsp. penicillatus
1370) Ranunculus penicillatus (Dumort.) Bab. subsp. pseudofluitans (Syme) S. D. Webster
1371) Ranunculus phragmiteti Haas
1372) Ranunculus pillnitzensis Dunkel
1373) Ranunculus polyanthemos L.
1374) Ranunculus polyanthemos L. ssp. nemorosus (DC.) Schübl. et G. Martens x Ranunculus polyanthemos L. ssp. serpens (Schrank) Baltisberger
1375) Ranunculus polyanthemos L. subsp. nemorosus (DC.) Schübl. et G. Martens
1376) Ranunculus polyanthemos L. subsp. polyanthemoides (Boreau) Ahlfv.
1377) Ranunculus polyanthemos L. subsp. polyanthemophyllos (W. Koch et H. Hess) Baltisberger
1378) Ranunculus polyanthemos L. subsp. polyanthemos
1379) Ranunculus polyanthemos L. subsp. serpens (Schrank) Baltisberger
1380) Ranunculus pratizanus Dunkel
1381) Ranunculus pseudolyratus Dunkel
1382) Ranunculus pseudopimus O. Schwarz
1383) Ranunculus pseudovertumnalis A. Haas
1384) Ranunculus puberulus W. Koch
1385) Ranunculus ratisbonensis Dunkel
1386) Ranunculus recticaulis Hörandl et Gutermann
1387) Ranunculus reichertii Dunkel
1388) Ranunculus reptans L.
1389) Ranunculus rionii Lagger
1390) Ranunculus rotundatissimus Dersch
1391) Ranunculus rubricaulis Dunkel
1392) Ranunculus sardous Crantz
1393) Ranunculus sceleratus L.
1394) Ranunculus sorbicus Dunkel
1395) Ranunculus sorviodurus Dunkel
1396) Ranunculus suborbicularis Dunkel
1397) Ranunculus suevicus Borch.-Kolb
1398) Ranunculus trichophyllus Chaix
1399) Ranunculus trilobatoides Dunkel
1400) Ranunculus varicus O. Schwarz
1401) Ranunculus vertumnalis O. Schwarz
1402) Ranunculus viduus Dunkel
1403) Rapistrum rugosum (L.) All.
1404) Reseda luteola L.
1405) Rhamnus carthartica L.
1406) Rhinanthus serotinus (Schönh.) Oborny
1407) Rhynchospora alba (L.) Vahl
1408) Rhynchospora fusca (L.) W.T. Aiton
1409) Ribes alpinum L.
1410) Rorippa amphibia (L.) Besser
1411) Rorippa amphibia (L.) Besser x Rorippa palustris (L.) Besser
1412) Rorippa austriaca (Crantz) Besser
1413) Rorippa austriaca (Crantz) Besser x Rorippa sylvestris (L.) Besser
1414) Rorippa islandica (Gunnerus) Borbás
1415) Rorippa palustris (L.) Besser
1416) Rorippa sylvestris (L.) Besser
1417) Rorippa x anceps (Wahlenb.) Rchb.
1418) Rosa agrestis Savi
1419) Rosa arvensis L.
1420) Rosa balsamica Besser
1421) Rosa caesia Sm.
1422) Rosa canina L.
1423) Rosa canina L. x Rosa inodora Fr.
1424) Rosa corymbifera Borkh.
1425) Rosa dumalis Bechst.
1426) Rosa gremlii (Christ) Gremli
1427) Rosa inodora Fr.
1428) Rosa micrantha Sm.
1429) Rosa mollis Sm.
1430) Rosa mollis Sm. x Rosa rugosa Thunb.
1431) Rosa rubiginosa L.
1432) Rosa rugosa Thunb.
1433) Rosa sherardii Davies
1434) Rosa subcanina (H. Christ) Vuk.
1435) Rosa subcollina (H. Christ) R. Keller
1436) Rosa tomentosa Sm. x Rosa canina L.
1437) Rubus
1438) Rubus adspersus H.E. Weber
1439) Rubus amisiensis H.E. Weber
1440) Rubus armeniacus Focke
1441) Rubus caesius L.
1442) Rubus calvus H.E. Weber
1443) Rubus conothyrsoides H.E. Weber
1444) Rubus contractipes H.E. Weber
1445) Rubus dasyphyllus (W. M. Rogers) E. S. Marshall
1446) Rubus elegantispinosus (A. Schum.) H.E. Weber
1447) Rubus fasciculatiformis H.E. Weber
1448) Rubus fasciculatus P.J. Müller
1449) Rubus ferocior H.E. Weber
1450) Rubus foliosus Weihe
1451) Rubus gelertii Frid.
1452) Rubus glandithyrsos G. Braun
1453) Rubus hypomalacus Focke
1454) Rubus lamprocaulos G. Braun
1455) Rubus leucandrus Focke
1456) Rubus lindebergii P.J. Müll.
1457) Rubus macrophyllus Weihe et Nees
1458) Rubus montanus Lej.
1459) Rubus muenteri T. Marsson
1460) Rubus nemorosus Hayne et Willd.
1461) Rubus pedemontanus Pinkwart
1462) Rubus perdemissus H.E. Weber et Martensen
1463) Rubus platyacanthus P.J. Müll. et Lefèvre
1464) Rubus polyanthemus Lindeb.
1465) Rubus pseudoglotta Drenckhahn et W. Jansen
1466) Rubus rhombifolius Weihe
1467) Rubus rhytidophyllus H.E. Weber
1468) Rubus saxatilis L.
1469) Rubus scabrosus P.J. Müller
1470) Rubus senticosus Weihe
1471) Rubus silvaticus Weihe et Nees
1472) Rubus stohrii H.E. Weber et M. Ranft
1473) Rubus vigorosus P.J. Müll. et Wirtg.
1474) Rubus viridilucidus Drenckhahn
1475) Rumex acetosella L.
1476) Rumex acetosella L. subsp. acetosella
1477) Rumex conglomeratus Murray
1478) Rumex crispus L. x Rumex obtusifolius L.
1479) Rumex maritimus L.
1480) Rumex obovatus Danser
1481) Rumex palustris Sm.
1482) Rumex sanguineus L.
1483) Rumex triangulivalvis (Danser) Rech. f.
1484) Ruppia cirrhosa (Petagna) Grande
1485) Ruppia maritima L.
1486) Sagina apetala Ard.
1487) Sagina maritima Don
1488) Sagina micropeta Rauschert
1489) Sagina nodosa (L.) Fenzl
1490) Sagina procumbens L.
1491) Sagina subulata (Sw.) C. Presl
1492) Salicornia europaea L.
1493) Salicornia europaea L. / Salicornia procumbens Sm. / Salicornia stricta Dumort.
1494) Salicornia procumbens Sm.
1495) Salicornia stricta Dumort.
1496) Salix starkeana Willd.
1497) Salsola kali L.
1498) Salvia nemorosa L.
1499) Samolus valerandi L.
1500) Sanguisorba minor Scop.
1501) Sanguisorba minor Scop. subsp. balearica (Nyman) Muñoz et C. Navarro
1502) Sanguisorba minor Scop. subsp. minor
1503) Sanguisorba officinalis L.
1504) Saponaria officinalis L.
1505) Saxifraga caesia L.
1506) Saxifraga moschata Wulfen
1507) Saxifraga oppositifolia L. subsp. amphibia (Sünd.) Braun-Blanq.
1508) Saxifraga tridactylites L.
1509) Scabiosa canescens Waldst. et Kit.
1510) Scabiosa columbaria L.
1511) Scabiosa lucida Vill.
1512) Scabiosa ochroleuca L.
1513) Scabiosa triandra L.
1514) Schoenoplectus tabernaemontani (C.C. Gmel.) Palla
1515) Scilla amoena L.
1516) Scilla bifolia L.
1517) Scilla vindobonensis Speta
1518) Scirpus georgianus R.M. Harper
1519) Scleranthus annuus L.
1520) Scleranthus perennis L.
1521) Scleranthus polycarpos L.
1522) Scleranthus verticillatus Tausch
1523) Scolochloa marchica Düvel et al.
1524) Scorzonera humilis L.
1525) Scorzonera laciniata L.
1526) Scorzoneroides autumnalis (L.) Moench
1527) Scorzoneroides helveticus (Mérat) Holub
1528) Scrophularia nodosa L.
1529) Scrophularia umbrosa Dumort. subsp. neesii (Wirtg.) E. Mayer
1530) Scrophularia umbrosa Dumort. subsp. umbrosa
1531) Scrophularia vernalis L.
1532) Scutellaria galericulata L.
1533) Scutellaria hastifolia L.
1534) Scutellaria minor Huds.
1535) Securigera varia (L.) Lassen
1536) Sedum acre L.
1537) Sedum album L.
1538) Sedum forsterianum Sm.
1539) Sedum rupestre L.
1540) Sedum thartii L.P. Hébert
1541) Sedum villosum L.
1542) Selinum carvifolia (L.) L.
1543) Senecio abrotanifolius L. subsp. abrotanifolius
1544) Senecio aquaticus Hill
1545) Senecio erraticus Bertol.
1546) Senecio erucifolius L.
1547) Senecio erucifolius L. subsp. arenarius Soó
1548) Senecio germanicus Wallr. subsp. germanicus
1549) Senecio hercynicus Herborg subsp. hercynicus
1550) Senecio hercynicus Herborg subsp. hercynicus x Senecio ovatus (G. Gaertn. et al.) Willd.
1551) Senecio inaequidens DC.
1552) Senecio jacobaea L.
1553) Senecio jacobaea L. subsp. dunensis (Dumort.) Kadereit et P.D. Sell
1554) Senecio jacobaea L. subsp. jacobaea
1555) Senecio ovatus (G. Gaertner et al.) Willd. subsp. ovatus
1556) Senecio ovatus (G. Gaertn. et al.) Willd. subsp. ovatus
1557) Senecio paludosus L.
1558) Senecio sarracenicus L.
1559) Senecio sylvaticus L.
1560) Senecio velenovskyi Borbás
1561) Senecio vernalis Waldst. et Kit.
1562) Senecio vernalis Waldst. et Kit. x Senecio vulgaris L.
1563) Senecio viscosus L.
1564) Senecio vulgaris L.
1565) Seseli annuum L.
1566) Seseli hippomarathrum Jacq.
1567) Seseli montanum L.
1568) Sesleria caerulea (L.) Ard.
1569) Setaria pumila (Poir.) Roem. et Schult.
1570) Setaria verticillata (L.) P. Beauv.
1571) Setaria verticilliformis Dumort.
1572) Setaria viridis (L.) P. Beauv.
1573) Silaum silaus (L.) Schinz et Thell.
1574) Silene chalcedonica (L.) E.H.L. Krause
1575) Silene chlorantha (Willd.) Ehrh.
1576) Silene conica L.
1577) Silene csereii Baumg.
1578) Silene dichotoma Ehrh.
1579) Silene dioica (L.) Clairv.
1580) Silene latifolia Poir. subsp. alba (Mill.) Greuter et Burdet
1581) Silene nutans L.
1582) Silene otites (L.) Wib.
1583) Silene tatarica (L.) Pers.
1584) Silene vulgaris (Moench) Garcke
1585) Silene vulgaris (Moench) Garcke subsp. vulgaris
1586) Sinapis arvensis L.
1587) Sisymbrium officinale (L.) Scop.
1588) Sisymbrium orientale L.
1589) Sisymbrium strictissimum L
1590) Sium latifolium L.
1591) Solanum decipiens Opiz
1592) Solanum dulcamara L.
1593) Solanum nigrum L.
1594) Solanum villosum Mill.
1595) Soldanella alpina L.
1596) Soldanella montana Willd.
1597) Solidago canadensis L.
1598) Solidago gigantea Aiton
1599) Solidago virgaurea L.
1600) Sonchus arvensis L.
1601) Sonchus asper (L.) Hill
1602) Sonchus oleraceus L.
1603) Sonchus palustris L.
1604) Sorbus adeana N. Mey.
1605) Sorbus algoviensis N. Mey.
1606) Sorbus aria (L.) Crantz
1607) Sorbus aria (L.) Crantz x Sorbus aucuparia L.
1608) Sorbus aria (L.) Crantz x Sorbus collina M. Lepší et al.
1609) Sorbus aria (L.) Crantz x Sorbus torminalis (L.) Crantz
1610) Sorbus aucuparia L. × Sorbus collina M.Lepší, P.Lepší et N.Mey.
1611) Sorbus aucuparia L. × Sorbus pseudothuringiaca Düll
1612) Sorbus aucuparia L. x Sorbus (L.) Crantz subgen. Aria Pers.
1613) Sorbus badensis Düll
1614) Sorbus carolipolitana N. Meyer et Meierott
1615) Sorbus chamaemespilus (L.) Crantz
1616) Sorbus collina M. Lepší et al.
1617) Sorbus cordigastensis N. Mey.
1618) Sorbus danubialis (Jáv.) Kárpáti
1619) Sorbus doerriana N. Mey.
1620) Sorbus domestica L.
1621) Sorbus dubronensis N. Mey., Feulner et T.C.G. Rich
1622) Sorbus eystettensis N. Mey.
1623) Sorbus franconica Düll
1624) Sorbus gauckleri N. Mey.
1625) Sorbus graeca (Spach) Schauer
1626) Sorbus griseotormaria N. Meyer et Meierott
1627) Sorbus haesitans Meierott
1628) Sorbus herbipolitana Meierott
1629) Sorbus hohenesteri N. Mey.
1630) Sorbus hoppeana N. Mey.
1631) Sorbus intermedia (Ehrh.) Pers.
1632) Sorbus latifolia (Lam.) Pers.
1633) Sorbus latisedes N.Meyer et Meierott
1634) Sorbus lippertiana N. Mey. et Meierott
1635) Sorbus lonetalensis S. Hammel et Haynold
1636) Sorbus meierottii N. Mey.
1637) Sorbus mergenthaleriana N. Mey.
1638) Sorbus meyeri S. Hammel et Haynold
1639) Sorbus moenofranconica N.Mey. et Meierott
1640) Sorbus mougeotii Soy.-Will. et Godr.
1641) Sorbus perlonga Meierott
1642) Sorbus puellarum Meierott
1643) Sorbus ratisbonensis N. Mey.
1644) Sorbus schnizleiniana N. Mey.
1645) Sorbus schwarziana N. Mey.
1646) Sorbus seyboldiana S. Hammel et Haynold
1647) Sorbus subgen. Chamaemespilus (Medikus) K. Koch
1648) Sorbus subgen. Chamaespilaria Májovský et Bernátová
1649) Sorbus subgen. Chamsoraria Májovský et Bernátová
1650) Sorbus subgen. Soraria Májovský et Bernátová
1651) Sorbus torminalis (L.) Crantz
1652) Sparganium emersum Rehmann
1653) Sparganium erectum L.
1654) Sparganium natans L.
1655) Spartina anglica C.E. Hubb.
1656) Spartina × townsendii H. Groves et J. Groves
1657) Spergula arvensis L. subsp. arvensis
1658) Spergula morisonii Boreau
1659) Spergularia echinosperma (Čelak.) Asch. et Graebn. x Spergularia rubra (L.) J. Presl et C. Presl
1660) Spergularia media (L.) C. Presl
1661) Spergularia rubra (L.) J. Presl et C. Presl
1662) Spergularia salina J. Presl et C. Presl
1663) Spiraea douglasii Hook.
1664) Spiraea tomentosa L.
1665) Spirodela polyrhiza (L.) Schleid.
1666) Stachys arvensis (L.) L.
1667) Stachys germanica L.
1668) Stachys palustris L.
1669) Stachys recta L.
1670) Stachys sylvatica L.
1671) Stellaria alsine Grimm
1672) Stellaria graminea L.
1673) Stellaria media (L.) Vill.
1674) Stellaria montana Pierrat / Stellaria nemorum L.
1675) Stellaria neglecta Weihe
1676) Stellaria pallida (Dumort.) Crépin
1677) Stellaria palustris (Roth) Hoffm.
1678) Stratiotes aloides L.
1679) Streptopus amplexifolius (L.) DC.
1680) Stuckenia pectinata (L.) Börner
1681) Suaeda maritima (L.) Dumort.
1682) Succisa pratensis Moench
1683) Succisella inflexa (Kluk) Beck
1684) Symphytum asperum Lepech.
1685) Symphytum asperum Lepech. x Symphytum officinale L.
1686) Symphytum officinale L.
1687) Symphytum officinale L. subsp. bohemicum (F.W. Schmidt) Čelak.
1688) Symphytum officinale L. subsp. officinale
1689) Symphytum sp.
1690) Symphytum tuberosum L.
1691) Symphytum tuberosum L. subsp. tuberosum
1692) Tanacetum corymbosum (L.) Sch. Bip.
1693) Tanacetum macrophyllum (Waldst. et Kit.) Sch. Bip.
1694) Tanacetum partheniifolium (Willd.) Sch. Bip.
1695) Tanacetum parthenium (L.) Sch. Bip.
1696) Tanacetum vulgare L.
1697) Taraxacum acervatulum Rail.
1698) Taraxacum acroglossum Dahlst.
1699) Taraxacum adamii Claire
1700) Taraxacum aequilobum Dahlst.
1701) Taraxacum alatum Lindb. fil.
1702) Taraxacum albertshoferi Sahlin
1703) Taraxacum austrinum G.E. Haglund
1704) Taraxacum baeckiiforme Sahlin
1705) Taraxacum balticiforme Dahlst.
1706) Taraxacum balticum Dahlst.
1707) Taraxacum bavaricum Soest
1708) Taraxacum bellicum Sonck
1709) Taraxacum brachyglossum (Dahlst.) Raunk.
1710) Taraxacum bracteatum Dahlst.
1711) Taraxacum brunneum Soest
1712) Taraxacum caninum Uhlemann
1713) Taraxacum capillosum H. Øllg. et Uhlemann
1714) Taraxacum cf. intermedium Raunk.
1715) Taraxacum collarispinulosum Uhlemann
1716) Taraxacum commixtum G.E. Haglund
1717) Taraxacum cyanolepis Dahlst.
1718) Taraxacum delectum Uhlemann
1719) Taraxacum diastematicum Markl.
1720) Taraxacum disseminatum G.E. Haglund
1721) Taraxacum duplidentifrons Dahlst.
1722) Taraxacum floccosum Rail.
1723) Taraxacum fontanosquameum Soest
1724) Taraxacum frisicum Soest
1725) Taraxacum fulvum Raunk.
1726) Taraxacum gelertii Raunk.
1727) Taraxacum germanicum Soest
1728) Taraxacum glaphyrum Sahlin
1729) Taraxacum hamatiforme Dahlst.
1730) Taraxacum hamiferum Dahlst.
1731) Taraxacum heleocharis Kirschner et Štěpánek
1732) Taraxacum hemicyclum G.E. Haglund
1733) Taraxacum hempelianum Uhlemann
1734) Taraxacum hepaticum Rail.
1735) Taraxacum hollandicum Soest
1736) Taraxacum horridifrons Rail.
1737) Taraxacum ingens Palmgr.
1738) Taraxacum interveniens G.E. Haglund
1739) Taraxacum irrigatum Kirschner et Štěpánek
1740) Taraxacum lacistophylloides Dahlst.
1741) Taraxacum lacistophyllum (Dahlst.) Raunk.
1742) Taraxacum lamprophyllum M.P. Christ.
1743) Taraxacum laticordatum Markl.
1744) Taraxacum leptoglotte M.P. Christ.
1745) Taraxacum linguatifrons Markl.
1746) Taraxacum macranthoides G.E. Haglund
1747) Taraxacum maculatum Jord.
1748) Taraxacum madidum Kirschner et Štěpánek
1749) Taraxacum magnolevigatum Soest
1750) Taraxacum marginatum (Dahlst.) Raunk.
1751) Taraxacum melanostigma H. Lindb.
1752) Taraxacum nordstedtii Dahlst.
1753) Taraxacum obtusifrons Markl.
1754) Taraxacum ohlsenii G.E. Haglund
1755) Taraxacum ottonis Uhlemann
1756) Taraxacum palustre (J. Lyons) Symons
1757) Taraxacum parnassicum Dahlst.
1758) Taraxacum parsennense Soest
1759) Taraxacum paucilobum Hudziok
1760) Taraxacum penelobum Sahlin
1761) Taraxacum piceatum Dahlst.
1762) Taraxacum plumbeum Dahlst.
1763) Taraxacum pollichii Soest
1764) Taraxacum porrigentilobatum Rail.
1765) Taraxacum proximum (Dahlst.) Raunk.
1766) Taraxacum pseudelongatum Soest
1767) Taraxacum pulchrifolium Markl.
1768) Taraxacum reichlingii Soest
1769) Taraxacum rubicundum (Dahlst.) Dahlst.
1770) Taraxacum scanicum Dahlst.
1771) Taraxacum schmidianum Sahlin
1772) Taraxacum sect. Taraxacum
1773) Taraxacum sellandii Dahlst.
1774) Taraxacum semiglobosum H. Lindb.
1775) Taraxacum subalpinum Hudziok
1776) Taraxacum subborgvallii Uhlemann et al.
1777) Taraxacum subhamatum M.P. Christ.
1778) Taraxacum subsaxenii Sahlin
1779) Taraxacum tenebricans (Dahlst.) Raunk.
1780) Taraxacum tenuilobum (Dahlst.) Dahlst.
1781) Taraxacum tiroliense Dahlst.
1782) Taraxacum tortilobum Florstr.
1783) Taraxacum trilobifolium Hudziok
1784) Taraxacum turfosum (Sch. Bip.) Soest
1785) Taraxacum venustum Dahlst.
1786) Tephroseris helenitis (L.) B. Nord. subsp. helenitis
1787) Tephroseris integrifolia (L.) Holub
1788) Teucrium scorodonia L.
1789) Thalictrum flavum L.
1790) Thalictrum flavum L. x Thalictrum simplex L. subsp. galioides (DC.) Korsh.
1791) Thalictrum lucidum L.
1792) Thalictrum minus L.
1793) Thalictrum minus L. subsp. minus
1794) Thalictrum minus L. subsp. pratense (F.W. Schultz) Hand
1795) Thalictrum minus L. subsp. saxatile Ces.
1796) Thalictrum simplex L. subsp. galioides (DC.) Korsh.
1797) Thalictrum simplex L. subsp. tenuifolium (Hartm.) Sterner
1798) Thalictrum speciosissimum L.
1799) Thlaspi alliaceum L.
1800) Thlaspi arvense L.
1801) Thymus praecox Opiz
1802) Thymus serpyllum L. var. porphyrogenitus (Lyka) P.A. Schmidt
1803) Tofieldia calyculata (L.) Wahlenb.
1804) Torilis arvensis (Huds.) Link subsp. recta Jury
1805) Torilis japonica (Houtt.) DC.
1806) Tortula muralis Hedw.
1807) Tragopogon dubius Scop.
1808) Tragopogon minor Mill.
1809) Tragopogon minor Mill. / Tragopogon orientalis L. / Tragopogon pratensis L.
1810) Tragopogon minor Mill. / Tragopogon pratensis L.
1811) Tragopogon orientalis L.
1812) Tragopogon pratensis L.
1813) Trichophorum alpinum (L.) Pers.
1814) Trichophorum cespitosum (L.) Hartm. / Trichophorum germanicum Palla
1815) Trientalis europaea L.
1816) Trifolium alpestre L.
1817) Trifolium arvense L.
1818) Trifolium aureum Poll.
1819) Trifolium campestre Schreb.
1820) Trifolium dubium Sibth.
1821) Trifolium fragiferum L.
1822) Trifolium hybridum L.
1823) Trifolium medium L.
1824) Trifolium montanum L.
1825) Trifolium pratense L.
1826) Trifolium pratense L. subsp. pratense
1827) Trifolium repens L.
1828) Trifolium striatum L.
1829) Triglochin maritima L.
1830) Triglochin palustre L.
1831) Tripleurospermum inodorum (L.) Sch. Bip.
1832) Tripleurospermum maritimum (L.) W.D.J. Koch
1833) Tripolium pannonicum (Jacq.) Dobrocz. subsp. tripolium (L.) Greuter
1834) Trisetum distichophyllum (Vill.) P. Beauv.
1835) Turritis glabra L.
1836) Urtica dioica L. subsp. dioica
1837) Urtica dioica L. subsp. dioica x Urtica dioica L. subsp. subinermiformis (Uechtr.) Weigend
1838) Urtica dioica L. subsp. subinermis (Uechtr.) Weigend
1839) Utricularia australis R. Br.
1840) Utricularia minor L.
1841) Utricularia ochroleuca R.W. Hartm.
1842) Utricularia vulgaris L.
1843) Vaccinium microcarpum (Rupr.) Schmalh.
1844) Vaccinium oxycoccus L.
1845) Vaccinium uliginosum L. subsp. uliginosum
1846) Valeriana dioica L.
1847) Valeriana excelsa Poir.
1848) Valeriana excelsa Poir. subsp. excelsa
1849) Valeriana excelsa Poir. subsp. sambucifolia (Pohl) Holub
1850) Valeriana excelsa Poir. subsp. versifolia (Brüggger) Buttler et al.
1851) Valeriana excelsa Poir. / Valeriana officinalis L. / Valeriana pratensis Dierb.
1852) Valeriana-officinalis-Hybride
1853) Valeriana officinalis L.
1854) Valeriana pratensis Dierb.
1855) Valeriana pratensis Dierb. subsp. angustifolia (Soó) Kirschner et al.
1856) Valeriana pratensis Dierb. subsp. franconica Meierott et T. Gregor
1857) Valeriana pratensis Dierb. subsp. pratensis
1858) Valeriana tripteris L.
1859) Valerianella dentata (L.) Pollich
1860) Valerianella locusta L.
1861) Valerianella rimosa Bastard
1862) Vallisneria australis S.W.L. Jacobs et Les
1863) Verbascum nigrum L.
1864) Verbascum pulverulentum Vill.
1865) Verbascum thapsus L.
1866) Veronica acinifolia L.
1867) Veronica agrestis L.
1868) Veronica anagallis-aquatica L.
1869) Veronica arvensis L.
1870) Veronica austriaca L.
1871) Veronica catenata Pennell
1872) Veronica chamaedrys L. subsp. chamaedrys
1873) Veronica chamaedrys L. subsp. micans M.A. Fisch.
1874) Veronica chamaedrys L. x Veronica vindobonensis (M.A. Fisch.) M.A. Fisch.
1875) Veronica cymbalaria Bodard
1876) Veronica dillenii Crantz
1877) Veronica filiformis Sm.
1878) Veronica hederifolia L.
1879) Veronica maritima L.
1880) Veronica officinalis L.
1881) Veronica opaca Fr.
1882) Veronica orsiniana Ten.
1883) Veronica peregrina L.
1884) Veronica polita Fr.
1885) Veronica prostrata L.
1886) Veronica satureiifolia Poit. et Turpin
1887) Veronica scutellata L.
1888) Veronica serpyllifolia L.
1889) Veronica serpyllifolia L. subsp. serpyllifolia
1890) Veronica spicata L.
1891) Veronica teucrium L.
1892) Veronica triphyllos L.
1893) Veronica verna L.
1894) Veronica vindobonensis (M.A. Fisch.) M.A. Fisch.
1895) Vicia angustifolia L.
1896) Vicia cracca L.
1897) Vicia dalmatica A. Kern.
1898) Vicia dumetorum L.
1899) Vicia hirsuta (L.) S. F. Gray
1900) Vicia pisiformis L.
1901) Vicia sativa L.
1902) Vicia segetalis Thuill.
1903) Vicia sylvatica L.
1904) Vicia tenuifolia Roth
1905) Vicia villosa Roth
1906) Vinca minor L.
1907) Vincetoxicum hirundinaria Medik.
1908) Viola alba Besser
1909) Viola alba Besser subsp. alba
1910) Viola alba Besser x Viola hirta L.
1911) Viola arvensis Murray
1912) Viola arvensis Murray subsp. arvensis
1913) Viola arvensis Murray subsp. arvensis x Viola guestfalica Nauenb.
1914) Viola arvensis Murray subsp. arvensis x Viola tricolor subsp. tricolor
1915) Viola biflora L.
1916) Viola calaminaria (Ging.) Lej.
1917) Viola canina L.
1918) Viola canina L. / Viola montana L.
1919) Viola canina L. / Viola montana L. x Viola riviniana L.
1920) Viola canina L. x Viola riviniana L.
1921) Viola collina Besser
1922) Viola elatior Fr.
1923) Viola epipsila Ledeb.
1924) Viola epipsila Ledeb. x Viola palustris L.
1925) Viola guestfalica Nauenb.
1926) Viola hirta L.
1927) Viola hirta L. x Viola odorata L.
1928) Viola kitaibeliana Schult.
1929) Viola mirabilis L.
1930) Viola montana L.
1931) Viola montana L. x Viola riviniana L.
1932) Viola montana L. x Viola rupestris L.
1933) Viola odorata L.
1934) Viola palustris L.
1935) Viola pumila Chaix
1936) Viola reichenbachiana Boreau
1937) Viola reichenbachiana Boreau / Viola riviniana Rchb. x Viola rupestris L.
1938) Viola reichenbachiana Boreau x Viola riviniana Rchb.
1939) Viola riviniana Rchb.
1940) Viola rupestris F.W. Schmidt
1941) Viola stagnina Schult.
1942) Viola suavis M. Bieb.
1943) Viola tricolor L.
1944) Viola tricolor L. subsp. alpestris (Ging.) Ces.
1945) Viola tricolor L. subsp. ammotropha Wittr.
1946) Viola tricolor L. subsp. tricolor
1947) Viola uliginosa Besser
1948) Vulpia bromoides (L.) Gray
1949) Vulpia myurus (L.) C.C. Gmel.
1950) Wolffia arrhiza (L.) Wimm.
1951) Xanthium saccharatum Wallr.
1952) Zannichellia palustris L.
1953) Zannichellia palustris L. subsp. major (Hartm.) Oostr. et Reichg.
1954) Zannichellia palustris L. subsp. palustris
1955) Zannichellia palustris L. subsp. pedicellata (Wahlenb. et E. Rosén) Hegi
1956) Zostera angustifolia (Hornem.) Rchb.
1957) Zostera marina L.
1958) Zostera noltii Hornem.

Literature on karyology analysed for this database
1) Aagaard, S.M.D.; Greilhuber, J.; Zhang, X.-C.; Wikström, N. (2009): Occurrence and evolutionary origins of polyploids in the clubmoss genus Diphasiastrum (Lycopodiaceae), Molecular Phylogenetics and Evolution, 52, p. 746-754. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.ympev.2009.05.004.
2) Ainouche, M.L.; Bayer, R.J. (1997): On the origins of the tetraploid Bromus species (section Bromus, Poaceae): insights from internal transcribed spacer sequences of nuclear ribosomal DNA, Genome, 40, p. 730-743. DOI: http://dx.doi.org/10.1139/g97-796.
3) Åkerberg, E. (1942): Cytogenetic studies in Poa pratensis and its hybrid with Poa alpina, Hereditas. Genetisk Arkiv, 28, p. 1-126. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1601-5223.1942.tb03268.x.
4) Albach, D.C.; Delgado, L.; Özgökce, F.; Martínez-Ortega, M.M.; Weiss-Schneeweiss, H.; Fischer, M.A. (2008): Chromosome numbers in Veroniceae (Plantaginaceae): review and several new counts, Annals of the Missouri Botanical Garden, 95, p. 543-566. DOI: http://dx.doi.org/10.3417/2006094.
5) Albach, D.C.: Unpublished chromosome count
6) Albach, D.C.; Greilhuber, J. (2004): Genome Size Variation and Evolution in Veronica, Annals of Botany, 94, p. 897–911. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mch219.
7) Albers, F. (1972): Cytotaxonomie und B-Chromosomen bei Deschampsia caespitosa (L.) P.B. und verwandten Arten, Beiträge zur Biologie der Pflanzen, 48, p. 1-62.
8) Albers, F. (1972): Cytosystematische Untersuchungen in der Subtribus Deschampsiineae Holub (Tribus Aveneae Nees.). II. Die Gattungen Vahlodea Fr. und Avenella Koch., Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 85, p. 279-285. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1972.tb04127.x.
9) Albers, F. (1973): Zwei Ausgangskaryotypen bei der Gräser-Gattung Aira L., Oesterreichische Botanische Zeitschrift. Gemeinnütziges Organ für Botanik, 121, p. 251-254. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01373974.
10) Albers, F. (1973): Cytosystematische Untersuchungen in der Subtribus Deschampsiineae Holub (Tribus Aveneae Nees) I. Zwei Arten der Gattung Corynephorus P. B., Preslia, 45, p. 11-18.
11) Albers, F. (1975): Pollenmorphologie und Chromosomenzahlen der Poaceen-Subtribus Deschampsiinae Holub, Grana; an international journal of palynology including “World pollen and spore flora", 15, p. 7-17.
12) Albers, F. (1978): Beitrag zur Taxonomie, Systematik und Evolution der Subtriben Aristaveninae und Airinae (Gramineae - Aveneae). Habilitationsschrift, Fachbereich Mathematik-Naturwissenschaften der Christian-Albrechts-Universität in Kiel, Kiel, p. 1-202.
13) Albers, F. (1978): Verlauf und Dauer der Mikrosporo- und Mikrogametogenesen bei Arten der Gräser-Subtriben Aristaveninae und Airinae (Aveneae), Beiträge zur Biologie der Pflanzen, 54, p. 353-374.
14) Albers, F.; Bennert, W. (1998): Chromosomenzahlen der Farn- und Blütenpflanzen Deutschlands. In: Wisskirchen, R.; Haeupler, H.: Standardliste der Farn- und Blütenpflanzen Deutschlands, p. 562-616, Stuttgart (Hohenheim): Eugen Ulmer
15) Albers, F.; Pusch, J. (1999): Vervollständigung und Bestätigung der Chromosomenzahlen ausgewählter mitteleuropäischer Orobanche-Sippen, Haussknechtia. Mitteilungen der Thüringischen Botanischen Gesellschaft, 7, p. 53-57.
16) Ali, T.; Runge, F.; Dutbayev, A.; Schmuker, A.; Solovyeva, I.; Nigrelli, L.; Buch, A.-K.; Xia, X.; Ploch, S.; Orren, O.; Kummer, V.; Paule, J.; Çelik, A.; Vakhrusheva, L.; Gabrielyan, I.; Thines, M. (2016): Microthlaspi erraticum (Jord.) T. Ali et Thines has a wide distribution, ranging from the Alps to the Tien Shan, Flora, 225, p. 76-81. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.flora.2016.09.008.
17) Ali, T.; Schmuker, A.; Runge, F.; Solovyeva, I.; Nigrelli,L.; Paule, J.; Buch, A.-K.; Xia, X.; Ploch, S.; Orren, O.; Kummer, V.; Linde-Laursen, I.; Ørgaard, M.; Hauser, T.B.; Ҫelik, A.; Thines, M. (2016): Morphology, phylogeny, and taxonomy of Microthlaspi (Brassicaceae: Coluteocarpeae) and related genera, Taxon, 65, p. 79-98.Supplementary data. DOI: http://dx.doi.org/10.12705/651.6.
18) Ali, T.; Muñnoz-Fuentes, V.; Buch, A.-K.; Çelik, A.; Dutbayev, A.; Gabrielyan, I.; Glynou, K.; Kachour, L.; Khaliq, I.; Kitner, M.; Nigrelli, L.; Ploch, S.; Runge, F.; Solovyeva, I.; Schmuker, A.; Vakhrusheva, L.; Xia, X.; Maciá-Vicente, J.G.; Nowak, C.; Thines, M. (2019): Out of Transcaucasia: origin of Western and Central Palearctic populations of Microthlaspi perfoliatum, Flora, 253, p. 127-141.Electronic supplement. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.flora.2019.02.012.
19) Altvater, C. (1991): Merkmalsprüfungen an Ausläufer bildenden Puccinellia distans-Pflanzen aus der Wetterau. Diplomarbeit am Fachbereich Biologie, Philipps-Universität Marburg, Marburg, p. [1-4], 1-82, I-XII, [1-2].
20) Amarell, U.; Gregor, T. (2021): Puccinellia fontana (Portal) Amarell & T. Gregor comb. et stat. nov. – ein halophytisches Gras Mittel- und Westeuropas, Kochia, 14, p. 61-73.
21) Anonymus (1964): Documented chromosome numbers of plants, Madroño; a West American Journal of Botany, 17, p. 266-268.
22) Anonymus: Unpublished chromosome count
23) Aper, J.; de Riek, J.; Mechant, E.; de Cauwer, B.; Bulcke, R.; Reheul, D. (2010): The origin of herbicide-resistant Chenopodium album: analysis of genetic variation and population structure, Weed Research, 50, p. 235-244. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-3180.2010.00777.x.
24) Arrigo, N.; de La Harpe, M.; Litsios, G.; Zozomová-Lihová, Španiel, J. Marhold, K.; Barker, M. S.; Alvarez, N. (2016): Is hybridization driving the evolution of climatic niche in Alyssum montanum ?, American Journal of Botany, 103, p. 1-10. DOI: http://dx.doi.org/10.3732/ajb.1500368.
25) Åström, H.; Hæggström, C.A. (2004): Generative reproduction in Allium oleraceum (Alliaceae), Annales Botanici Fennici, 41, p. 1-14.
26) Babcock, E.B.; Stebbins, E.B.; Jenkins, J.A. (1937): Chromosomes and phylogeny in some genera of the Crepidinae, Cytologia; international journal of cytology, Fujii Jubil. Vol., p. 188-210.
27) Baerecke, M.-L. (1944): Zur Genetik und Cytologie von Oenothera ammophila Focke, Bauri Boedijn, Beckeri Renner, parviflora L., rubricaulis Klebahn, silesiaca Renner, 38, p. 57-92.
28) Bailey, J.; Wisskirchen, R. (2006): The distribution and origins of Fallopia × bohemica (Polygonaceae) in Europe, Nordic Journal of Botany, 24, p. 173-200. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1756-1051.2004.tb00832.x.
29) Baltisberger, M. (1979): Die Artengruppe des Ranunculus polyanthemos L. in Europa. Abhandlung zur Erlangung des Titels eines Doktors der Naturwissenschaften, Eidgenössischen Technische Hochschule, Zürich, p. [1-7] 1-88, [1].
30) Baltisberger, M. (1980): Die Artengruppen des Ranunculus polyanthemos L. in Europa, Berichte der Schweizerischen Botanischen Gesellschaft, 90, p. 143-188. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-63717.
31) Baltisberger, M. (1981): Verwandtschaftsbeziehungen zwischen der Gruppe des Ranunculus polyanthemos L. und R. repens L. sowie Arten der Gruppen des R. acris L. und des R. bulbosus L., Botanica Helvetica, 91, p. 61-74. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-64302.
32) Bäppler, H.; Bennert, H.W.; Rasbach, H. (1992): Dryopteris oreades (Kleiner Wurmfarn) in Nordrhein-Westfalen bestätigt, Floristische Rundbriefe. Zeitschrift für floristische Geobotanik, Populationsökologie und Systematik, 26, p. 57-62.
33) Baquar, S.R.; Reese, G. (1965): Cytotaxonomische und gaschromatographische Untersuchungen an norddeutschen Mentha-Formen, Pharmazie, 20, p. 159-168, 214-220.
34) Bär, A. (2002): Cytologischer Nachweis von Dryopteris x ambroseae Fraser-Jenkins & Jermy in Bayern, Mitteilungen des Naturwissenschaftlichen Arbeitskreises der Volkshochschule Kempten (Allgäu), 38, p. 67-74.
35) Bär, A. (2020): Der Dryopteris affinis-Komplex (Dryopteridaceae) im Harz – Identifizierung, Verbreitung, Ökologie, Tuexenia. Mitteilungen der floristisch-soziologischen Arbeitsgemeinschaft. Neue Serie, 40, p. 345–371.Anhang E1. DOI: http://dx.doi.org/10.14471/2020.40.011.
36) Bär, A.; Eschelmüller, A. (1976): Allgäuer Orchideenstreiflicht "Orchis maculata", Mitteilungen des Naturwissenschaftlichen Arbeitskreises Kempten/Allgäu, 20, p. 9-16.
37) Bär, A.; Eschelmüller, A. (1984): Diploide Dryopteris affinis (Lowe) Fraser-Jenkins im Allgäu, Mitteilungen des Naturwissenschaftlichen Arbeitskreises Kempten/Allgäu, 26, p. 7-20.
38) Bär, A.; Eschelmüller, A. (1985): Tetraploide und pentaploide Dryopteris x tavelii - jetzt im Allgäu bestätigt, Mitteilungen des Naturwissenschaftlichen Arbeitskreises Kempten/Allgäu, 27, p. 57-68.
39) Bär, A.; Eschelmüller, A. (1989): Beitrag zur Kenntnis von Dryopteris affinis (Lowe) Fraser-Jenkins und von Bastarden mit Dryopteris filix-mas, Mitteilungen des Naturwissenschaftlichen Arbeitskreises der Volkshochschule Kempten (Allgäu), 29, p. 25-48.
40) Bär, A.; Eschelmüller, A. (1990): Dryopteris x complexa nssp. contorta Fraser-Jenkins - ein seltener Farnbastard in Bayern, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 61, p. 91-97.
41) Bär, A.; Eschelmüller, A. (1991): Beitrag zur Kenntnis von Dryopteris affinis (Lowe) Fraser-Jenkins und von Bastarden mit Dryopteris filix-mas. 2.Teil, Mitteilungen des Naturwissenschaftlichen Arbeitskreises der Volkshochschule Kempten (Allgäu), 30, p. 51-54.
42) Bär, A.; Eschelmüller, A. (1993): Beitrag zur Kenntnis von Dryopteris affinis (Lowe) Fraser-Jenkins und von Bastarden mit Dryopteris filix-mas. 3. Teil, Mitteilungen des Naturwissenschaftlichen Arbeitskreises der Volkshochschule Kempten (Allgäu), 32, p. 11-14.
43) Bär, A.; Eschelmüller, A. (1995): Beitrag zur Kenntnis von Dryopteris affinis (Lowe) Fraser-Jenkins und von Bastarden mit Dryopteris filix-mas. 4. Teil, Mitteilungen des Naturwissenschaftlichen Arbeitskreises der Volkshochschule Kempten (Allgäu), 33, p. 21-26.
44) Bär, A.; Eschelmüller, A. (1995): Beitrag zur Kenntnis von Dryopteris affinis (Lowe) Fraser-Jenkins und von Bastarden mit Dryopteris filix-mas. 4. Teil, Mitteilungen des Naturwissenschaftlichen Arbeitskreises der Volkshochschule Kempten (Allgäu), 33, p. 21-26.
45) Bär, A.; Eschelmüller, A. (1999): Beitrag zur Kenntnis von Dryopteris affinis (Lowe) Fraser-Jenkins und von Bastarden mit Dryopteris filix-mas. 5. Teil, Mitteilungen des Naturwissenschaftlichen Arbeitskreises der Volkshochschule Kempten (Allgäu), 36, p. 11-16.
46) Bär, A.; Eschelmüller, A. (2007): Aktuelle Taxonomie und Übersicht unserer Funde von Dryopteris affinis (Lowe) Fraser-Jenkins und von Bastarden mit Dryopteris filix-mas, Mitteilungen des Naturwissenschaftlichen Arbeitskreises der Volkshochschule Kempten (Allgäu), 42, p. 21-35.
47) Bär, A.; Eschelmüller, A. (2010): Farnstudien: Einige pentaploide Bastarde von Dryopteris filix-mas mit triploiden Vertretern der Dryopteris affinis-Gruppe, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 80, p. 119-140.
48) Bartelheim, S. (1995): Biosystematische Untersuchungen im Cardamine pratensis-Komplex (Brassicaceae) und verwandten Arten. Rubisco- und Isoenzymanalysen. Dissertation zur Erlangung des Doktorgrades, Naturwissenschaften im Fachbereich Biologie/Chemie der Universität Osnabrück, Osnabrück, p. [1-10], 1-154, [1-2].
49) Barth, U.; Frisch, A.; Gregor, T. (1995): Zum Vorkommen der Roß-Minze - Mentha longifolia (Linnaeus) Hudson - in der Rhön, Beiträge zur Naturkunde in Osthessen, 30, p. 181-183.
50) Barth, U.; Dunkel, F.; Gregor, T. (2005): Festuca heteromalla in der Rhön, Botanik und Naturschutz in Hessen, 18, p. 5-13.
51) Basler, A. (1972): Cytotaxonomische Untersuchungen an der Boraginaceen-Gattung Symphytum L. Untersuchungen an überwiegend norddeutschen Pflanzen der Arten S. asperum Lepech., S. officinale L. und S. x uplandicum Nym., Botanische Jahrbücher für Systematik, Pflanzengeschichte und Pflanzengeographie, 92, p. 508-553.
52) Bäßler, M. (1959): Beitrag zur Taxonomie des Formenkreises um Achillea nobilis L. und A. virescens (Frenzl) Heimerl. Diplomarbeit, Universität Jena, Jena, p. I-III, 1-190, Taf. 1-11, [1].
53) Bauer, J. (2016): Notizen zur Flora des Allgäus aus dem Jahr 2015, Naturkundliche Beiträge aus dem Allgäu, 51, p. 19-32.
54) Baumberger, H. (1970): Chromosomenzahlbestimmungen und Karyotypanalysen bei den Gattungen Anemone, Hepatica und Pulsatilla, Berichte der Schweizerischen Botanischen Gesellschaft, 80, p. 17-95.
55) Behre, K. (1929): Physiologische und zytologische Untersuchungen über Drosera, Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 7, p. 208-306. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01916031.
56) Benl, G.; Eschelmüller, A. (1983): Zum Vorkommen weniger bekannter Dryopteris-Sippen im bayerischen Alpen- und Voralpenraum, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 54, p. 77-102.
57) Bennert, W. (2012): Fundmeldung 25/9 [Asplenium trichomanes subsp. trichomanes], Botanik und Naturschutz in Hessen, 25, p. 94-95.
58) Bennert, W.; Lubienski, M.; Körner, S.; Steinberg, M. (2005): Triploidy in Equisetum subgenus Hippochaete (Equisetaceae, Pteridophyta), Annals of Botany, 95, p. 807-815. DOI: http://dx.doi.org/ 10.1093/aob/mci084.
59) Bennert, H.W.; Horn, K.; Kauth, M.; Fuchs, J.; Bisgaard Jakobsen, I.S.; Øllgaard, B.; Schnittler, M.; Steinberg, M.; Viane, R. (2011): Flow cytometry confirms reticulate evolution and reveals triploidy in Central European Diphasiastrum taxa (Lycopodiaceae, Lycophyta), Annals of Botany, 108, p. 867-876. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcr208.
60) Bennert, H.W.; Jäger, W.; Bäppler, H.; Lubienski, M., Thienemann, R., Viane, R. & Sarazin, A. (2012): Dryopteris expansa (C. Presl) Fraser-Jenkins & Jermy und D. ×ambroseae Fraser-Jenk. & Jermy (Dryopteridaceae) in Nordrhein-Westfalen – Identifizierung, Verbreitung, Ökologie, Decheniana. Verhandlungen des Naturhistorischen Vereins der Rheinlande und Westfalens, 165, p. 37–53.
61) Bennert, H.W.; Neikes, N.; Gausmann, P.; Jäger, W.; Lubienski, M.; Viane, R. (2013): Erstnachweis von Dryopteris affinis s. str. (Dryopteridaceae, Pteridophyta) für Nordrhein-Westfalen, Kochia, 7, p. 87-107.
62) Bennert, W.: Unpublished chromosome count
63) Berger, B. (1968): Entwicklungsgeschichtliche und chromosomale Ursachen der verschiedenen Kreuzungsverträglichkeit zwischen Arten des Verwandtschaftskreises Arabidopsis, Beiträge zur Biologie der Pflanzen, 45, p. 171-212.
64) Bernardes, E.C.S.; Benko-Iseppon, A.M.; Vasconcelos, S.; Carvalho, R.; Brasileiro-Vidal, A.C. (2013): Intra- and interspecific chromosome polymorphisms in cultivated Cichorium L. species (Asteraceae), Genetics and molecular biology, 36, p. 357-363. DOI: http://dx.doi.org/0.1590/S1415-47572013005000025.
65) Bernhardt, P.D.H.; Dillenberger, M.S.; Kadereit, J.W. (2020): Identität, Verbreitung und mögliche Verwandtschaft von Elymus arenosus, Kochia, 15, p. 1-10.
66) Berthold, G. (2005): 1158. Fundmeldung [Callitriche obtusangula], Botanik und Naturschutz in Hessen, 18, p. 67.
67) Beuret, É. (1974): Cytologie et distribution de Trisetum distichophyllum (Vill.) p.B. et Trisetum argenteum (Willd.) Roem. et Schult, Bulletin de la Société Neuchâteloise des Sciences Naturelles, 97, p. 235-247. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-89055.
68) Bismark, S.; Bässler, M. (1974): Beiträge zur Cytologie einiger Sippen aus der Flora der DDR, Gleditschia. Beiträge zur botanischen Taxonomie und deren Grenzgebiete, 2, p. 17-28, taf. X.
69) Bisse, J. (1963): Ein Beitrag zur Kenntnis der deutschen Orchideenflora, Feddes Repertorium specierum novarum regni vegetabilis; Zeitschrift für systematische Botanik, 67, p. 181-189, tab. XIX-XXI.
70) Biste, C. (1978): Zytotaxonomische Untersuchungen des Formenkreises Achillea millefolium (Asteraceae) in der DDR, Feddes Repertorium. Zeitschrift für Botanische Taxonomie und Geobotanik, 88, p. 533-613. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/fedr.19780880902.
71) Björkman, S.O. (1951): Chromosomestudies in Agrostis. (A preliminary report.), Hereditas. Genetisk Arkiv, 37, p. 465-468. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1601-5223.1951.tb02904.x.
72) Björkqvist, I. (1968): Studies in Alisma L. II. Chromosome studies, crossing experiments and taxonomy, Opera botanica a Societate Botanice Lundensi, 19, p. 1-138.
73) Bleeker, W. (1997): Über Vorkommen von Cardamine dentata Schultes (Brassicaceae) in Nordwestdeutschland, Floristische Rundbriefe. Zeitschrift für floristische Geobotanik, Populationsökologie und Systematik, 31, p. 145-150.
74) Bleeker, W. (2000): Evolutionsprozesse und Biogeographie in Hybridkomplexen. Biosystematische Untersuchungen natürlicher Hybridzonen in Rorippa SCOP. (Brassicaceae). Dissertation zur Erlangung des Doktorgrades der Naturwissenschaften, Fachbereich Biologie/Chemie der Universität Osnabrück, Osnabrück, p. [1-5], 1-122, [1-3].
75) Bleeker, W.; Hurka, H.; Koch, M. (1997): Zum Vorkommen und zur Morphologie von Nasturtium sterile (Airy Shaw) Oef. in Südwestniedersachsen und angrenzenden Gebieten, Floristische Rundbriefe. Zeitschrift für floristische Geobotanik, Populationsökologie und Systematik, 31, p. 1-8.
76) Bleeker, W.; Huthmann, M.; Hurka, H. (1999): Evolution of hybrid taxa in Nasturtium R.Br. (Brassicaceae), Folia Geobotanica. A Journal of Plant Ecology and Systematics, 34, p. 421-433.
77) Bleeker, W.; Buchholz, A.; Welk, E. (2007): Rorippa islandica (Oeder ex Murray) Borbás s. str. in Deutschland, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 77, p. 145-154.
78) Bleeker, W.; Klausmeyer, S.; Peintinger, M.; Dienst, M. (2008): DNA sequences identify invasive alien Cardamine at Lake Constance, Biological conservation; international quarterly journal devoted to scientific protection of plant and animal wildlife and all nature throughout the world, 141, p. 692-698. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.biocon.2007.12.015.
79) Bleeker, W.; Hurka, H. (1997): Verbreitung und Ökologie von Nasturtium x sterile (Airy Shaw) Oef. (Brassicaceae) in Mitteleuropa, Osnabrücker Naturwissenschaftliche Mitteilungen, 23, p. 57-67.
80) Bleeker, W.; Matthies, A. (2005): Hybrid zones between invasive Rorippa austriaca and native R. sylvestris (Brassicaceae) in Germany: ploidy levels and patterns of fitness in the field, Heredity; an international journal of genetics, 94, p. 664-670. DOI: http://dx.doi.org/10.1038/sj.hdy.6800687.
81) Bleier, H. (1925): Chromosomenstudien bei der Gattung Trifolium, Jahrbücher für Wissenschaftliche Botanik, 64, p. 604-636.
82) Böcher, W. (1944): The Leaf Size of Veronica officinalis in Relation to Genetic and Environmental Factors, Dansk botanisk arkiv, 11, p. 1-20.
83) Böcher, T.W. (1960): Experimental and cytological studies on plant species V. The Campanula rotundifolia complex, Biologiske skrifter, 11, p. 1-69, pl. I-XIV.
84) Böcher, W. (1961): Experimental and Cytological Studies on Plant Species VI. Dactylis glomerata and Anthoxanthum odoratum, Botanisk Tidsskrift, 56, p. 314-358.
85) Böcher, W. (1975): Experimental and Cytological Studies on Plant Species XIII Clinopodium vulgare L., Botanisk Tidsskrift, 70, p. 152-179.
86) Böcher, W.; Larsen, K.; Rahn, K. (1953): Experimental and cytological studies on plant species. I. Kohlrauschia prolifera and Plantago coronopus, Hereditas. Genetisk Arkiv, 39, p. 289-304. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1601-5223.1953.tb03421.x.
87) Böcher, T.W.; Larsen, K. (1955): Chromosome Studies on some European Flowering Plants, Botanisk Tidsskrift, 52, p. 125-132.
88) Böcher, T.W.; Larsen, K. (1958): Geographical Distribution of Initiation of Flowering, Growth Habit, and Other Characters in Holcus lanatus L., Botaniska Notiser, 111, p. 289-300.
89) Bochumer Botanischer Verein (2011): Bemerkenswerte Pflanzenvorkommen in Bochum (Nordrhein-Westfalen) und Umgebung im Jahr 2010, Jahrbücher des Bochumer Botanischen Vereins, 2, p. 144-182.
90) Bochumer Botanischer Verein (2013): Bemerkenswerte Pflanzenvorkommen in Bochum (Nordrhein-Westfalen) und Umgebung im Jahr 2012, Jahrbücher des Bochumer Botanischen Vereins, 4, p. 135-155.
91) Bochumer Botanischer Verein (2014): Beiträge zur Flora Nordrhein-Westfalens aus dem Jahr 2013, Jahrbücher des Bochumer Botanischen Vereins, 5, p. 130-163.
92) Bochumer Botanischer Verein (2015): Beiträge zur Flora Nordrhein-Westfalens aus dem Jahr 2014, Jahrbücher des Bochumer Botanischen Vereins, 6, p. 141-174.
93) Bochumer Botanischer Verein (2016): Beiträge zur Flora Nordrhein-Westfalens aus dem Jahr 2015, Jahrbücher des Bochumer Botanischen Vereins, 7, p. 115-151.
94) Bochumer Botanischer Verein (2018): Beiträge zur Flora Nordrhein-Westfalens aus dem Jahr 2017, Jahrbücher des Bochumer Botanischen Vereins, 9, p. 115-161.
95) Boedijn, K. (1924): Die systematische Gruppierung der Arten von Oenothera, Zeitschrift für induktive Abstammungs- und Vererbungslehre, 32, p. 354-362. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01816761.
96) Boeuf, R.: Unpublished chromosome count
97) Bogenrieder, A. (): Vergleichende physiologisch-ökologische Untersuchungen an Populationen subalpiner Pflanzen aus Schwarzwald und Alpen. Inaugural-Dissertation, Fakultät für Biologie der Albrecht-Ludwigs-Universität zu Freiburg i. Br., Freiburg, p. 1-162, [1-2].
98) Bogenrieder, A.; Stietencron, A. von (1985): Morphologische und cytologische Untersuchungen an Anthoxanthum alpinum A. & D. Löve und Anthoxanthum odoratum L. vom Feldberg im Schwarzwald, Carolinea; Beiträge zur naturkundlichen Forschung in Südwestdeutschland, 42, p. 51-56.
99) Bohne, E. (1963): Zur Taxonomie und Cytologie des Formenkreises Phleum alpinum - pratense des obersten Westerzgebirges. Diplomarbeit, Institut für Spezielle Botanik, Friedrich-Schiller-Universität Jena, Jena, p. [1-2], 1-76.
100) Bönsel, D.; Gregor, T.; Paule, J.; Schmidt, P. (2016): Gibt es das Kahle Ferkelkraut (Hypochaeris glabra) heute noch in Hessen?, Botanik und Naturschutz in Hessen, 29, p. 5-10.
101) Borgen, L.; Hultgård, U.-M. (2003): Parnassia palustris: a genetically diverse species in Scandinavia, Botanical Journal of the Linnean Society, 142, p. 347–372. DOI: http://dx.doi.org/10.1046/j.1095-8339.2003.00186.x.
102) Borho, D. (2020): Sind die Zytotypen Amelanchier ovalis subsp. ovalis und subsp. embergeri im Lechtal morphologisch unterscheidbar?. Bachelorarbeit, Hochschule Weihenstephan-Triesdorf, Fakultät Wald und Forstwirtschaft, Freising, p. 32 + [1], CD.
103) Borrill, M.; Tyler, B.F.; Morgan, W.G. (1976): Studies in Festuca 7. Chromosome atlas (Part 2). An appraisal of chromosome race distribution and ecology, including F. pratensis var. apennina (De Not.) Hack,- tetraploid, Cytologia; international journal of cytology, 41, p. 219-236. DOI: http://dx.doi.org/10.1508/cytologia.41.219.
104) Brandberg, B. (1948): On the chromosome numbers of some species of Festuca sect. Ovinae, Arkiv för Botanik, 33B, p. 1-4.
105) Brandt, J.-P. (1961): Cytotaxinomie et cytogéographie de Veronica prostrata L., Bulletin de la Société Neuchâteloise des Sciences Naturelles, 84, p. 35-88. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-88908.
106) Bräutigam, S.; Bräutigam, E. (1996): Determination of the ploidy level in the genus Hieracium L. subgenus Pilosella (Hill) S. F.Gray by flow cytometric DNA analysis, Folia Geobotanica & Phytotaxonomica, 31, p. 315-321. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF02815376.
107) Bresinsky, A.; Grau, J. (1970): Zur Chorologie und Systematik von Biscutella im Bayerischen Alpenvorland, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 42, p. 101-108.
108) Bressler, S. (2011): Karyogeografie des Valeriana officinalis – Aggregats in Mitteleuropa. Diplomarbeit, Wien, Wien, p. [1-4], 1-92, [1].
109) Bressler, S.; Klatte-Asselmeyer, V., Fischer, A.; Paule, J.; Dobeš, C. (2017): Variation in genome size in the Valeriana officinalis complex resulting from multiple chromosomal evolutionary processes, Preslia, 89, p. 41-61.Electronic appendix. DOI: http://dx.doi.org/10.23855/preslia.2017.041.
110) Brunsberg, K. (1965): The Usefulness of Thin-Layer Chromatographic Analysis of Phenolic Compounds in European Lathyrus L., Botaniska Notiser, 118, p. 377-402.
111) Brunsberg, K. (1977): Biosystematics of the Lathyrus pratensis complex, Opera botanica a Societate Botanice Lundensi, 42, p. 1-78.
112) Bryan, V.S. (1973): Chromosome Studies on Mosses from Austria, Czechoslovakia and Other Parts of Central Europe, Oesterreichische Botanische Zeitschrift. Gemeinnütziges Organ für Botanik, 121, p. 187-226. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01373972.
113) Büchler, W. (1996): Neue Chromosomenzählung in der Gattung Salix. 2. Teil, Botanica Helvetica, 96, p. 135-143.
114) Bugge, G. (1991): Untersuchungen der Sippen des Achillea-millefolium-Komplexes auf Azulengehalt und Ploidiegrad, Angewandte Botanik; Zeitschrift für Erforschung der Nutzpflanzen. Organ der Vereinigung für Angewandte Botanik, 65, p. 331-339.
115) Bujnoch, W. (1996): Dryopteris affinis (Lowe) Fraser-Jenkins ssp. affinis (Pteridophyta) in der Umgebung von Mettlach I Saar. Teil 1., Dendrocopus. Faunistik, Floristik und Naturschutz im Regierungsbezirk Trier, 23, p. 221-223.
116) Bujnoch, W. (1997): Farnbastarde im RBZ Trier II. Polystichum x bicknellii (Christ) Hahne, Dendrocopus. Faunistik, Floristik und Naturschutz im Regierungsbezirk Trier, 24, p. 133-136.
117) Bujnoch, W. (2007): Cystopteris dickieana R. SIM in der Eifel (Rheinland-Pfalz/Deutschland) - Standort, mikroskopische Messungen, Cytologie, Dendrocopus. Faunistik, Floristik und Naturschutz im Regierungsbezirk Trier, 34, p. 111-119.
118) Bujnoch, W. (2015): A contribution to the phylogeny of Dryopteris remota by genotyping of a fragment of the nuclear PgiC gene, Fern gazette; the journal of the British pteridological Society, 20, p. 79-89.
119) Bujnoch, W.; Zenner, G. (1996): Farnbastarde im RBZ Trier: 1. Dryopteris X deweveri (Jansen) Jansen et Wachter (= Dryopteris dilatata x Dryopteris carthusiana), Dendrocopus. Faunistik, Floristik und Naturschutz im Regierungsbezirk Trier, 23, p. 224-227.
120) Buono, D.; Khan, G.; Hagen, K.B. von, Kosachev, P.A.; Mayland-Quellhorst, E.; Mosyakin, S.L.; Albach, D.C. (2020): Comparative Phylogeography of Veronica spicata and V. longifolia (Plantaginaceae) Across Europe: Integrating Hybridization and Polyploidy in Phylogeography, Frontiers in Plant Science, 11Supplementary Material. DOI: http://dx.doi.org/10.3389/fpls.2020.588354.
121) Burdet, H.M. (1967): Contribution a l'etude caryologique des genres Cardaminopsis, Turritis et Arabis en Europe, Candollea. Organe du Conservatoire et du Jardin Botaniques de la Ville de Genève, 22, p. 107-156.
122) Bureš, P.; Rotreklová, O.; Stoneberg Holt, S.D.; Pikner, R. (2004): Cytogeographical survey of Eleocharis subser. Eleocharis in Europe 1: Eleocharis palustrus, Folia Geobotanica. A Journal of Plant Ecology and Systematics, 39, p. 235-257. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF02804780.
123) Buttler, K.P. (1967): Zytotaxonomische Untersuchungen an Mittel- und südeuropäischen Draba-Arten, Mitteilungen der Botanischen Staatssammlung München, 6, p. 275-362.
124) Buttler, K.P. (1982): Ein Neufund von Lathyrus nissolia L. bei Frankfurt, Hessische Floristische Briefe, 31, p. 14-16.
125) Buttler, K.P. (1983): Chromosomenzahlen aus Hessen und dem angrenzenden Bayern, 1. Folge, Hessische Floristische Briefe, 32, p. 23-26.
126) Buttler, K.P. (1984): Chromosomenzahlen von Gefäßpflanzen aus Hessen (und dem angrenzenden Bayern), 2. Folge, Hessische Floristische Briefe, 33, p. 46-48.
127) Buttler, K.P. (1985): Chromosomenzahlen von Gefäßpflanzen aus Hessen (und dem angrenzenden Bayern), 3. Folge, Hessische Floristische Briefe, 34, p. 37-42.
128) Buttler, K.P. (1989): Chromosomenzahlen von Gefäßpflanzen aus Hessen, 4. Folge, Hessische Floristische Briefe, 38, p. 11-14.
129) Buttler, K.P.; Bresinsky, A. (1966): Beitrag zur Zytologie von Galium ser. Sylvatica, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 39, p. 25-28.
130) Buttler, K.P.; Elsner, O. (1990): Galium schultesii im Frankenwald, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 61, p. 77-90.
131) Buttler, K.P.; Gregor, T. (2008): Neotypisierung von Potentilla incana. Festlegung des nomenklatorischen Standards für das Sand-Fingerkraut, Jahresbericht der Wetterauischen Gesellschaft für die Gesammte Naturkunde zu Hanau, 158, p. 157-169.
132) Buttler, K.P.: Unpublished chromosome count
133) Buttler, K.P.; Meinunger, L. (1990): Zur Kenntnis von Galium schultesii Vest in Thüringen und Franken, Haussknechtia. Mitteilungen der Thüringischen Botanischen Gesellschaft, 5, p. 29-44.
134) Buttler, K.P.; Schnedler, W. (1973): Beta corolliflora, nicht Beta trigyna bei Blasbach (Kr. Wetzlar), Hessische Floristische Briefe, 22, p. 58-61.
135) Buttler, K.P.; Stieglitz, W. (1976): Floristische Untersuchungen im Meßtischblatt 6417 (Mannheim-Nordost), Beitrage zur Naturkundlichen Forschung in Südwestdeutschland, 35, p. 9-51.
136) Buttler, K.P.; Vogt, R. (2020): Chromosomenzahlen in der Gattung Leucanthemum Mill. (Compositae –Anthemideae) in Deutschland, Kochia, 13, p. 1-16.
137) Caković, D.; Cresti, L.; Stešević, D.; Schönswetter, P.; Frajman, B. (2021): High genetic and morphological diversification of the Euphorbia verrucosa alliance (Euphorbiaceae) in the Balkan and Iberian peninsulas , TaxonSupporting information. DOI: http://dx.doi.org/doi.org/10.1002/tax.12427.
138) Cartier, D. (1971): Étude biosystématique de quelques espèces du genre Plantago (Tourn.) L. (sections Coronopus D. C. et Oreades Decne.). I. - Historique, races chromosomiques du Plantago alpina L. et du Plantago serpentina All., Revue générale de botanique, 78, p. 493-556.
139) Casper, S.J.; Manitz, H. (1975): Beiträge zur Taxonomie und Chorologie der mitteleuropäischen Utricularia-Arten 2. Androsporogenese, Chromosomenzahlen und Pollenmorphologie, Feddes Repertorium. Zeitschrift für Botanische Taxonomie und Geobotanik, 86, p. 211-232. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/fedr.19750860403.
140) Casper, S. J.; Stimper, R. (2006): New and revised chromosome numbers in Pinguicula (Lentibulariaceae), Haussknechtia. Mitteilungen der Thüringischen Botanischen Gesellschaft, 11, p. 3-8.
141) Casper, S. J.; Stimper, R. (2009): Chromosome numbers in Pinguicula (Lentibulariaceae): survey, atlas, and taxonomic conclusions, Plant Systematics and Evolution, 277, p. 21-60. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s00606-008-0097-9.
142) Castro, S.; Loureiro; J.; Procházka, T.; Münzbergová, Z. (2012): Cytotype distribution at a diploid–hexaploid contact zone in Aster amellus (Asteraceae), Annals of Botany, 110, p. 1047-1055. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcs177.
143) Çelebioglu, T.; Favarger, C. (1988): Correlation entre le nombre d'étamines par fleur et le nombre chromosomique chez Minuartia hybrida (Vill.) Schischkin (Caryophyllaceae), Naturalia Monspeliensia. Série botanique, 53, p. 3-15.
144) Čertner, M.; Fenclová, E.; Kúr, P.; Kolář, P.; Koutecký, P.; Krahulcová, A.; Suda, J. (2017): Evolutionary dynamics of mixed-ploidy populations in an annual herb: dispersal, local persistence and recurrent origins of polyploids, Annals of Botany, 120, p. 303-315.Supplementary Data. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcx032.
145) Cesca, G.; Muzzi, D. (1972): Ricerche citotassonomiche nelle Euphorbiaceae: Euphorbia angulata Jacq. ed E. dulcis L., Giornale botanico Italiano, 106, p. 89-99.
146) Chrtek, J.; Zahradníček, J.; Krak, K.; Fehrer, J. (2009): Genome size in Hieracium subgenus Hieracium (Asteraceae) is strongly correlated with major phylogenetic groups, Annals of Botany, 104, p. 161-178.Supplementary Data. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcp107.
147) Chrtková-Žertová, A. (1973): The Cytotaxonomic Study of the Vicia cracca Complex 2. The Taxa of the Southern Part of Northern Europe, Folia Geobotanica & Phytotaxonomica, 8, p. 249-253. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF02852826.
148) Chumová, Z.; Krejčíková, J.; Mandáková, T.; Suda, J.; Trávníček, P. (2015): Evolutionary and Taxonomic Implications of Variation in Nuclear Genome Size: Lesson from the Grass Genus Anthoxanthum (Poaceae), PLOS ONE, 10, p. e0133748.Supporting Information. DOI: http://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0133748.
149) Cleland, R.E.; Oehlkers, F. (1930): Erblichkeit und Zytologie verschiedener Oenotheren und ihrer Kreuzungen, Jahrbücher für Wissenschaftliche Botanik, 73, p. 1-124.
150) Clevering, O.A.; Lissner, J. (1999): Taxonomy, chromosome numbers, clonal diversity and population dynamics of Phragmites australis, Aquatic botany; international scientific journal dealing with applied and fundamental research on submerged floating and emergent plants in marine and freshwater ecosystems, 64, p. 185-208. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/S0304-3770(99)00059-5.
151) Cole, M.J. (1962): Interspecific relationships and intraspecific vartiation of Chenopodium album L. in Britain. II. The chromosome numbers of C. album and other species, Watsonia. Journal of the Botanical Society of the British Isles, 5, p. 117-122.
152) Collins, A.E.; Naderi, R.; Mueller-Schaerer, H. (2011): Competition between cytotypes changes across a longitudinal gradient in Centaurea stoebe (Asteraceae), American Journal of Botany, 98, p. 1935-1942. DOI: http://dx.doi.org/10.3732/ajb.1100063.
153) Comes, H.-P.; Kadereit, J.W. (1990): Aspects of Hybridization between the Closely Related Senecio vulgaris L. and Senecio vernalis Waldst. & Kit., Flora, 184, p. 381-388.
154) Cook, C.D.K. (1962): Studies on Ranunculus L. subgenus Batrachium (DC.) A. Gray I. Chromosome numbers, Watsonia. Journal of the Botanical Society of the British Isles, 5, p. 123-126.
155) Cook, C.D.K. (1963): Studies in Ranunculus subgenus Batrachium (DC.) A. Gray II. General morphological considerations in the taxonomy of the subgenus, Watsonia. Journal of the Botanical Society of the British Isles, 5, p. 294-303.
156) Cook, C.D.K. (1966): A monographic study of Ranunculus subgen. Batrachium (DC.) A. Gray, Mitteilungen der Botanischen Staatssammlung München, 6, p. 47-237.
157) Crowder, L.V. (1956): Morphological and Cytological Studies in Tall Fescue (Festuca arundinacea Schreb.) and Meadow Fescue (F. elatior L.), Botanical gazette; paper of botanical notes, 117, p. 214-223.
158) Czapik, R.; Novotná, I. (1967): Cyto-taxonomical and genetic problems of the Arabis hirsuta (L.) Scop. complex. I., Acta Biologica Cracoviensia. Series Botanica, 10, p. 167-183, pl. 25.
159) Czapik, R.; Novotná, I. (1969): Cyto-taxonomical and genetic problems of the Arabis hirsuta complex. II., Acta Biologica Cracoviensia. Series Botanica, 12, p. 35-56, pl. 14.
160) Dąbrowska, J. (1992): Chromosome number and DNA content in taxa of Achillea L. in relation to the distribution of the genus, Prace Botaniczne Universytet Wrocławskie, 49, p. 1-83, [1], pl. I-XI, tab. 9.
161) Damboldt, J. (1963): Zur Kenntnis der Flachen Bärlappe in Bayern, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 36, p. 25-28.
162) Damboldt, J. (1964): Ein Beitrag zur Kenntnis von Asplenium trichomanes L. em Huds. in Bayern, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 37, p. 5-9.
163) Damboldt, J. (1971): Zur Cytotaxonomie der Gattung Saxifraga L. IV. Weitere Untersuchungen in der Saxifraga exarata-moschata-Gruppe, Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 84, p. 705-7122. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1972.tb02734.x.
164) Damboldt, J.; Matthäs, U. (1975): Chromosomenzahlen einiger mediterraner und mitteleuropäischer Centaurea-Arten (Asteraceae), Plant Systematics and Evolution, 123, p. 107-115. DOI: https://dx.doi.org/10.1007/BF00981769.
165) Damboldt, J.; Phitos, D. (1968): Zur Cytotaxonomie einiger Arten der Gattung Silene L. (Caryophyllaceae), Verhandlungen des Botanischen Vereins der Provinz Brandenburg, 105, p. 44-51.
166) Damboldt, J.; Podlech, D. (1963): Chromosomenzahlen einiger alpiner Steinbreche, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 36, p. 29-32.
167) Dančák, M.; Duchoslav, M.; Trávníček, B. (2012): Taxonomy and cytogeography of the Molinia caerulea complex in central Europe, Preslia, 84, p. 351-374.Electronic appendix.
168) Darlington, C.D.; Gairdner, A.E. (1929): The variation system in Campanula persifolia, Journal of Genetics, 35, p. 97-128, pl. IX & X. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF02982318.
169) Darmer, G. (1944): Hippophae rhamnoides auf Hiddensee. Eine ökologisch-monographische Darstellung. Inaugural-Dissertation, Hohe Philosophische Fakultät der Ernst Moritz Arndt-Universität, Greifswald, p. [1-5], 1-120.
170) Darmer, G. (1947): Rassenbildung bei Hippophae rhamnoides (Sanddorn), Biologisches Zentralblatt, 66, p. 166-170.
171) de Litardière, R. (1943): Recherches caryologiques et caryo-taxonomiques sur les Boraginacées. II. Nombres chromosomiques dans le genre Echium, Boissiera; mémoires des Conservatoire et de l’Institut de Botanique Systématique de l’Université de Genève, 7, p. 155-165.
172) den Nijs, J.C.M. (1974): Biosystematic studies of the Rumex acetosella complex (Polygonaceae). II. The Alpine region, Acta botanica Neerlandica; an international journal of plant science, 25, p. 417-447. DOI: https://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1976.tb01079.x.
173) den Nijs, J.C.M.; Hooghiemstea, H.; Schalk, P.H. (1980): Biosystematic studies of the Rumex acetosella complex (Polygonaceae). IV. Pollen morphology and the possibilities of identification of cytotypes in pollen analysis, Phyton. Annales rei Botanicae, 20, p. 307-323.
174) den Nijs, J.C.M.; Kirschner, J.; Štepáněk, J.; van der Hulst, A. (1990): Distribution of diploid sexual plants of Taraxacum sect. Ruderalia in east-Central Europe, with special reference to Czechoslovakia, Plant Systematics and Evolution, 170, p. 71-84. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF00937850.
175) Dersch, G. (1964): Zur Cytologie und Taxonomie der Goldnessel (Lamium galeobdolon [L.] L.), Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 76, p. 351-359. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1964.tb03033.x.
176) Dersch, G. (1965): Notizen über das Vorkommen von Callitriche-Arten in (Nord-) Hessen, Hessische Floristische Briefe, 14, p. 35-44.
177) Dersch, G. (1968): Über einige Chromosomenzählungen an mitteleuropäischen Blütenpflanzen, Abhandlungen und Berichte des Vereins für Naturkunde zu Kassel, 62, p. 9-12.
178) Dersch, G. (1969): Über das Vorkommen von diploidem Wiesenschaumkraut (Cardamine pratensis L.) in Mitteleuropa, Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 82, p. 201-207. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/10.1111/j.1438-8677.1969.tb02262.x.
179) Dersch, G. (1974): Über Gagea spathacea (Hayne) Salisb. und ihre Verbreitung in den Mittelgebirgslandschaften, Floristische Rundbriefe, 8, p. 43-50.
180) Dersch, G. (1974): Über einige Chromosomenzählungen an mitteleuropäischen Blütenpflanzen II, Philippia. Abhandlungen und Berichte aus dem Naturkundemuseum im Ottoneum zu Kassel, 2, p. 75-82.
181) Dersch, G. (1978): Zur Verbreitung der Callitriche-Arten (Wassersterne) in Niedersachsen, Floristische Rundbriefe. Zeitschrift für floristische Geobotanik, Populationsökologie und Systematik, 20, p. 79-100.
182) Dersch, G. (1995 "1994"): Über Pulmonaria officinalis L., Pulmonaria obscura DUM. und ihren Bastard in Nordhessen und Südniedersachsen, Hessische Floristische Briefe, 43, p. 49-63.
183) Dersch, G. (1995): Bemerkungen über Melica transsilvanica Schur, insbesondere in Nordhessen und Westthüringen, Umweltamt der Stadt Darmstadt. Schriftenreihe, 15, p. 12-18, [1 Abb.].
184) Dersch, G. (2013): Einige Bemerkungen zu Poa remota und ihrem Bastard mit Poa chaixii (P. x pawlowskii) in Nordhessen und Südniedersachsen, Hessische Floristische Briefe, 66, p. 14-16.
185) Dersch, G.: Unpublished chromosome count
186) Dersch, G.; Mast, R. (2000): Verbreitung und Vergesellschaftung von Calamagrostis phragmitoides Hartman (Purpur-Reitgras, Poaceae) im Harz, Tuexenia. Mitteilungen der floristisch-soziologischen Arbeitsgemeinschaft. Neue Serie, 20, p. 119-129.
187) Dersch, G.; Sander, H. (1962): Über Solanum dulcamara L., Pharmazeutische Zeitung, 107, p. 1540-1541.
188) Diekjobst, H.; Bennert, H. W. (1985): Der Französische Streifenfarn (Asplenium foreziense Le Grand) neu für Deutschland, Botanische Jahrbücher für Systematik, Pflanzengeschichte und Pflanzengeographie, 106, p. 99-106.
189) Dietrich, W. (1967): Die Zytotaxonomie der Carex-Sektion Frigidae in Europa, Feddes Repertorium. Zeitschrift für Botanische Taxonomie und Geobotanik, 75, p. 1-42. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/fedr.19670750101.
190) Dietrich, H. (1972): Cytologische Untersuchungen innerhalb der Familie der Plantaginaceae I. Chromosomenzahlen einheimischer Arten der Gattungen Plantago und Littorella, Wissenschaftliche Zeitschrift der Friedrich-Schiller-Universität Jena/Thüringen. Mathematisch-naturwissenschaftliche Reihe, 72, p. 945-951.
191) Dietrich, G. (2002): Beiträge zur Biosystematik der Crocus vernus Gruppe. Diplomarbeit zur Erlangung des akademischen Grades Magister der Naturwissenschaften, Formal- und Naturwissenschaftliche Fakultät der Universität Wien, p. 1-85.
192) Dietrich, H. (1997): Systematics of Oenothera Section Oenothera Subsectio Oenothera (Onagraceae), Systematic botany monographs, 50, p. 1-234.
193) Diewald, W.; Štech, M.; Straubinger, C. (2020): Vaccinium microcarpum – erster zytometrisch gesicherter Nachweis für Deutschland, Hoppea. Denkschriften der Regensburgischen botanischen Gesellschaft, 81, p. 202-204.
194) Dillenberger, M.S.; Kadereit. J.W. (2022): The distinction between Sagina apetala and S. micropetala (Caryophyllaceae: Sagineae), their phylogenetic relationships, and a note on the coastal origin of some widespread ruderals, Willdenowia, 52, p. 5-23. DOI: http://dx.doi.org/10.3372/wi.52.52101.
195) Dirkse, G. (2022): Myosotis dubia Arrond. (Boraginaceae), Bleek vergeet-mij-nietje, in Nederland en Duitsland en hoe deze soort te onderscheiden van M. discolor Pers. (Veelkleurig vergeet-mij-nietje), Gorteria. Dutch Botanical Archives, 44, p. 16-33.
196) Dittberner, H.; Becker, C.; Jiao, W.-B.; Schneeberger, K.; Hölzel, N.; Tellier, A.; de Meaux, J. (2019): Strengths and potential pitfalls of hay transfer for ecological restoration revealed by RAD‐seq analysis in floodplain Arabis species, Molecular Ecology, 28, p. 3887–3901.Fig. S1-S8, Tab. S1-S8, App. 1-3 . DOI: http://dx.doi.org/10.1111/mec.15194.
197) Dobeš, C.; Lückl, A.; Hülber, K.; Paule, J. (2013): Prospects and limits of the flow cytometric seed screen – insights from Potentilla sensu lato (Potentilleae, Rosaceae), The New Phytologist; a British botanical journal, 198, p. 605-616. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/nph.12149.
198) Döhner, E.C. (1988): Zur Kenntnis von Systematik und Chorologie der Moosbeeren (Vaccinium oxycoccus-Gruppe) in Mitteleuropa. [Diplomarbeit], [Fachbereich Biologie - Botanik - Philipps-Universität Marburg], [Marburg], p. [1-3], I-VI, 1-43, [1-4].
199) Doll, R. (1973): Revision der sect. Erythrosperma Dahlst. emend. Lindb. f. der Gattung Taraxacum Zinn (Teil 1), Feddes Repertorium. Zeitschrift für Botanische Taxonomie und Geobotanik, 83, p. 673-740. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/fedr.19730840102.
200) Doll, R. (1977): Neue Taraxaca aus Mecklenburg. I., Gleditschia. Beiträge zur botanischen Taxonomie und deren Grenzgebiete, 5, p. 45-51.
201) Doll, R. (1982): Grundriß der Evolution der Gattung Taraxacum Zinn, Feddes Repertorium. Zeitschrift für Botanische Taxonomie und Geobotanik, 93, p. 481-624. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/fedr.19820930702.
202) Donneaux, A. (1981): Contribution à l'étude cytotaxonomique du genre Galium L. s.l. (Rubiaceae) en Belgique et dans les régions voisines, Lejeunia. Revue de Botanique, 103, p. 1-74.
203) Döpp, W. (1932): Die Apogamie bei Aspidium remotum Al. Br., Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 17, p. 86-152. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01909625.
204) Döpp, W. (1939): Cytologische und genetische Untersuchungen innerhalb der Gattung Dryopteris, Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 29, p. 481-533. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01908956.
205) Döpp, W. (1955): Experimentell erzeugte Bastarde zwischen Dryopteris filix-mas (L.) Schott und D. paleacea (Sw.) C. Christ , Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 46, p. 70-91. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01947356.
206) Döpp, W. (1955): Experimentell erzeugte Bastarde zwischen Dryopteris filix-mas (L.) Schott und D. paleacea (Sw.) C. Christ , Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 46, p. 70-91. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01947356.
207) Döpp, W. (1958): Diploide Dryopteris austriaca in Deutschland, Naturwissenschaften, 45, p. 95. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF00632814.
208) Döpp, W.: Unpublished chromosome count
209) Dörner, M.N. (1985): Untersuchungen zur Kenntnis der bayerischen Sippen von Biscutella laevigata L.. Wissenschaftliche Prüfung für das Lehramt an Gymnasien in Bayern, München, p. [1-2], 1-63.
210) Drechsler, N. (2000): Vergleichende Untersuchungen mikromorphologischer Blattmerkmale bei Eragrostis albensis und E. pilosa (Poaceae), Verhandlungen des Botanischen Vereins der Provinz Brandenburg, 133, p. 307-312.
211) Drenckhahn, D. (2016): Morphologie und Jahreszyklus von Ficaria calthifolia Rchb. – eine neu etablierte Sippe in Deutschland, Forum Geobotanicum, 7, p. 1-17. DOI: http://dx.doi.org/10.3264/FG.2016.0714.
212) Drenckhahn, D.; Baumgartner, W.; Zonneveld, B. (2017): Different genome sizes of Western and Eastern Ficaria verna lineages shed light on steps of Ficaria evolution, Forum Geobotanicum, 7, p. 27-33. DOI: http://dx.doi.org/10.3264/FG.2017.1122.
213) Drenckhahn, D.; Jansen, W.; Weber, H.E. (2018): Rubus pseudoglotta Drenckhahn & W. Jansen, eine neue deutsch-dänische Brombeerart aus dem Formenkreis des Rubus phylloglotta (Frid.) Å. Gust., Forum Geobotanicum, 8, p. 15-23. DOI: http://dx.doi.org/10.3264/FG.2018.1228.
214) Drenckhahn, D.; Zonneveld, B. (2017): Rubus viridilucidus Drenckhahn, eine neue Brombeerart aus der Sektion Corylifolii, Serie Subcanescentes, Forum Geobotanicum, 7, p. 23-42. DOI: http://dx.doi.org/10.3264/FG.2017.1221.
215) Duchoslav, M.; Šafářová, L.; Jandová, M. (2013): Role of adaptive and non-adaptive mechanisms forming complex patterns of genome size variation in six cytotypes of polyploid Allium oleraceum (Amaryllidaceae) on a continental scale, Annals of Botany, 111, p. 419–431.Supplementary data. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcs297.
216) Duchoslav, M.; Jandová, M.; Kobrlová, L.; Šafářová, L.; Brus, J.; Vojtěchová, K. (2020): Intricate Distribution Patterns of Six Cytotypes of Allium oleraceum at a Continental Scale: Niche Expansion and Innovation Followed by Niche Contraction With Increasing Ploidy Level, Frontiers in Plant Science, 111Supplementary Material. DOI: http://dx.doi.org/10.3389/fpls.2020.591137.
217) Dunkel, F.G. (2006): Neues oder Bemerkenswertes zur Flora Bayerns - Achillea roseoalba, Orobanche amethystea und andere Funde, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 76, p. 151-168.
218) Dunkel, F.G. (2007): Der Ranunculus auricomus-Komplex in Bayern. II. Neue oder vom Aussterben bedrohte Arten: Ranunculus basitruncatus Borch.-Kolb, R. kunzii W. Koch, R. irregularis sp. nov. und weitere Arten der Abstrusi ser. nov., Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 77, p. 93-116.
219) Dunkel, F.G. (2020): Der Ranunculus-auricomus-Komplex (Ranunculaceae) in Sachsen, Kochia, 15, p. 57-188.
220) Durka, W.; Michalski, S.G.; Berendzen, K.W.; Bossdorf, O.; Bucharova, A.; Hermann, J.-M.; Hölzel, N.; Kollmann, J. (2017): Genetic differentiation within multiple common grassland plants supports seed transfer zones for ecological restoration, Journal of Applied Ecology, 54, p. 116-126.Supporting Information. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/1365-2664.12636.
221) Düvel, M.; Ristow, M.; Scholz, H. (2001): Scolochloa marchica sp. nova (Poaceae), ein neues Röhrichtgras aus Mitteleuropa, Feddes Repertorium. Zeitschrift für Botanische Taxonomie und Geobotanik, 112, p. 331-341. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/fedr.4921120502.
222) Duvigneaud, J.; Lambinon, J.; Renard, R. (1976): L'epineux probleme des pulmonaires de Belgique et des regions voisines (genre Pulmonaria, Boraginaceae) Acquis et incertitudes, Les Naturalistes Belges, 57, p. 209-218.
223) Duvigneaud, I.; Lambinon, J. (1977): Une renoncule critique et meconnue de Belgique et des regions voisines: Ranunculus polyanthemoides Boreau, Dumortiera, 6, p. 11-20.
224) Earnshaw, F. (1942): Cytological Studies in Sea Plantains Allied to Plantago maritima L., The New Phytologist; a British botanical journal, 41, p. 151-164. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1469-8137.1942.tb07071.x.
225) Edeler, D.; Edeler, B. (1967): Untersuchung zur Taxonomie und Zytologie von Aster tripolium L. und Aster pannonicus Jacq.. Staatsexamensarbeit für das Lehramt an der allgemeinbildenden polytechnischen Oberschule , Universität Jena, Jena, p. [1-5], 1-56, Karten 1-2, I-XXII, [1].
226) Ehrendorfer, F. (1956): Struktur, Verbreitung und Geschichte der Sippen von Lepto-Galium in Bayern, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 31, p. 5-12.
227) Ehrendorfer, F. (1959): Spindeldefekte, mangelhafte Zellwandbildung und andere Meiosestörungen bei polyploiden Sippen des Achillea millefolium-Komplexes (Zur Phylogenie der Gattung Achillea, III), Chromosoma, 10, p. 461-481. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF00396583.
228) Ehrendorfer, F. (1962): Cytotaxonomische Beiträge zur Genese der mitteleuropäischen Flora und Vegetation, Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 75, p. 137-152. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1962.tb02520.x.
229) Ehrendorfer, F. (1962): Beiträge zur Phylogenie der Gattung Knautia (Dipsacaceae), I. Cytologische Grundlagen und allgemeine Hinweise, Oesterreichische Botanische Zeitschrift. Gemeinnütziges Organ für Botanik, 109, p. 276-343. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01289204.
230) Ekrt, L.; Holubová, R.; Trávníček, P.; Suda, J. (2010): Species boundaries and frequency of hybridization in the Dryopteris carthusiana (Dryopteridaceae) complex: A taxonomic puzzle resolved using genome size data, American Journal of Botany, 97, p. 1208-1219.Appendix S1-S2. DOI: http://dx.doi.org/10.3732/ajb.0900206.
231) Elling, B. (2008): Verwilderter Raps im Osnabrücker Land. Erfassung, Charakterisierung & Auskreuzungspotenzial. Dissertation zur Erlangung des Doktorgrades der Naturwissenschaften, Fachbereich Biologie/Chemie der Universität Osnabrück, Osnabrück, p. I-IX, 1-204.
232) Engel, K. (1976): Beiträge zur Systematik der Valerianaceae unter besonderer Berücksichtigung cytosystematischer Ergebnisse. Inauguraldissertation zur Erlangung des Doktorgrades der Naturwissenschaften, Justus Liebig - Universität Gießen (Fachbereich Biologie), Gießen, p. [0-1], I-V, 1-196, [1-3].
233) Engel, K.: Unpublished chromosome count
234) Englmaier, P. (2016): Ranunculus sect. Batrachium (Ranunculaceae): Contribution to an excursion flora of Austria and the Eastern Alps, Neilreichia, 8, p. 97-125.
235) Erben, M.: Unpublished chromosome count
236) Eren, A. (1972): Beziehungen zwischen Standortsfaktoren, morphologischen Merkmalen und physiologischen Eigenschaften sowie der Chromosomenzahl bei Wiesenrispe (Poa pratensis L.). lnaugural-Dissertation zur Erlangung des Doktorgrades, Landwirtschaftliche Fakultät der Justus Liebig-Universität Gießen, p. [1-5], 1-103, [1-2].
237) Ernst, W. (1965): Ökologisch-Soziologische Untersuchungen der Schwermetall-Pflanzengesellchaften Mitteleuropas unter Einschluß der Alpen, Abhandlungen aus dem Landesmuseum für Naturkunde zu Münster in Westfalen, 27, p. 1-48, Tab. I-III.
238) Eschelmüller, A. (1988): Dryopteris remota vom "Wachterl" keimt am besten... ("Sulzberger Protokolle" KV XI / 12 - ), Mitteilungen des Naturwissenschaftlichen Arbeitskreises Kempten/Allgäu, 28, p. 17-24.
239) Eschelmüller, A.; Bär, A. (1973): Dryopteris assimilis Walker, ein übersehener Farn aus dem Allgäu, Mitteilungen des Naturwissenschaftlichen Arbeitskreises Kempten/Allgäu, 17, p. 33-44.
240) Eschelmüller, A.; Bär, A. (2006): Beitrag zur Kenntnis von Dryopteris affinis (Lowe) Fraser-Jenkins und von Bastarden mit Dryopteris filix-mas (L.) Schott. 6. Teil, Mitteilungen des Naturwissenschaftlichen Arbeitskreises der Volkshochschule Kempten (Allgäu), 41, p. 13-22.
241) Eschelmüller, A.; Schneller, J.J. (1980): Beitrag zur Kenntnis der Variabilität von Dryopteris affinis im Allgäu, Mitteilungen des Naturwissenschaftlichen Arbeitskreises Kempten/Allgäu, 24, p. 1-12.
242) Ewald, J.; Paule, J.; Gregor, T.; Fussi, B. (2016): Neues Vorkommen von Sorbus × decipiens im Fünfseenland entdeckt, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 86, p. 260-261.
243) Borho, D.; Ewald, J.; Paule, J.; Bauer, J.; Ewald, J. (2020): Sind die Zytotypen von Amelanchier ovalis s.l. im Lechtal morphologisch unterscheidbar? , Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 90
244) Fagerlind, F. (1937): Embryologische, zytologische und bestäubungsexperimentelle Studien in der Familie Rubiaceae nebst Bemerkungen über einige Polyploiditätsprobleme, Acta Horti Bergiani, 11, p. 1-470.
245) Faltermeier, M.; Meyer, N.; Gregor, T.; Paule, J.; Lepší, M.; Fussi, B.; Koutecký, P.; Schäfer, H.; Ewald, J. (2016): Genetische und blattmorphologische Variabilität von Sorbus ratisbonensis, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 86, p. 37-56.
246) Favarger, C. (1997): Notes de caryologie alpienne VI, Bulletin de la Société Neuchâteloise des Sciences Naturelles, 120, p. 19-33. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-89455.
247) Favarger, C.; Stearn, W. T. (1983): Contribution à la cytotaxonomie de l'Amelanchier ovalis Medikus (Rosaceae), Botanical Journal of the Linnean Society, 87, p. 85-103. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1095-8339.1983.tb00985.x.
248) Favarger, C.; Villard, M. (1965): Nouvelles recherches cytotaxinomiques sur Chrysanthemum Leucanthemum L. sens. lat., Berichte der Schweizerischen Botanischen Gesellschaft, 75, p. 57-79. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-52752.
249) Fehrer, J.; Šimek, R.; Krahulcová, A.; Krahulec, F.; Chrtek, J.; Bräutigam, E.; Bräutigam, S. (2005): Evolution, hybridisation, and clonal distribution of apo- and amphimictic species of Hieracium subgen. Pilosella (Asteraceae, Lactuceae) in a Central European mountain range, Regnum vegetabile; a series of handbooks for the use of plant taxonomists and plant geographers, 143, p. 175-201.
250) Fehrer, J.; Gemeinholzer, B.; Chrtek, J.; Bräutigam, S. (2007): Incongruent plastid and nuclear DNA phylogenies reveal ancient intergeneric hybridization in Pilosella hawkweeds (Hieracium, Cichorieae, Asteraceae), Molecular Phylogenetics and Evolution, 42, p. 347-361. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.ympev.2006.07.004.
251) Ferth, R.; Speta, F.; Kopp, B. (2001): Beitrag der Cardenolide zur Taxonomie der Ornithogalum umbellatum-Verwandtschaft (Hyacinthaceae), Stapfia, 164, p. 121-138.
252) Feulner, M.; Liede-Schumann, S.; Meve, U.; Weig, A.; Aas, G. (2013): Genetic structure of three Sorbus latifolia (Lam.) Pers. taxa endemic to northern Bavaria, Plant Systematics and Evolution, 299, p. 1065-1074. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s00606-013-0778-x.
253) Feulner, M.; Pointner, S.; Heuss. L.; Aas, G.; Paule, J.; Dötterl, S. (2014): Floral scent and its correlation with AFLP data in Sorbus, Organisms, diversity and evolution; journal of the Gesellschaft für Biologische Systematik, 14, p. 339-348. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s13127-014-0180-8.
254) Feulner, M.; Weig, A.; Paule, J.; Gregor, J.; Schott, L.F.; Aas, G. (2017): Genetic variability and morphology of tri- and tetraploid members of the Sorbus aria complex in northern Bavaria, Preslia, 89, p. 275-290.Electronic appendix. DOI: http://dx.doi.org/10.23855/preslia.2017.275.
255) Fikenscher, L.H.; Hegnauer, R. (1963): Chemotaxonomische Untersuchungen der Dryopteris-Arten. 5. Die Phloroglucide der Sammelart Dryopteris filix-mas, Planta Medica, 11, p. 355-361. DOI: http://dx.doi.org/10.1055/s-0028-1100250.
256) Fischer, M. (1967): Beiträge zur Cytotaxonomie der Veronica hederifolia-Gruppe (Scrophulariaceae), Oesterreichische Botanische Zeitschrift. Gemeinnütziges Organ für Botanik, 114, p. 189-233. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01373910.
257) Franzke, A.; Hurka, H. (2000): Molecular systematics and biogeography of the Cardamine pratensis complex (Brassicaceae), Plant Systematics and Evolution, 224, p. 213-234. DOI: http://dx.doi.org/0.1007/BF00986344.
258) Franz, W.R.; Temsch, E.M. (2019): Morphologie, Verbreitung und Ploidiestufen von Birkensippen in Österreich und Oberbayern, Carinthia II, 209/129, p. 491–550.
260) Jeßen, S.; Bujnoch, W.; Zenner, G.; Stark, C. (2013): Erstfunde von Dryopteris ×brathaica Fraser-Jenk. & Reichst. (Dryopteridaceae, Pteridophyta) in Süd-Deutschland – morphologische und molekulargenetische Untersuchungen, Kochia, 7, p. 67-86.
261) Freigang, J.; Zenner, G.; Bujnoch, W.; Jessen, S.; Magauer, M. (2017): Dryopteris ×alpirsbachensis, hybr. nov. – erster Nachweis der Naturhybride zwischen Dryopteris carthusiana und Dryopteris remota (Dryopteridaceae, Pteridophyta), Kochia, 10, p. 11-33.
262) Frey, L. (1969): Chromosome numbers in the genus Scabiosa L. I., Fragmenta floristica et geobotanica, 15, p. 179-184.
263) Frey, D. (2003): Patterns of variation within the Erigeron annuus complex in the United States and Europe. Dissertation, Swiss Federal Institute of Technology, Zurich, p. [1-4] 1-77.
264) Frey, D.; Baltisberger, M.; Edwards, P.J. (2003): Cytology of Erigeron annuus s.l. and its consequences in Europe, Botanica Helvetica, 113, p. 1-14. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-74395.
265) Friesen, N.; Fritsch, R.M.; Blattner, F.R. (2006): Phylogeny and New Intrageneric Classification of Allium (Alliaceae) Based on Nuclear Ribosomal DNA ITS Sequences, Aliso, 22, p. 372–395. DOI: http://dx.doi.org/10.5642/aliso.20062201.31.
266) Fritsch, B. (1969): Chromosomen-Morphologie und -Zahlen einiger Echium-Arten. Diplomarbeit, Sektion Botanik der Friedrich-Schiller-Universität Jena, Jena, p. [1-2], 1-31, [1].
267) Fuchs, A.; Ziegenspeck, H. (1924): Aus der Monographie des Orchis Traunsteineri Saut. IV. Chromosomen einiger Orchideen., Botanisches Archiv; Zeitschrift für d. gesamte Botanik u. ihre Grenzgebiete, 5, p. 457-470.
268) Fühner, C. (2005): Das Auftreten acidophiler/calcifuger Pflanzenarten in Kalk-Halbtrockenrasen. Die Calcicolen/Calcifugen-Problematik unter edaphischen, autökologischen und synökologischen Gesichtspunkten. Dissertation zur Erlangung des Doktorgrades, Mathematisch-Naturwissenschaftlichen Fakultäten der Georg-August-Universität zu Göttingen, Göttingen, p. I-XVI, 1-316.
269) Fukarek, F.; Henker, H. (2006): , p. 425, Jena: Weissdorn
270) Gadella, T.W.J. (1962): Some cytological observations in the genus Campanula, Proceedings, Koninklijke Nederlandse Akademie van Wetenschappen. Series C, biological and medical sciences, 65, p. 269-278.
271) Gadella, T.W.J. (1963): A Cytotaxonomic Study of Viola in the Netherlands, Acta botanica Neerlandica; an international journal of plant science, 12, p. 17-39. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1963.tb00102.x.
272) Gadella, T.W.J. (1963): Some cytological observations in the genus Campanula. II, Proceedings, Koninklijke Nederlandse Akademie van Wetenschappen. Series C, biological and medical sciences, 66, p. 270-283.
273) Gadella, T.W.J. (1964): Cytotaxonomic studies in the genus Campanula, Wentia, 11, p. 1-104.
274) Gadella, T.W.J. (1972): Biosystematic studies in Hieracium pilosella L. and some related Species of the Subgenus Pilosella, Botaniska Notiser, 125, p. 361-369.
275) Gadella, T.W.J. (1984): Cytology and the mode of reproduction of some taxa of Hieracium subgenus Pilosella, Proceedings, Koninklijke Nederlandse Akademie van Wetenschappen. Series C, biological and medical sciences, 87, p. 387-399.
276) Gadella, T.W.J.; Kliphuis, E.; Huizing, H.J. (1983): Cyto- und chemotaxonomical studies on the sections Officinalia und Coerulea of the genus Symphytum, Botanica Helvetica, 93, p. 169-192. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-65245.
277) Gadella, T.H.W.; Kliphuis, E. (1972): Cytotaxonomic studies in the genus Symphytum IV. Cytogeographic investications in Symphytum officinale L., Acta botanica Neerlandica; an international journal of plant science, 21, p. 169-173. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1972.tb00761.x.
278) Galla, G; Vogel, H.; Sharbel, T.F.; Barcaccia, G. (2015): De novo sequencing of the Hypericum perforatum L. flower transcriptome to identify potential genes that are related to plant reproduction sensu lato, BMC genomics, p. 16:254. DOI: http://dx.doi.org/10.1186/s12864-015-1439-y.
279) Galland, N.; Favarger, C. (1988): Un complexe polyploide méconnu: Thlaspi perfoliatum L. agg. (Brassicaceae), Monografías del Instituto Pirenaico de Ecología, 4, p. 205-211.
280) Garcia, S.; Inceer, H.; Garnatje, T.; Vallès, J. (2005): Genome size variation in some representatives of the genus Tripleurospermum, Biológia; časopis Slovenskej akadémie vied, 49, p. 381-387. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s10535-005-0011-z.
281) Gates, R.R.; Goodwin, K.M. (1931): Meiosis in Oenothera purpurata and Oe. blandina, Proceedings of the Royal Society of London. Series B. Biological sciences, 109, p. 149-164, pl. 16-18. DOI: http://dx.doi.org/10.1098/rspb.1931.0074.
282) Gathoye, J.-L.; Tyteca, D. (1989): Contribution à l'étude cytotaxonomique des Dactylorhiza d'Europe occidentale, Mémoires de la Société Royale de Botanique de Belgique, 11, p. 30-42.
283) Gauger, W. (1937): Ergebnisse einer zytologischen Untersuchung der Familie der Geraniaceae. I, Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 26, p. 529-531. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01914322.
284) Gausmann, P. (2020 "2019"): Vorkommen und Verbreitung von Farnpflanzen im Stadtbereich von Bochum im Mittleren Ruhrgebiet (Nordrhein-Westfalen), Floristische Rundbriefe, 53, p. 31-94.
285) Geber, G. (1989): Zur Karyosystematik der Lemnaceae. Dissertation, Universität Wien, Wien, p. 1-140.
286) Gelbrecht, J.; Hamel, G.; Reinhardt, J. (1984): Über eine unbeschriebene Form der Epipactis atrorubens, Mitteilungen des Arbeitskreises ,,Heimische Orchideen" [in: Kulturbund der DDR. Zentralvorstand der Gesellschaft für Natur und Umwelt. Zentraler Fachausschuß Botanik], 13, p. 27-31.
287) Gervais, C. (1966): Nombres chrosomiques chez quelques graminées alpines, Bulletin de la Société Neuchâteloise des Sciences Naturelles, 89, p. 87-100. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-88960.
288) Gervais, C. (1973): Contribution à l'etude cytologique et taxonomique des avoines vivaces, Denkschriften der Schweizerischen Naturforschenden Gesellschaft, 88, p. 1-166.
289) Gill, J.J.B. (1965): Diploids in the genus Cochlearia, Watsonia. Journal of the Botanical Society of the British Isles, 6, p. 188-189, pl. 12.
290) Glasau, F. (1938): Zur Zytologie der Gattung Cyclamen, Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 28, p. 352-353. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01909528.
291) Gonnermann, C. (1975): Cytologische Untersuchungen an einigen Angiospermen-Arten der DDR. Diplomarbeit, Bereich Botanik und Arboretum des Museums für Naturkunde an der Humboldt-Universität zu Berlin, Berlin, p. [1-3], 1-55, Abb. 1-57, [1].
292) Gottschlich, G. (2020): Ergebnisse von Herbar-, Feld- und Literaturstudien zur Gattung Hieracium s. l. (Hieracium s. str. und Pilosella) als Vorarbeiten für die "Neue Flora von Bayern", Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 90
293) Gottschlich, G.; Schuhwerk, F. (2000): Hieracium derubellum Gottschl. & Schuhw. spec. nov., eine notwendige taxonomische Neupositionierung, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 69/70, p. 147-150.
294) Gräbner, T.; Müller, F.; Uhlemann, I. (2003): Verbreitung, Soziologie und Karyologie von Luzula sudetica (Willd.) Schult. in Sachsen, Sächsische Floristische Mitteilungen, 8, p. 136-153.
295) Granse, D.; Motta, M.R.; Suchrow, S.; Schwartzenberg, K. von; Schnittger, A.; Jensen, K. (2021): The Overlooked Hybrid: Geographic Distribution and Niche Differentiation Between Spartina Cytotypes (Poaceae) in Wadden Sea Salt Marshes, Estuaries and Coastsonline resource. DOI: https://doi.org/10.1007/s12237-021-00985-4.
296) Grau, J. (1964): Die Zytotaxonomie der Myosotis-alpestris- und der Myosotis-silvatica-Gruppe in Europa, Oesterreichische Botanische Zeitschrift. Gemeinnütziges Organ für Botanik, 111, p. 561-617. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01448232.
297) Grau, J. (1967): Primäre und sekundäre Chromosomenbasiszahlen bei Omphalodes, Oesterreichische Botanische Zeitschrift. Gemeinnütziges Organ für Botanik, 114, p. 66-72. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01373934.
298) Grau, J. (1968): Cytotaxonomische Bearbeitung der Gattung Myosotis L. III. Die annuellen Sippen, Mitteilungen der Botanischen Staatssammlung München, 7, p. 17-100.
299) Grau, J. (1968): Cytotaxonomische Untersuchungen an Boraginaceen I, Mitteilungen der Botanischen Staatssammlung München, 7, p. 277-294.
300) Grau, J. (1976): Die Cytologie südwestmediterraner Scrophularia-Arten, Mitteilungen der Botanischen Staatssammlung München, 12, p. 609-654.
301) Grau, J.: Unpublished chromosome count
302) Gregor, J.W. (1939): Population differentiation in North American and European Sea Plantains allied to Plantago maritima L., The New Phytologist; a British botanical journal, 38, p. 293-322. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1469-8137.1939.tb07111.x.
303) Gregor, T. (1998): 498. Fundmeldung [Juncus acutiflorus x Juncus articulatus], Botanik und Naturschutz in Hessen, 10, p. 182.
304) Gregor, T. (2001): 824. Fundmeldung [Centaurea stoebe subsp. micrantha], Botanik und Naturschutz in Hessen, 13, p. 78-79.
305) Gregor, T. (2002): 944. Fundmeldung [Hypericum maculatum], Botanik und Naturschutz in Hessen, 15, p. 171.
306) Gregor, T. (2005): 1101. Fundmeldung [Ornithogalum angustifolium], Botanik und Naturschutz in Hessen, 18, p. 73.
307) Gregor, T. (2010): 1670. Fundmeldung [Callitriche x vigens], Botanik und Naturschutz in Hessen, 23, p. 120.
308) Gregor, T. (2010): 1670. Fundmeldung [Callitriche x vigens], Botanik und Naturschutz in Hessen, 23, p. 120.
309) Gregor, T. (2021): Fundmeldung 33/110 [Callitriche palustris], Botanik und Naturschutz in Hessen, 33, p. 199.
310) Gregor, T.; Rollik, J.; Weising, K. (2002): RAPD-Untersuchungen und Chromosomenzählungen in der Potentilla-collina-Gruppe (Rosaceae), Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 72, p. 159-167.
311) Gregor, T.; Dobeš, C.; Müller, F. (2008): Neotypisierung von Potentilla neumanniana Rchb., Neilreichia, 5, p. 11-18.
312) Gregor, T.; Meierott, L.; Paule, J. (2016): Morphologische Variabilität bei tetraploider Valeriana officinalis s.l. in Deutschland: Valeriana pratensis subsp. franconica Meierott & T.Gregor, subsp. nov., Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 86, p. 27-36.elektronischer Anhang.
313) Gregor, T.; Paule, J.; Meierott, L. (2018): Klärung bayerischer Florenprobleme mithilfe der durchflusszytometrischen Ploidiebestimmung – ein geglückter Fall von „Citizen-Science“, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 88, p. 77-90.elektronischer Anhang.
314) Gregor, T.; Bauer, J.; Engelhardt, M.; Hand, R.; Hein, H.; Lippert, W.; Mayer, A.; Meierott, L.; Parker, H., Paule, J. (2018): Amelanchier ovalis s. l. – zwei Zytotypen in Deutschland, Kochia, 11, p. 65-75.
315) Gregor, T.; Dunkel, F.G.; Meierott. L.; Diewald, W.; Paule, J. (2019): Klärung bayerischer Florenprobleme mithilfe der durchflusszytometrischen Ploidiebestimmung – Neuinterpretation der Ornithogalum-Messungen, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 89, p. 261-264.
316) Gregor, T.; Dillenberger, M.S.; Schmidt, M.; Hand, R.; Abdank, A.; Böcker, R.; Ciongwa, P.; Diewald, W.; Dunkel, F.G., Ehmke, W.; Finus, P.; Frank, D.; Hammel, S.; Hofstetter, A.; Hohla, M.; Horst, E.; John, H.; Klotz, J.; Korsch, M.; Mause, R.; Meierott, L.; Müller, F.; Möbius, F.; Peintinger, M.; Reichert, H.; Ringel, H.; Schneider, R.; Schröder, C.N.; Timmermann-Trosiener, I.; Mutz, S. (2020): Scrophularia neesii und Scrophularia umbrosa in Deutschland – ähnliche Ökologie, aber unterschiedliche Verbreitung zweier Sippen eines Autopolyploidie-Komplexes, Kochia, 13, p. 37-52.
317) Gregor, T.; Dillenberger, M.S.; Schmidt, M.; Hand, R.; Abdank, A.; Böcker, R.; Ciongwa, P.; Diewald, W.; Dunkel, F.G., Ehmke, W.; Finus, P.; Frank, D.; Hammel, S.; Hofstetter, A.; Hohla, M.; Horst, E.; John, H.; Klotz, J.; Korsch, M.; Mause, R.; Meierott, L.; Müller, F.; Möbius, F.; Peintinger, M.; Reichert, H.; Ringel, H.; Schneider, R.; Schröder, C.N.; Timmermann-Trosiener, I.; Mutz, S. (2020): Scrophularia neesii und Scrophularia umbrosa in Deutschland – ähnliche Ökologie, aber unterschiedliche Verbreitung zweier Sippen eines Autopolyploidie-Komplexes, Kochia, 13, p. 37-52.
318) Gregor, T.; Berghofer, M.; Breitfeld, M.; Christensen, E.; Ciongwa, P.; Ehmke, W.; Götte, R.; Höcker, R.; Lauterbach, D.; Mause, R.; Meierott, L.; Niederbichler, C.; Ristow, M.; Schröder, C.N.; Zahlheimer, W.; Mutz, S. (2021): Ergebnisse der Arbeitsgruppe Durchflusszytometrie „FC2020“: Viola, Sanguisorba, Koeleria und Scrophularia, Kochia, 14, p. 75–93.
319) Gregor, T.; Hand, R.; Paule, J. (2017): Chromosomenzahlen von Farn- und Samenpflanzen aus Deutschland 10, Kochia, 10, p. 45-53.
320) Gregor, T.; Fritsch, R. (2011): Potentilla schultzii P. J. Müller ex F. W. Schultz – eine lange vergessene Art heute noch im Nordpfälzer Bergland, Mitteilungen der Pollichia des Pfälzischen Vereins für Naturkunde und Naturschutz, 95, p. 121-124.
321) Gregor, T.; Hand, R. (2006): Chromosomenzahlen von Farn- und Samenpflanzen aus Deutschland 1, Kochia, 1, p. 135-140.
322) Gregor, T.; Hand, R. (2007): Chromosomenzahlen von Farn- und Samenpflanzen aus Deutschland 2, Kochia, 2, p. 31-35.
323) Gregor, T.; Hand, R. (2008): Chromosomenzahlen von Farn- und Samenpflanzen aus Deutschland 3, Kochia, 3, p. 55-60.
324) Gregor, T.; Hand, R. (2009): Chromosomenzahlen von Farn- und Samenpflanzen aus Deutschland 4, Kochia, 4, p. 37-46.
325) Gregor, T.; Hand, R. (2012): Chromosomenzahlen von Farn- und Samenpflanzen aus Deutschland 6, Kochia, 6, p. 143-150.
326) Gregor, T.; Hand, R. (2014): Chromosomenzahlen von Farn- und Samenpflanzen aus Deutschland 8, Kochia, 8, p. 63-70.
327) Gregor, T.; Henker, H. (2001): Potentilla wismariensis T. Gregor & Henker sp. nova, ein Fingerkraut der Wismarbucht (Mecklenburg-Vorpommern, Deutschland), Feddes Repertorium. Zeitschrift für Botanische Taxonomie und Geobotanik, 112, p. 321-330. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/fedr.4921120501.
328) Gregor, T.; Koch, E. (2004): Das Frühblühende Fingerkraut (Potentilla praecox F.W. Schultz) – ein Endemit des Hochrheingebietes, Berichte der Botanischen Arbeitsgemeinschaft Südwestdeutschland, 3, p. 3-14.
329) Gregor, T.; Korneck, D. (2006): Potentilla rhenana, ein aussterbendes Fingerkraut des Rheinlandes, Decheniana. Verhandlungen des Naturhistorischen Vereins der Rheinlande und Westfalens, 158, p. 9-18.
330) Gregor, T.; Lehmann, W. (2004): Potentilla heptaphylla, das Rötliche Fingerkraut, in Hessen, Botanik und Naturschutz in Hessen, 17, p. 63-76.
331) Gregor, T.; Paule, J. (2018): Chromosomenzahlen von Farn- und Samenpflanzen aus Deutschland 11, Kochia, 11, p. 77-89.
332) Gregor, T.; Paule, J. (2019): Chromosomenzahlen von Farn- und Samenpflanzen aus Deutschland 12, Kochia, 12, p. 135-138.
333) Gregor, T.; Paule, J. (2020): Chromosomenzahlen von Farn- und Samenpflanzen aus Deutschland 13, Kochia, 13, p. 53-60.
334) Gregor, T.; Paule, J. (2021): Chromosomenzahlen von Farn- und Samenpflanzen aus Deutschland 14, Kochia, 14, p. 133-147.
335) Gregor, T.; Paule, J. (2022): Chromosomenzahlen von Farn- und Samenpflanzen aus Deutschland 15, Kochia, 15, p. 211-218.
336) Gregor, T.; Mutz, S.: Unpublished chromosome count
337) Gregor, T.; Paule, J.: Unpublished chromosome count
338) Gregor, T.: Unpublished chromosome count
339) Greilhuber, J. (1978): DNA Contents, Giemsa Banding, and Systematics in Scilla bifolia, S. drunensis, and S. vindobonensis (Liliaceae), Plant Systematics and Evolution, 130, p. 223-233. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF00982807.
340) Greilhuber, J. (1978): DNA Contents, Giemsa Banding, and Systematics in Scilla bifolia, S. drunensis, and S. vindobonensis (Liliaceae), Plant Systematics and Evolution, 130, p. 223-233. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF00982807.
341) Greilhuber, J. (1979): C-Band Distribution, DNA Content and Base Composition in Adoxa moschatellina (Adoxaceae), a Plant With Cold-Sensitive Chromosome Segments, Plant Systematics and Evolution, 131, p. 243-259. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF00984257.
342) Greilhuber, J.; Speta, F. (1985): Geographical Variation of Genome Size at low Taxonomic Levels in the Scilla bifolia Alliance (Hyacinthaceae), Flora, 176, p. 431-438.
343) Gremaud, M. (1981): Recherches de taxonomie experimentale sur le Carduus defloratus L. s.l. (Compositae). I. Donnees taxonomiques. Variation caryologique, Revue de cytologie et de biologie végétales - le botaniste, 4, p. 1-75.
344) Griesinger, R. (1935): Zytologische und experimentelle Untersuchungen an Erophila verna, Flora, 129, p. 363-379, Taf. I-II.
345) Griesinger, R. (1937): Über hypo- und hyperdiploide Formen von Petunia, Hyoscyamus, Lamium und einige andere Chromosomenzählungen, Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 55, p. 556-571. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1937.tb01286.x.
346) Gröger, C.-M. (1985): Untersuchungen an Myosotis scorpioides agg. in Bayern. Diplomarbeit, Universität München, München, p. 1-88.
347) Grossmann, F. (1973): Morphologisch-ökologische Untersuchungen an Scabiosa columbaria s.l. im mittleren und westlichen Alpengebiet. Abhandlung zur Erlangung des Titels eines Doktors der Naturwissenschaften, Eidgenössischen Technische Hochschule, Zürich, p. 1-122, [1].
348) Günther, C. (1959): Die Gattung Dactylorchis in Thüringen. Diplom-Arbeit, Universität Jena, Jena, p. Band I: [1-5], 1-30, [1], 1-36, [1-5]; Band II: [1], Taf. I-VIII, Abb. 1-31.
349) Gustafsson, Å. (1932): Zytologische und experimentelle Studien in Gattung Taraxacum, Hereditas. Genetisk Arkiv, 16, p. 41-62. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1601-5223.1932.tb02561.x.
350) Gustafsson, Å. (1935): Studies on the mechanism of partheongenesis, Hereditas. Genetisk Arkiv, 21, p. 1-112. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1601-5223.1935.tb02641.x.
351) Gutermann, W. (1962): Diploides Lamium galeobdolon (sensu lato) in Bayern (Vorläufige Mitteilung), Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 35, p. 43-44.
352) Hambler, D.J. (1958): Chromosome numbers in some members of the family Orobanchaceae, Botanical Journal of the Linnean Society, 55, p. 772-777. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1095-8339.1958.tb00039.x.
353) Hammel, S.; Haynold, B.; Gregor, T.; Paule, J. (2015): Ploidie-Bestimmung baden-württembergischer Bastard-Mehlbeeren, Jahreshefte, Gesellschaft für Naturkunde in Württemberg, 71, p. 69-75.
354) Hammer, K.; Hanelt, P.; Knüpffer, H. (1982): Vorarbeiten zur monographischen Darstellung von Wildpflanzensortimenten: Agrostemma L., Kulturpflanze; Die Berichte und Mitteilungen aus dem Institut für Kulturpflanzenforschung der Deutschen Akademie der Wissenschaften zu Berlin in Gatersleben Krs. Aschersleben, 30, p. 45-96. DOI: https://dx.doi.org/10.1007/BF02098385.
355) Hand, R. (2001): Revision der in Europa vorkommenden Arten von Thalictrum subsectio Thalictrum (Ranunculaceae), Botanik und Naturschutz in Hessen, Beiheft, 9, p. 1-358.
356) Hand, R. (2003): Anmerkungen zu Veronica orsiniana, Veronica satureiifolia und Veronica teucrium an Mosel und Saar, Berichte der Botanischen Arbeitsgemeinschaft Südwestdeutschland, 2, p. 41-50.
357) Hand, R.; Gregor, T. (2011): Chromosomenzahlen von Farn- und Samenpflanzen aus Deutschland 5, Kochia, 5, p. 33-38.
358) Hand, R.; Gregor, T. (2013): Chromosomenzahlen von Farn- und Samenpflanzen aus Deutschland 7, Kochia, 7, p. 109-116.
359) Hand, R.; Gregor, T. (2015): Chromosomenzahlen von Farn- und Samenpflanzen aus Deutschland 9, Kochia, 9, p. 105-108.
360) Hanelt, P.; Mettin, D. (1966): Cytosystematische Untersuchungen in der Artengruppe um Vicia sativa L. II, Kulturpflanze; Die Berichte und Mitteilungen aus dem Institut für Kulturpflanzenforschung der Deutschen Akademie der Wissenschaften zu Berlin in Gatersleben Krs. Aschersleben, 14, p. 137-161. DOI: https://dx.doi.org/10.1007/BF02095282.
361) Hanelt, P.; Mettin, D. (1970): Über die systematische Stellung temperater und meridionaler Sippen der Gattung Vicia L., Feddes Repertorium. Zeitschrift für Botanische Taxonomie und Geobotanik, 81, p. 147-161. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/fedr.19700810112.
362) Hanelt, P.; Schultze-Motel, J. (1962): Beobachtungen an einer blaublühenden Sippe von Lithospermum arvense L., Kulturpflanze; Die Berichte und Mitteilungen aus dem Institut für Kulturpflanzenforschung der Deutschen Akademie der Wissenschaften zu Berlin in Gatersleben Krs. Aschersleben, 10, p. 122-131. DOI: https://dx.doi.org/10.1007/BF02095436.
363) Hanušová, K.; Čertner, M.; Urfus, T.; Koutecký, P.; Košnar, J.; Rothfels, C.J.; Jarolímová, V.; Ptáček, J.; Ekrt, L. (2019): Widespread co-occurrence of multiple ploidy levels in fragile ferns (Cystopteris fragilis complex; Cystopteridaceae) probably stems from similar ecology of cytotypes, their efficient dispersal and inter-ploidy hybridization, Annals of Botany, 123, p. 845–855.Electronic Appendix. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcy219.
364) Happel, E. (1983): Über Eriophyllum lanatum (Pursh) Forbes im Vogelsberg, Göttinger Floristische Rundbriefe. Zeitschrift für Arealkunde, Floristik und Systematik, 3/4, p. 85-89.
365) Harley, R.M.; Brighton, C.A. (1977): Chromosome numbers in the genus Mentha L., Botanical Journal of the Linnean Society, 74, p. 71-96. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1095-8339.1977.tb01168.x.
366) Hartmann, M.; Štefánek, M.; Zdvořák, P.; Heřman, P.; Chrtek, J.; Mráz, P. (2017): The Red Queen hypothesis and geographical parthenogenesis in the alpine hawkweed Hieracium alpinum (Asteraceae), Biological Journal of the Linnean Society, 122, p. 681-696.S1-S9. DOI: http://dx.doi.org/0.1093/biolinnean/blx105.
367) Havrdová, A.; Douda, J.; Krak, K.; Vít, P.; Hadincová, V.; Zákravský, P.; Mandák, B. (2015): Higher genetic diversity in recolonized areas than in refugia of Alnus glutinosa triggered by continent-wide lineage admixture, Molecular Ecology, 24, p. 4759-4777.Supporting Information. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/mec.13348.
368) Heckmann, U.; Rasbach, H.; Bennert, H.W. (1989): Vorkommen und Cytologie des Dryopteris affinis-Komplexes in Nordrhein-Westfalen, Floristische Rundbriefe. Zeitschrift für floristische Geobotanik, Populationsökologie und Systematik, 22, p. 81-94.
369) Heine, R. (1970): Zur Taxonomie und Verbreitung von Calamagrostis canescens (Web.) Roth, Calamagrostis villosa (Chaix) J.F.Gmelin, Calamagrostis arundinacea (L.) Roth, Calamagrostis neglecta (Ehrh.). Pal. Beauv., Calamagrostis pseudopurpurea (Gerstl.) Heine .... Dissertation, Technische Universität Dresden, Dresden, p. [1], I-II, 1-180.
371) Heineck, D. (1996): Biosystematische Untersuchungen an ausgewählten Populationen der Ranunculus polyanthemos Gruppe. Diplomarbeit, Philipps-Universität Marburg, p. I-IV, 1-107, [1].
372) Heinrichsmeier, N. (2005): Phylogenetische Untersuchungen an Arten der Gräser-Gattung Aira L. anhand karyologischer und molekularbiologischer Methoden sowie In situ-Hybridisierungen. Inaugural-Dissertation zur Erlangung des Doktorgrades der Naturwissenschaften, Fachber. Biologie der Mathematisch-Naturwissenschaftl. Fakultät Westfälischen Wilhelms-Universität, Münster, p. [1-4], I-III, 1-206, [1-4].
373) Heitz, B. (1967): Graminées (Méiose), Informations annuelles de caryosystématique et cytogénétique; travaux de laboratoires de phytogénétique; Strasbourg et Lille, 1, p. 22.
374) Heitz, E.; Resende, F. (1936): Zur Methodik der Pollenkorn- und Pollenschlauchuntersuchung, Boletim da Sociedade Broteriana, Serie 2, 11, p. 5-15.
375) Henker, H. (2005): Goldsterne und Stinsenpflanzen in Mecklenburg-Vorpommern. Teil 1. Die Goldsterne von Mecklenburg-Vorpommern unter besonderer Berücksichtigung kritischer und neuer Sippen, Botanischer Rundbrief für Mecklenburg-Vorpommern, 39, p. 3-90.
376) Henker, H.; Kiesewetter, H. (2015): Euphorbia megapolitana - eine neue Wolfsmilch-Art für Deutschland sowie weitere, bisher aus Mecklenburg-Vorpommern unbekannte Wolfsmilch-Arten, Botanischer Rundbrief für Mecklenburg-Vorpommern, 52, p. 3-13.
377) : Unpublished chromosome count
378) Herborg, J. (1987): Die Variabilität und Sippenabgrenzung in der Senecio nemorensis-Gruppe (Compositae) im europäischen Teilareal, Dissertationes Botanicae, 107, p. 1-262, Abb. 13.
379) Herklotz, V.; Mieder, N.; Ritz, C.M. (2017): Cytological, genetic and morphological variation in mixed stands of dogroses (Rosa section Caninae; Rosaceae) in Germany with a focus on the hybridogenic R. micrantha, Botanical Journal of the Linnean Society, 184, p. 254-271.Supplementary data. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/botlinnean/box025.
380) Herklotz, V.; Ritz, C.M. (2014): Spontane Hybridisierung von Hundsrosen (Rosa L. sect. Caninae (DC). Ser.) an einem natürlichen Vorkommen in der Oberlausitz (Sachsen, Deutschland), Peckiana, 9, p. 119-131.
381) Herklotz, V.; Ritz, C.M. (2017): Multiple and asymmetrical origin of polyploid dog rose hybrids (Rosa L. sect. Caninae (DC.) Ser.) involving unreduced gametes, Annals of Botany, 120, p. 209-220.Supplementary Data. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcw217.
382) Herrmann, N. (2000): Beiträge zur Biologie und Systematik des Ornithogalum umbel/atum-Aggregats in Ostdeutschland. wissenschaftliche Arbeit zur Erlangung des akademischen Grades Diplom-Biologe, Fachbereich Biologie der Martin-Luther-Universität Halle-Wittenberg, Halle/Saale, p. [1], I-III, 1-120, Beilagen 1-4.
383) Herrmann, N. (2001): Die schmalblättrigen Dolden-Milchsterne aus dem Ornithogalum umbellatum-Aggregat in Ostdeutschland: Überblick über den aktuellen Bearbeitungs- und Erkenntnisstand, p. 49-60.
384) Herrmann, N. (2002): Biological Flora of Central Europe: „Ornithogalum angustifolium“ nom. prov., Syn. p.p. O. orthophyllum ssp. kochii = O. kochii Parl., O. gussonei Ten.), Flora, 197, p. 409-428. DOI: http://dx.doi.org/10.1078/0367-2530-00059.
385) Herrmann, N. (2008): Erstnachweis einer diploiden Sippe aus dem Ornithogalum umbellatum-Aggregat in Schleswig-Holstein, Kieler Notizen zur Pflanzenkunde, 36, p. 7-8.
386) Heß, H.E.; Landolt, E.; Hirzel, R. (1967): Flora der Schweiz und angrenzender Gebiete. Band 1: Pteridophyta bis Caryophyllaceae, p. 1-858, Basel et Stuttgart: Birkhäuser
387) Heß, H.E.; Landolt, E.; Hirzel, R. (1972): Flora der Schweiz und angrenzender Gebiete. Band 3: Plumbaginaceae bis Compositae, p. 1-876, Basel et Stuttgart: Birkhäuser
388) Heubl, G.R. (1984): Systematische Untersuchungen an mitteleuropäischen Polygala-Arten, Mitteilungen der Botanischen Staatssammlung München, 20, p. 205-428.
389) Heubl, G.R. (1989): Bemerkungen zur Karyologie der Gattung Lysimachia L. Chromosomenzahlen und Evolution, Mitteilungen der Botanischen Staatssammlung München, 28, p. 297-311.
390) Heubl, G. (1988): Zyto- und chemotaxonomische Studien an Lysimachia nemorum L. und Lysimachia azorica Hornem. ex Hocker, Mitteilungen der Botanischen Staatssammlung München, 27, p. 33-49.
391) Hildebrandt, U.; Hoef-Emden, K.; Backhausen, S.; Bothe, H.; Bożek, M.; Siuta, A.; Kuta, E. (2006): The rare, endemic zinc violets of Central Europe originate from Viola lutea Huds., Plant Systematics and Evolution, 257, p. 205-222. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s00606-005-0387-4.
392) Hlásná Čepková, P.; Karlík, P.; Viehmannová, I.; Müllerová, V.; Šmejda, L.; Hejcman, M. (2016): Genetic and leaf-trait variability of Vinca minor at ancient and recent localities in Central Europe, Biochemical systematics and ecology, 64, p. 22-30. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.bse.2015.11.005.
393) Höcker, R.; Gregor, T. (2019): Der Dolomitsand-Schwingel (Festuca pulveridolomiana spec. nov.), eine übersehene Festuca der Nördlichen Frankenalb, Kochia, 12, p. 1-18.
394) Hodálová, I.; Mereďa, P.; Kučera, J.; Marhold, K.; Kempa, M.; Olšavská, K.; Slovák, M. (2015): Origin and systematic position of Jacobaea vulgaris (Asteraceae) octoploids: genetic and morphological evidence, Plant Systematics and Evolution, 301, p. 1517-1541. DOI: http://dx.doi.org/10.​1007/​s00606-014-1163-0.
395) Hofelich, A. (1935): Die Sektion Alsinebe Griseb. der Gattung Veronica in ihren chromosomalen Grundlagen, Jahrbücher für Wissenschaftliche Botanik, 81, p. 541-572.
396) Hoffmann, K.M. (1930): Beiträge zur Cytologie der Orchideen, Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 10, p. 523-595. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01911421.
397) Hoffmann, A. (1989): Zyto- und ökologische Untersuchungen über Bromus ramosus Huds. und Bromus benekenii (Lange) Trimen, Tuexenia. Mitteilungen der floristisch-soziologischen Arbeitsgemeinschaft. Neue Serie, 9, p. 3-28.
398) Hofmann, L.; Fritz, D. (1991): Eignung verschiedener Schafgarbenherkünfte für den heimischen Anbau, Drogenreport, Sonderausgabe, p. 31-38.
399) Hohmann, N.; Schmickl, R.; Chiang, T.-Y.; Lučanová, M.; Kolář, F.; Marhold, K.; Koch, M.A. (2014): Taming the wild: resolving the gene pools of non-model Arabidopsis lineages, BMC Plant Biology, p. 14:224.Electronic supplementary material. DOI: http://dx.doi.org/10.1186/s12862-014-0224-x.
400) Holmgren, P.K. (1971): A biosystematic study of North American Thlaspi and its allies, Memoirs of the New York Botanical Garden, 21, p. 1-106.
401) Homeyer, H. (1936): Beiträge zur Kenntnis der Zytologie und Systematik der Rubiaceen, Botanische Jahrbücher für Systematik, Pflanzengeschichte und Pflanzengeographie, 67, p. 237-263.
402) Hörandl, E.; Dobeš, C.; Lambrou, M. (1997): Chromosomen- und Pollenuntersuchungen an österreichischen Arten des apomiktischen Ranunculus auricomus-Komplexes, Botanica Helvetica, 107, p. 195-209. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-72644.
403) Hörandl, E.; Greilhuber, J. (2002): Diploid and autotetraploid sexuals and their relationships to apomicts in the Ranunculus cassubicus group: insights from DNA content and isozyme variation, Plant Systematics and Evolution, 234, p. 85-100. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s00606-002-0209-x.
404) Horn, K.; Schiemionek, A.; Bennert, H.W. (1994): Zur aktuellen Bestandssituation und Ökologie von Asplenium seelosii Leybold in Bayern, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 65, p. 137-142.
405) Horn, K.; Fuchs, J.; Linner, J.; Heibl, C. (2021): Neufunde von Flachbärlappen (Diphasiastrum ssp.) im Nationalpark Bayerischer Wald und dessem Randgebieten im Zeitraum 2018 bis 2020, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 91
406) Hornych, O., Ekrt, L., Riedel, F., Koutecký, P., Košnar, J. (2019): Asymmetric hybridization in Central European populations of the Dryopteris carthusiana group, American Journal of Botany, 106, p. 1477–1486.S1, S2. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/ajb2.1369.
407) Hroudová, Z.: Unpublished chromosome count
408) Huber, A. (1927): Beiträge zur Klärung verwandtschaftlicher Beziehungen in der Gattung Veronica. 1. Die Kernuntersuchungen in der Gattung Veronica, Jahrbücher für Wissenschaftliche Botanik, 66, p. 359-380.
409) Huber, W. (1993): Biosystematisch-ökologische Untersuchungen an den "Erigeron"-Arten ("Asteraceae") der Alpen = Biosystematic-ecological investigations on the "Erigeron" species ("Asteraceae") of the Alps, Veröffentlichungen des Geobotanischen Institutes der Eidg. Techn. Hochschule, Stiftung Rübel, in Zürich, 114, p. 1-143.
410) Hügin, G. (1987): Einige Bemerkungen zu wenig bekannten Amaranthus-Sippen (Amaranthaceae) Mitteleuropas, Willdenowia, 16, p. 453-478.
411) Hügin, G. (2006): Die Hochlagenflora des Schwarzwalds und seiner Nachbargebirge. Liste der in Schwarzwald, Vogesen, Nord-Jura und Schwäbischer Alb oberhalb 1000 m nachgewiesenen Farn- und Samenpflanzen, Kochia, 1, p. 49-104.
412) Hügin, G.; Dersch, G.; Gregor, T. (2015): Die Stellaria-media-Gruppe in Mitteleuropa – Chromosomenzählungen und Anmerkungen zu den Differentialmerkmalen, Kochia, 9, p. 93-105.
413) Hügin, G.; Hügin, H. (2002): Die Mittelmeerpflanze Veronica cymbalaria nördlich der Alpen - Ein Hinweis auf Klimaveränderung, Floristische Rundbriefe. Zeitschrift für Geobotanik, Populationsökologie und Systematik, 35, p. 1-10.
414) Huizing, H.J.; Gadella, T.W.J.; Kliphuis, E. (1982): Chemotaxonomical investigations of the Symphytum officinale polyploid complex and S. asperum (Boraginaceae): The pyrrolizidine alkaloids, Plant Systematics and Evolution, 140, p. 279-292. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF02418897.
415) Hull-Sanders, H.M.; Johnson, R.H.; Owen, H.A.; Meyer, G.A. (2009): Effects of polyploidy on secondary chemistry, physiology, and performance of native and invasive genotypes of Solidago gigantea (Asteraceae), American Journal of Botany, 96, p. 762-770. DOI: http://dx.doi.org/10.3732/ajb.0800200.
416) Hull-Sanders, H.M.; Johnson, R.H.; Owen, H.A.; Meyer, G.A. (2015): Erratum. Effects of polyploidy on secondary chemistry, physiology, and performance of native and invasive genotypes of Solidago gigantea (Asteraceae), American Journal of Botany, 102, p. 642. DOI: http://dx.doi.org/10.3732/ajb.0800200.
417) Hunkeler, C.; Favarger, C. (1967): Contribution à la cytotaxinomie du genre Pimpinella L., Bulletin de la Société Neuchâteloise des Sciences Naturelles, 90, p. 219-239. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-88973.
418) Hüser, W. (1930): Untersuchungen über die Anatomie und Wasserökologie einiger Ostseestrandpflanzen, Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 11, p. 485-508. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01913752.
419) Iwatsubo, Y.; Naruhashi, N.; Weber, H.E. (1995): Chromosome numbers of European blackberries (Rubus subg. Rubus, Rosaceae), Plant Systematics and Evolution, 198, p. 143-149. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF00985110.
420) Izmaiłow, R. (1976): Problem of apomixis in the Ranunculus auricomus group, Acta Biologica Cracoviensia. Series Botanica, 19, p. 15-28.
421) Jaarsma, T.A.; Lohmanns, E.; Gadella, T.W.J.; Malingré, T.M. (1989): Chemotaxonomy of the Symphytum officinale agg. (Boraginaceae), Plant Systematics and Evolution, 167, p. 113-127. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF00936400.
422) Jacobsen, N.; Bothmer, R. von (1995): Taxonomy in the Hordeum murinum complex (Poaceae), Nordic Journal of Botany, 15, p. 449-458. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1756-1051.1995.tb00177.x.
424) Jäger, W.; Bäppler, H. (2017): Der Lausitzer Streifenfarn Asplenium trichomanes nothosubsp. lusaticum (Aspleniaceae) im Grenzgebiet zwischen Nordrhein-Westfalen und Rheinland-Pfalz, Jahrbücher des Bochumer Botanischen Vereins, 8, p. 96-103.
425) Jäger, W.; Leonhards, W. (1995): Über ein neues Vorkommen von Dryopteris x complexa Fraser-Jenkins nssp. critica Fraser-Jenkins in Nordrhein-Westfalen sowie Merkmalsvergleiche mit anderen Sippen, Floristische Rundbriefe, 29, p. 50-64.
426) Jaretzky, R. (1928): Untersuchungen über Chromosomen und Phylogenie bei einigen Cruciferen, Jahrbücher für Wissenschaftliche Botanik, 68, p. 1-45.
427) Jaretzky, R. (1928): Histologische und karylogische Studien an Polygonaceen, Jahrbücher für Wissenschaftliche Botanik, 69, p. 357-490.
428) Jenniskens, M.-J.P.J.; den Nijs, H.C.M.; Huizing, B.A. (1984): Karyogeography of Taraxacum sect. Taraxacum and the possible occurrence of facultative agamospermy in Bavaria and north-western Austria, Phyton. Annales rei Botanicae, 224, p. 11-34.
429) Jessen, S. (1985): A reappraisal of Dryopteris affinis subsp. borreri var. robusta and new records of D. affinis subspecies in Eastern Europe, Fern gazette; the journal of the British pteridological Society, 13, p. 1-6.
430) Jeßen, S. (1985): A reappraisal of Dryopteris affinis subsp. botteri var. robusta and new records of D. affinis subspecies in Eastern Europe, The Fern Gazette. Journal of the British Pteridological Society, 13, p. 1-6.
431) Jessen, S. (1991): Neue Angaben zur Pteridophytenflora Osteuropas, Farnblätter; Organ der Schweizerischen Vereinigung der Farnfreunde, 23, p. 14-47.
432) Jeßen, S. (1995): Asplenium trichomanes L. subsp. hastatum, stat. nov. - eine neue Unterart des Braunstiel-Streifenfarns in Europa und vier neue intraspezifische hybriden (Aspleniaceae, Pteridophyta), Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 65, p. 107-132.
433) Jeßen, S. (2008): Asplenium × wojaense, eine neue Streifenfarnhybride auf Serpentinit (Aspleniaceae, Pteridophyta), Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 78, p. 53-60.
434) Jeßen, S. (2019): Beitrag zu Chromosomenzahlen und zur Taxonomie der Farne und Farnverwandten (Lycopodiophytina bis Polypodiophytina). Kommentare und Ergänzungen zur 22. Auflage der Rothmaler Exkursionsflora von Deutschland – Grundband, 2019: Zweiter Beitrag, Schlechtendalia. Veröffentlichungen aus dem Institut für Geobotanik und Botanischer Garten der Martin-Luther-Universität Halle-Wittenberg, 36, p. 71-85.
435) Jeßen, S.; Rasbach, H. (1987): Dryopteris x sarvelae, erster Nachweis für Mitteleuropa - Abstammung, verwandte Arten und Hybriden (Pteridophyta), Gleditschia. Beiträge zur botanischen Taxonomie und deren Grenzgebiete, 15, p. 57-72.
436) Jeßen, S.: Unpublished chromosome count
437) Jonsell, B. (1968): Studies in the north-west European species of Rorippa s. str., Symbolae Botanicae Upsaliensis, 9, p. 1-221, [1], pl. 1-11.
438) Jørgensen, M.H.; Ehrich, D.; Schmickl, R.; Koch, M.A.; Brysting, A.K. (2011): Interspecific and interploidal gene flow in Central European Arabidopsis (Brassicaceae), BMC Plant Biology, 11, p. 11:346.Electronic supplementary material. DOI: http://dx.doi.org/10.1186/1471-2148-11-346.
439) Joshi, A.; Bushman, B.S.; Pickett, B.; Robbins, M.D.; Staub, J.E. (2017): Phylogenetic relationships among low ploidy Poa species using chloroplast sequences, Genome, p. 1-28. DOI: http://dx.doi.org/10.1139/gen-2016-0110.
440) Juhl, H. (1952): An-euploidie und Systematik bei Agrostis stolonifera L. und Festuca rubra L. aus Schleswig-Holstein, Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 65, p. 330-337. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1953.tb00731.x.
441) Juhl, H. (1952): Zytologische Untersuchungen an einigen Formen von Poa pratensis L. in Schleswig-Holstein, Flora, 139, p. 462-476.
442) Kadereit, J.W. (1984): The Origin of Senecio vulgaris (Asteraceae), Plant Systematics and Evolution, 145, p. 135-153. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF00984036.
443) Kakes, P. (1980 "1979"): Genecological investigations on zinc plants III. Cytology of hybrids between Viola calaminaria (Lej.) Ernst and Viola arvensis Murr., Genetica; Nederlandsch tijdschrift voor erfelijkheids- en afstammingsleer, 51, p. 135-142. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF00133513.
444) Kammacher, P.; Zygomala, A.-M. (1986): Contribution à la caryologie d'Alnus glutinosa (L.) Gaertn., Compte rendu de l’Académie des Sciences, Paris. Série 3, Sciences de la vie, 19, p. 755-760.
445) Kaplan, K. (2021 "2020"): Merkmale von Rosa x scabriuscula (R. tomentosa x R. canina) und ihren Eltern, Floristische Rundbriefe. Zeitschrift für floristische Geobotanik, Populationsbiologie und Taxonomie, 54, p. 145-159.
446) Kaplan, Z.; Jarolímová, V.; Fehrer, J. (2013): Revision of chromosome numbers of Potamogetonaceae: A new basis for taxonomic and evolutionary implications, Preslia, 85, p. 421-482.
447) Karbstein, K.; Tomasello, S.; Hodac, L.; Dunkel, F.G.; Daubert, M.; Hörandl, E. (2020): Phylogenomics supported by geometric morphometrics reveals delimitation of sexual species within the polyploid apomictic Ranunculus auricomus complex (Ranunculaceae), bioRχiv [https://www.biorxiv.org], p. 1-53.Supplementary: Fig. 1-7, Table 1-6, Text 1.
448) Kästner, A.; Ehrendorfer, F. (2016): . In: Conert, H.J.; Jäger, E.J.; Kadereit, J.W.; Wagenitz, G.; Weber, H.E.: Gustav Hegi. Illustrierte Flora von Mitteleuropa. Band VI. Teil 2b, p. [1-7], 1-348, Jena: Weissdorn
449) Kattermann, G. (1931): Chromosomenuntersuchungen bei Gramineen, Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 12, p. 19-37. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01915144.
450) Kawatani, T.; Ohno, T. (1960): On the Santonin Content in Thuringian Wild Artemisia maritima L. Cultivated at Kasukabe, Bulletin of the National Institute of Hygienic Sciences, 78, p. 49-53.
451) Kay, Q.O.N. (1969): The origin and distribution of diploid and tetraploid Tripleurospermum inodorum (L.) Schultz Bip., Watsonia. Journal of the Botanical Society of the British Isles, 7, p. 130-141.
452) Keller, F.; Meyer, N.; Gregor, T.; Paule, J.; Lepší, M.; Koutecký, P.; Fussi, B.; Hackl, C.; Ewald, J. (2015): Hybriden zwischen Mehlbeere (Sorbus aria) und Elsbeere (Sorbus torminalis) im oberbayerischen Fünfseenland, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 85, p. 9-34.
453) Kellner, A.; Ritz, C.M.; Wissemann, V. (2012): Hybridization with invasive Rosa rugosa threatens the genetic integrity of native Rosa mollis, Botanical Journal of the Linnean Society, 170, p. 472-484.Supplementary data. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1095-8339.2012.01298.x.
454) Kellner, A.; Ritz, C.M.; Wissemann, V. (2014): Low genetic and morphological differentiation in the European species complex of Rosa sherardii, R. mollis and R. villosa (Rosa section Caninae subsection Vestitae), Botanical Journal of the Linnean Society, 174, p. 240-256.Supplementary data. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/boj.12124.
455) Kernlinger, E. (1979): Morphologie und Cytologie von Biscutella laevigata L. im Bayerischen Alpenvorland. Zulassungsarbeit für das Staatsexamen, [München], p. [1-2], 1-77, Fundortkarte, Schablone.
456) Khan, M.A. (1984): Biosystematic studies in Brachypodium (Poaceae), p. I-V, 1-353.
457) Khoshoo, T.N.; Sobti, S.N. (1958): Cytology of Indian Species of Artemisia, Nature, a weekly journal of science, 181, p. 853-854. DOI: http://dx.doi.org/10.1038/181853b0.
458) Kiedrzyński, M.; Zielińska, K.M.; Jedrzejczyk, I.; Kiedrzyńska, E.; Tomczyk, P:p:, Rewicz, A.; Rewers, M.; Indreica, A.; Bednarska, I.; Stupar, V.; Roleček, J.; Šmarda, P. (2021): Tetraploids expanded beyond the mountain niche of their diploid ancestors in the mixed‑ploidy grass Festuca amethystina L., Scientific Reports. London, 11Supplementary Information. DOI: http://dx.doi.org/10.1038/s41598-021-97767-6.
459) Kiehn, M.; Kiehn, M. (1927): Über das Verhalten der "end to end" gebundenen Chromosomen von Rumex acetosella und Oenothera biennis während der heterotypischen Kernteilung, Jahrbücher für Wissenschaftliche Botanik, 66, p. 429-460.
460) Kirchner, D.E. (2004): Molekulare Phylogenie und Biogeographie der Gattung Pulmonaria L. (Boraginaceae). Dissertation, Universität Bremen Fachbereich Biologie/Chemie, Mainz, p. [1-19], 1-221.
461) Kirschner, J. (1992): Karyological differentiation of Luzula sect. Luzula in Europe, Thaiszia. Journal of Botany, 2, p. 11-39.
462) Kirschner, J.; Oplaat, C.; Verhoeven, K.J.F.; Zeisek, V.; Uhlemann, I.; Trávníček, B.; Räsänen, J.; Wilschut, R.A.; Štěpánek, J. (2016): Identification of oligoclonal agamospermous microspecies: taxonomic specialists versus microsatellites, Preslia, 88, p. 1-17.
463) Kirschner, J.; Lippert, W. (1995): Ein vorläufiger Überblick über Luzula sect. Luzula in Bayern, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 65, p. 7-26.
464) Kirschner, J.; Štepáněk, J. (1985): Selected and Annotated Chromosome Counts in Taraxacum sect. Palustria Dahlst. (Studies in Taraxacum 3.), Folia Geobotanica & Phytotaxonomica, 20, p. 407-417. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF02853286.
465) Kittler, J.; Schrader, O.; Kästner, U.; Marthe, F. (2015): Chromosome number and ploidy level of balm (Melissa officinalis), Molecular cytogenetics, 8:61, p. 1-6. DOI: http://dx.doi.org/10.1186/s13039-015-0166-z.
466) Klapproth, H.; Kadereit, J.W. (1995): Variability of isozyme pattern, chromosome number, and latex colour and components in the closely related Papaver dubium L. and P. lecoqii Lamotte in C Europe, Flora, 190, p. 97-104.
467) Kliber, A.; Eckert, C.G. (2005): Interaction between founder effect and selection during biological invasion in an aquatic plant, Evolution. International journal of organic evolution., 59, p. 1900-1913. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.0014-3820.2005.tb01060.x.
468) Kliphuis, E. (1962): Cytotaxonomical studies in the genus Galium. A preliminary report., Proceedings, Koninklijke Nederlandse Akademie van Wetenschappen. Series C, biological and medical sciences, 65, p. 279-285.
469) Kliphuis, E. (1970): Cytotaxonomic studies on some Galium species. Galium silvaticum L., Galium aristatum L. and Galium schultesii Vest., Proceedings, Koninklijke Nederlandse Akademie van Wetenschappen. Series C, biological and medical sciences, 73, p. 271-283.
470) Kliphuis, E. (1972): Cytotaxonomic Studies in Galium hercynicum Weig., Botaniska Notiser, 125, p. 487-492.
471) Kliphuis, E. (1974): Cytotaxonomic notes on some Galium species. A., Proceedings, Koninklijke Nederlandse Akademie van Wetenschappen. Series C, biological and medical sciences, 77, p. 345-357.
472) Kliphuis, E. (1974): Cytotaxonomic notes on some Galium species. B., Proceedings, Koninklijke Nederlandse Akademie van Wetenschappen. Series C, biological and medical sciences, 77, p. 358-366.
473) Kliphuis, E. (1974): Cytotaxonomic studies in Galium palustre L., Proceedings, Koninklijke Nederlandse Akademie van Wetenschappen. Series C, biological and medical sciences, 77, p. 408-425.
474) Kliphuis, E. (1980): Cytotaxonomic studies on Galium aparine L., Proceedings, Koninklijke Nederlandse Akademie van Wetenschappen. Series C, biological and medical sciences, 83, p. 53-64.
475) Kliphuis, E. (1984): Cytotaxonomic studies on Galium verum L., Botanica Helvetica, 94, p. 408-425. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-65878.
476) Klotz, G. (1968): Zur zytologischen Struktur der Gattung Cotoneaster Medic., Wissenschaftliche Zeitschrift der Friedrich-Schiller-Universität Jena/Thüringen. Mathematisch-naturwissenschaftliche Reihe, 17, p. 349-353.
477) Knotek, A.; Kolář, F. (201820): Different low-competition island habitats in Central Europe harbour similar levels of genetic diversity in relict populations of Galium pusillum agg. (Rubiaceae), Biological Journal of the Linnean Society, 125, p. 491–507.Table S1-D3, Fig. S1-S3. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/biolinnean/bly126.
478) Kobrlová, L.; Hroneš, M.; Koutecký, P.; Štech, M.; Trávníček, B. (2016): Symphytum tuberosum complex in central Europe: cytogeography, morphology, ecology and taxonomy, Preslia, 88, p. 77-112.Electronic appendix.
479) Koch, M. (1995): Biogeographie und Artbildung in Polyploidkomplexen. Molekularsystematische Untersuchungen an Microthlaspi F.K.MEYER und Cochlearia L. (Brassicaceae). lnaugural-Dissertation, Fachbereich Biologie/Chemie der Universität Osnabrück, Osnabrück, p. [1-11], 1-155, [1].
480) Koch, M. (1997): Zur Morphologie, Systematik und Verbreitung des Polyploid komplexes Thlaspi perfoliatum L. [Microthlaspi perfoliatum (L.) F. K. Meyer] in Deutschland, Osnabrücker Naturwissenschaftliche Mitteilungen, 23, p. 157-167.
481) Koch, M.; Mummenhoff, K.; Hurka, H. (1998): Isozymes, Speciation and Evolution in the Polyploid Complex Cochlearia L. (Brassicaceae), Botanica acta, 111, p. 411-425. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1998.tb00727.x.
482) Koch, M.; Mummenhoff, K.; Hurka, H. (1998): Molecular biogeography and evolution of the Microthlaspi perfoliatum s.l. polyploid complex (Brassicaceae): chloroplast DNA and nuclear ribosomal DNA restriction site variation, Canadian journal of botany, 76, p. 382-396. DOI: http://dx.doi.org/10.1139/b97-051.
483) Koch, M.; Bishop, J.; Mitchell-Olds, T. (1999): Molecular Systematics and Evolution of Arabidopsis and Arabis, Plant Biology, 1, p. 529-537. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1999.tb00779.x.
484) Koch, M.A.; Scheriau, C.; Betzin, A.; Hohmann, N.; Sharbel, T.F. (2013): Evolution of cryptic gene pools in Hypericum perforatum: the influence of reproductive system and gene flow, Annals of Botany, 111, p. 1083-1094.Supplementary Data. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mct065.
485) Koch, M.; Bernhardt, K.-G. (2004): Comparative biogeography of the cytotypes of annual Microthlaspi perfoliatum (Brassicaceae) in Europe using isozymes and cpDNA data: refugia, diversity centers, and postglacial colonization, American Journal of Botany, 91, p. 115-124. DOI: http://dx.doi.org/10.3732/ajb.91.1.115.
486) Koepff, B. (1983): Merkmalsanalysen an Tephroseris-Sippen. Diplomarbeit am Institut für Systematische Botanik des Fachbereichs Biologie der Universität München, München, p. 1-145.
487) Köhler, A. (1999): Biosystematische Untersuchungen an Ranunculus cassubicus sensu lato. Diplomarbeit, Philipps-Universität Marburg, Marburg, p. [1], 1-93, AI-AX, [1-2].
488) Köhler, M.,L.; Loos, G.H. (2001): Zur Unterscheidung der Komplexe Mentha arvensis s. lat. und M. x verticillata s. lat, Floristische Rundbriefe, 35, p. 33-35.
489) Kohn, L.; Gregor, T.; Paule, J.; Zizka, G. (2018): Chenopodium album – große morphologische Vielfalt bei Frankfurts Hexaploiden, Botanik und Naturschutz in Hessen, 30, p. 53-66.Tab. 4.
490) Kolář, F.; Štech, M.; Trávníček, P.; Rauchová, J.; Urfus, T.; Vít, P.; Kubešová, M.; Suda, J. (2009): Towards resolving the Knautia arvensis agg. (Dipsacaceae) puzzle: rimary and secondary contact zones and ploidy segregation at landscape and microgeographic scales, Annals of Botany, 103, p. 963-974.Supplementary Data. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcp016.
491) Kolář, F.; Lučanová, M.; Vít, P.; Urfus, T.; Chrtek, J.; Fér, T.; Ehrendorfer, F.; Suda, J. (2013): Diversity and endemism in deglaciated areas: ploidy, relative genome size and niche differentiation in the Galium pusillum complex (Rubiaceae) in Northern and Central Europe, Annals of Botany, 111, p. 1095-1108. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mct074.
492) Kolář, F.; Lučanová, M.; Koutecký, P.; Dortová, M.; Knotek, A.; Suda, J. (2014): Spatio-ecological segregation of diploid and tetraploid cytotypes of Galium valdepilosum in central Europe, Preslia, 86, p. 155-178.1-5.
493) Kolář, F.; Kaplan, Z.; Suda, J.; Štech, M. (2015): Populations of Knautia in ecologically distinct refugia on the Hercynian massif belong to two endemic species, Preslia, 87, p. 363-386.Electronic appendix.
494) Kolář, F.; Lučanová, M.; Záveská, E.; Fuxová, G.; Mandáková, T.; Španiel, S.; Senko, D.; Svitok, M.; Kolník, M.; Gudžinskas, Z.; Marhold, K. (2016): Ecological segregation does not drive the intricate parapatric distribution of diploid and tetraploid cytotypes of the Arabidopsis arenosa group (Brassicaceae), Biological Journal of the Linnean Society, 119, p. 673-688.Supplementary data. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/bij.12479.
495) Kolář, F.; Fuxowá, G.; Záveská, E.; Nagano, A.J.; Hyklová, L.; Lučanová, M.; Kudoh, H.; Marhold, K. (2016): Northern glacial refugia and altitudinal niche divergence shape genome-wide differentiation in the emerging plant model Arabidopsis arenosa, Molecular Ecology, 25, p. 3929-3949.Supplementary material online. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/mec.13721.
496) König, D. (1939): Die Chromosmenverhältnisse der deutschen Salicornien, Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 29, p. 361-375. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01911104.
497) König, C. (1994): Biometrische und karyosystematische Untersuchungen am Polyploidkomplex Biscutella laevigata, p. [1-3], 1-84, Wien: Verlag der Österreichischen Akademie der Wissenschaften
498) König, A.: Unpublished chromosome count
499) Koopmans, A. (1970): Species differentiation in Papaver dubium, The New Phytologist; a British botanical journal, 69, p. 1121-1130. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1469-8137.1970.tb02493.x.
500) Kootin-Sanwu, M.; Woodell, S.R.J. (1970): The Cytology of Caltha palustris L. (sensu lato): Distribution and Behaviour of the Chromosome Races, Caryologia, 23, p. 225-239.
501) Korneck, D. (1985): Beobachtungen von Farn- und Blütenpflanzen in Mittel- und Unterfranken sowie angrenzenden Gebieten, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 56, p. 53-80.
502) Korneck, D. (2006): Centaurea stoebe subsp. stoebe und subsp. australis in Südhessen, Hessische Floristische Briefe, 55, p. 21-30.
503) Korneck, D. (2016): Festuca tomanii, Tomans Schwingel, bei Kreuzwertheim am Main, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 86, p. 243-245.
504) Korneck, D.; Gregor, T.; Paule, J. (2014): Zur Identität von Festuca duvalii, Kochia, 8, p. 15-26.
505) Korneck, D.; Gregor, T. (2012): Festuca rhenana spec. nov. und Festuca heteropachys, zwei verkannte Schwingel der Flora Deutschlands, Kochia, 6, p. 11-28.
506) Korneck, D.; Gregor, T. (2015): Festuca tomanii sp. nov., ein Dünen-Schwingel des nördlichen oberrhein-, des mittleren Main- und des böhmischen Elbetales, Kochia, 9, p. 37-58.
507) Koutecký, P.; Prančl, J.; Košnar, J.; Koutecký, E.; Hanzlíková, J.; Lučanová, M.; Nejedlá, M.; Kaplan, Z. (2021): Waking up from a taxonomist’s nightmare: emerging structure of Ranunculus section Batrachium (Ranunculaceae) in central Europe based on molecular data and genome sizes, Botanical Journal of the Linnean Society, p. [21].Supplementary data. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/botlinnean/boab063.
508) Kovanda, M. (1966): Some Chromosome Counts in the Campanula rotundifolia Complex II, Folia Geobotanica et Phytotaxonomica Bohemoslovaca, 1, p. 268-273.
509) Kovanda, M. (1968): Cytotaxonomic Studies in the Genus Jasione L. I. Jasione montana L., Folia Geobotanica & Phytotaxonomica, 3, p. 193-199. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF02854674.
510) Kovanda, M. (1970): Polyploidy and Variation in the Campanula rotundifolia Complex. Part 1. (General), Rozpravy Československé akademie vĕd. Řada matematických a přírodních vĕd, 80, p. 1-95, pl. 1-3.
511) Kovanda, M. (1983): Chromosome numbers in selected Angiosperms (1), Preslia, 55, p. 193-205.
512) Krach, B. (1988): Tephroseris integrifolia subsp. vindelicorum - eine neue Sippe vom Augsburger Lechfeid, Mitteilungen der Botanischen Staatssammlung München, 27, p. 73-86.
513) Krähenbühl, M.; Küpfer, P. (1995): Le genre Mercurialis (Euphorbiaceae): cytogeographie et evolution du complexe polyploide des M. perennis L., M. ovata Sternb. & Hoppe et M. leiocarpa Sieb. & Zucc., Candollea. Organe du Conservatoire et du Jardin Botaniques de la Ville de Genève, 50, p. 411-430.
514) Krahulcová, A.; Raabe, U.; Krahulec, F. (2012): Prozesse innerhalb hybridisierender Pilosella-Populationen: P. aurantiaca und P. officinarum in Hagen (Nordrhein-Westfalen), Kochia, 6, p. 123-141.
515) Krahulcová, A.; Tomšovic, P. (1997): Ploidy levels in some European representatives of the Suaeda maritima group, Preslia, 69, p. 327-332.
516) Krahulec, F.; Krahulcová, A.; Rosenbaumová, R.; Plačková, I. (2011): Production of polyhaploids by facultatively apomictic Pilosella can result in the formation of new genotypes via genome doubling, Preslia, 83, p. 471-490.
517) Krak, K.; Caklová, P.; Chrtek, J.; Fehrer, J. (2013): Reconstruction of phylogenetic relationships in a highly reticulate group with deep coalescence and recent speciation (Hieracium, Asteraceae), Heredity; an international journal of genetics, 110, p. 138-151.Supplementary information. DOI: http://dx.doi.org/10.1038/hdy.2012.100.
518) Krásná, I. (2008): Cytogeography of Cardamine amara in the Czech Republic and the origin of tetraploid populations [auf tschechisch]. Diplomová práce, Katedra botaniky Přírodovědecké fakulty Univerzity Karlovy v Praze, Praha, p. [1-3], 1-148.
519) Krause, S.; Bennert, H.W.; Thiex, C. (1999): Verbreitung, Ökologie, Vergesellschaftung und Morphologie von Cystopteris dickieana Sim (Woodsiaceae, Pteridophyta) in Deutschland, Tuexenia. Mitteilungen der floristisch-soziologischen Arbeitsgemeinschaft. Neue Serie, 19, p. 219-239.
520) Krebs, C. (2009): Hybridization in the invasive Fallopia complex and its influence on sexual reproduction and herbivore resistance. Dissertation zur Erlangung des Doktorgrades der Naturwissenschaften (Dr. rer. nat.), Fachbereich Biologie der Philipps-Universität Marburg, Marburg, p. [1-5], 1-155 & [1].
521) Krebs, C.; Mahy, G.; Matthies, D.; Schaffner, U.; Tiébré, M.-S.; Bizoux, J.-P. (2010): Taxa distribution and RAPD markers indicate different origin and regional differentiation of hybrids in the invasive Fallopia complex in central-western Europe, Plant Biology, 12, p. 215-223. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.2009.00219.x.
522) Krendl, F. (1993): Chromosomenzahlen und geographische Verbreitung in der Gattung Galium (Sect. Leptogalium - Rubiaceae. In: : Biosystematics and Ecology-Series 4, p. 51-104, Wien: Verlag der Österreichischen Akademie der Wissenschaften
523) Krendl, F. (2003): Galium glaucum L. und Galium eruptivum KRENDL sp.n. (Rubiaceae), Annalen des Naturhistorischen Museums in Wien. Serie B, Botanik und Zoologie, 104, p. 567-690.
524) Kress, A. (1963): Zytotaxonomische Untersuchungen an den Primeln der Sektion Auricula Pax, Oesterreichische Botanische Zeitschrift. Gemeinnütziges Organ für Botanik, 110, p. 53-102. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01287759.
525) Kress, A. (1963): Zytotaxonomische Untersuchungen an Primulaceen, Phyton. Annales rei Botanicae, 10, p. 225-236.
526) Kress, A. (1969): Zytotaxonomische Untersuchungen an Primulaceen [Teil 2], Phyton. Annales rei Botanicae, 13, p. 211-225.
527) Krügel, T. (1992): Zur zytologischen Struktur der Gattung Cotoneaster (Rosaceae, Maloideae) III, Beiträge zur Phytotaxonomie, 15, p. 69-86.
528) Kubátová, B.; Trávníček, P.; Bastlová, D.; Čurn, V.; Jarolímová, V.; Suda, J. (2008): DNA ploidy-level variation in native and invasive populations of Lythrum salicaria at a large geographical scale, Journal of Biogeography, 35, p. 167-176.Supporting Information. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-2699.2007.01781.x.
529) Kuhn, E. (1928): Zur Zytologie von Thalictrum, Jahrbücher für Wissenschaftliche Botanik, 68, p. 382-429.
530) Kukkonen, I.; Uotila, P. (1977): On the taxonomy, morphology and distribution of Asarum europaeum (Aristolochiaceae), Annales Botanici Fennici, 14, p. 131-142.
531) Kunz, S. (1980): Untersuchungen über die Zytotaxonomie, Morphologie und Verbreitung von Euphorbia dulcis s. lat.. Diplomarbeit, Fachbereich Biologie - Botanik - Philipps-Universität Marburg, Marburg, p. [1-3], 1-98, [1-3].
532) Künzel, R. (1980): Ranunculus ficaria L. (Ranunculaceae) in Berlin. Zur Karyologie und Morphologie einer kritischen Sippe, Verhandlungen des Botanischen Vereins der Provinz Brandenburg, 115, p. 73-108.
533) Küpfer, P. (1974): Recherches sur les liens de parenté entre la flore orophile des Alpes et celle des Pyrenees, Boissiera; mémoires des Conservatoire et de l’Institut de Botanique Systématique de l’Université de Genève, 23, p. 1-322, pl. I-X.
534) Kúr, P.; Košnar, J.; Koutecký, P.; Tremetsberger, K.; Štech, M. (2016): Origin of Spergularia ×kurkae, a hybrid between the rare endemic S. echinosperma and its widespread congener S. rubra, Preslia, 88, p. 391-407.Electronic appendix.
535) Lachmuth, S.; Durka, W.; Schurr, F.M. (2010): The making of a rapid plant invader: genetic diversity and differentiation in the native and invaded range of Senecio inaequidens, Molecular Ecology, 19, p. 3952-3967. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-294X.2010.04797.x.
536) Lafuma, L.; Balkwill, K.; Imbert, E.; Verlaque, R.; Maurice, S. (2003): Ploidy level and origin of the European invasive weed Senecio inaequidens (Asteraceae), Plant Systematics and Evolution, 243, p. 59-72. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s00606-003-0075-0.
537) Lamprecht, von H. (1962): Cyto-systematische Untersuchungen an Anemone nemorosa L. und Anemone ranunculoides L., Beiträge zur Biologie der Pflanzen, 37, p. 107-146.
538) Landolt, E.; Urbanska-Worytkiewicz, K. (1980): List of the studied "Lemnaceae" samples: origin and chromosome numbers, Veröffentlichungen des Geobotanischen Institutes der Eidg. Techn. Hochschule, Stiftung Rübel, in Zürich, 70, p. 205-247.
539) Lange, H. (1962): Vegetations- und Standortsuntersuchungen in der Grenzzone des Bodenseeufers, Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 75, p. 366-377. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1963.tb02555.x.
540) Lang, G. (1967): Die Ufervegetation des westlichen Bodensees, Archiv für Hydrobiologie. Supplement, 4, p. 437-574.
541) Larsen, K. (1954): Cytotaxonomical Studies in Lotus. I. Lotus corniculatus L. sens. lat., Botanisk Tidsskrift, 51, p. 205-211.
542) Larsen, K. (1957): Cryptospecies in Lathyrus pratensis, 53, p. 291-294.
543) Lehmann, E. (1941): Polyploidie und geographische Verbreitung der Arten der Gattung Veronica, Jahrbücher für Wissenschaftliche Botanik, 89, p. 461-542.
544) Lenski, I. (1964): Merkmalsprüfungen an den europäischen Zytotypen von Polypodium vulgare L. s. lat., Flora, 154, p. 245-266.
545) Lenski, I.; Ludwig, W. (1964): Poa supina und Poa annua x supina in Hessen, Hessische Floristische Briefe, 131, p. 41-50.
546) Ludwig, W.; Lenski, I. (1972): Über Potentilla anglica und P. anglica x erecta in Hessen, Hessische Floristische Briefe, 21, p. 34-36.
547) Leonhards, W.; Rasbach, H.; Jäger, W.; Bennert, H.W. (1990): Vorkommen und Cytologie von Dryopteris x deweveri (= Dryopteris carthusiana x D. dilatata, Dryopteridaceae, Pteridophyta) in Nordrhein-Westfalen, Tuexenia. Mitteilungen der floristisch-soziologischen Arbeitsgemeinschaft. Neue Serie, 10, p. 17-24.
548) Lepper, L. (1968): Über Paradichlorbenzol als Vorbehandlungsmittel in der Chromosomentechnik, Wissenschaftliche Zeitschrift der Friedrich-Schiller-Universität Jena/Thüringen. Mathematisch-naturwissenschaftliche Reihe, 17, p. 375-379.
549) Lepper, L. (1970): Beiträge zur Chromosomenzahlendokumentation, Wissenschaftliche Zeitschrift der Friedrich-Schiller-Universität Jena/Thüringen. Mathematisch-naturwissenschaftliche Reihe, 19, p. 369-376.
550) Lepper, L. (1985): Karyologische Untersuchungen an Pulmonaria obscura Dum., P. angustijolia L. und P. mollis Wulfen ex Hornemann - ein Beitrag zur Kenntnis der thüringischen Pulmonarien, Gleditschia. Beiträge zur botanischen Taxonomie und deren Grenzgebiete, 13, p. 21-35.
551) Lepší, M.; Lepší, P.; Vít, P. (2013): Sorbus quernea: taxonomic confusion caused by the naturalization of an alien species, Sorbus mougeotii, Preslia, 85, p. 159-178.
552) Lepší, M.; Lepší, P.; Koutecký, P.; Bílá, J.; Vít; P. (2015): Taxonomic revision of Sorbus subgenus Aria occurring in the Czech Republic, Preslia, 87, p. 109-162.
553) Lepší, M.; Koutecký, P.; Nosková, J.; Lepší, P.; Urfus, T.; Rich, T.C.G. (2019): Versatility of reproductive modes and ploidy level interactions in Sorbus s.l. (Malinae, Rosaceae), Botanical Journal of the Linnean Society, p. 1-21.Supporting information 1-3. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/botlinnean/boz054 .
554) Lesemann, S.S.; Bölke, N.; Tejeda Fernández, C.E.; Buschmann, S.; Gerischer, U.; Neinhuis, C.; Herklotz, V.; Ritz, C.M.; Olbricht, K. (2017): Fruit diversity in a natural European habitat of Fragaria moschata Weston, Acta Horticulturae, 1156, p. 215–222. DOI: http://dx.doi.org/10.17660/ActaHortic.2017.1156.33.
555) Lietz, J. (1930): Beiträge zur Zytologie der Gattung Mentha. Inaugural-Dissertation zur Erlangung der Doktorwürde, Philosophische Fakultät der Friedrich-Wilhelms-Universität, Berlin, p. 1-136.
556) Liljefors, A. (1953): Studies on propagation, embryology, and pollination in Sorbus, Acta Horti Bergiani, 16, p. 277-329.
557) Liljefors, A. (1955): Cytological studies in Sorbus, Acta Horti Bergiani, 17, p. 47-113.
558) Link, C.T. (1992): Untersuchungen zur Polymorphie des Puccinellia-distans-Komplexes. Diplomarbeit, Fachbereich Biologie der Philipps-Universität Marburg, Marburg, p. 1-124 + Anhang.
559) Lippert, W. (1985): Morphologische und zytologische Untersuchung an Fragaria, insbesondere an Fragaria moschata in Bayern, Botanische Jahrbücher für Systematik, Pflanzengeschichte und Pflanzengeographie, 107, p. 195-202.
560) Lippert, W. (1986): Beiträge zu kritischen oder wenig beachteten Arten und Artengruppen der bayerischen Flora Teil 3, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 57, p. 113-120.
561) Lippert, W. (2000): Auch gewöhnliche Pflanzen bieten Neues. Zum Vorkommen von „Urtica galeopsifolia" in Bayern, Hessen und Rheinland-Pfalz, Hoppea. Denkschriften der Regensburgischen botanischen Gesellschaft, 61, p. 615-622.
562) Lippert, W. (2006): Chromosomenzahlen von Pflanzen aus Bayern und anderen Gebieten, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 76, p. 85-100.
563) Lippert, W.; Heubl, G.R. (1988): Chromosomenzahlen von Pflanzen aus Bayern und angrenzenden Gebieten, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 59, p. 13-22.
564) Lippert, W.; Heubl, G.R. (1989): Chromosomenzahlen von Pflanzen aus Bayern und angrenzenden Gebieten (Teil 2), Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 60, p. 73-83.
565) Lippert, W.; Merxmüller, H. (1974): Untersuchungen zur Morphologie und Verbreitung der bayerischen Alchemillen (I), Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 45, p. 37-70.
566) Lippert, W.; Merxmüller, H. (1986): Galium truniacum (Ronniger) Ronniger in Bayern, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 57, p. 183.
567) Lippert, W.; Tietz, S. (2000): Beitrag zur Kenntnis des Formenkreises Leontodon hispidus L. - Leontodon hispidus L. subsp. dubius (Hoppe) Pawłowska, eine verkannte Sippe, Preslia, 72, p. 519-528.
568) Lippert, W.; Merxmüller, H.: Unpublished chromosome count
569) Lippert, W.: Unpublished chromosome count
570) Lohammar, G. (1931): Two chromosome numbers in Butomus umbellatus L., Svensk botanisk tidskrift, 25, p. 495-499.
571) Lohwasser, U. (1997): Biosystematische Untersuchungen an Rumex acetosella Linnaeus in Hessen und angrenzenden Gebieten, Botanik und Naturschutz in Hessen, 9, p. 47-80.
572) Lohwasser, U. (2001): Biosystematische Untersuchungen an Ranunculus auricomus L. (Ranunculaceae) in Deutschland, Dissertationes Botanicae, 343, p. 1-220.
573) Loidl, F. (1979): C-Band Proximity of Chiasmata and Absence of Terminalisation in Allium flavum (Liliaceae), Chromosoma, 73, p. 45-51. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF00294843.
574) Lövkvist, B. (1956): The Cardamine pratensis complex. Outlines of its cytogenetics and taxonomy, Symbolae Botanicae Upsaliensis, 14, p. 1-131, [1], maps 1-16.
575) Loos, G.H. (1997): Zur Taxonomie der Goldnesseln (Lamium L. subgenus Galeobdolon (Adans.) Aschers., Floristische Rundbriefe. Zeitschrift für floristische Geobotanik, Populationsökologie und Systematik, 31, p. 39-50.
576) Lorenz, J. (2018): Comparative analysis of the distribution dynamics of Spiraea spp. (Rosaceae) in the biosphere reserve Oberlausitzer Heide- und Teichlandschaften, Daubaner Wald. Masterarbeit, Technische Universität Dresden. Internationales Hochschulinstitut Zittau, Görlitz, p. 1-34.
577) Löve, Á. (1969): IOPB Chromosome number reports XXIII, Taxon, 18, p. 560-562. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/j.1996-8175.1969.tb02930.x.
578) Löve, Á. (1970): IOPB Chromosome Number Reports XXVI, Taxon, 19, p. 264-269. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/j.1996-8175.1970.tb03017.x.
579) Löve, Á. (1972): IOPB Chromosome number reports XXXVI, Taxon, 21, p. 333-346. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/j.1996-8175.1972.tb03276.x.
580) Löve, Á. (1972): IOPB Chromosome number reports XXXVII, Taxon, 21, p. 495-500. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/j.1996-8175.1972.tb03299.x.
581) Löve, Á. (1973): IOPB Chromosome number reports XL, Taxon, 22, p. 285-291. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/j.1996-8175.1973.tb03355.x.
582) Löve, Á. (1973): IOPB Chromosome number reports XLI, Taxon, 22, p. 459-464. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/j.1996-8175.1973.tb03387.x.
583) Löve, Á. (1977): IOPB Chromosome number reports LVII, Taxon, 26, p. 443-452. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/j.1996-8175.1977.tb04204.x.
584) Löve, Á. (1979): IOPB Chromosome number reports LXIV, Taxon, 28, p. 391-408. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/j.1996-8175.1979.tb00530.x.
585) Löve, Á. (1979): IOPB Chromosome number reports LXIII, Taxon, 28, p. 265-279. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/j.1996-8175.1979.tb00499.x.
586) Löve, Á. (1986): Chromosome number reports XCIII, Taxon, 35, p. 897-903. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/j.1996-8175.1986.tb00852.x.
587) Löve, Á.; Löve, D. (1961): Chromosome numbers of Central and Northwest European plants, Opera botanica a Societate Botanice Lundensi, 5, p. [1-6], 1-581.
588) Lövkvist, B. (1956): The Cardamine pratensis complex. Outlines of its cytogenetics and taxonomy, Symbolae Botanicae Upsaliensis, 14, p. 1-131, maps I-XVI.
589) Lövkvist, B. (1962): Chromosome and Differentiation Studies in Flowering Plants of Skåne, South Sweden. I. General aspects. Type species with coastal differentiation, Botaniska Notiser, 115, p. 261-287.
590) Lübbert, G. (1951): Vergleichende cytologische, morphologische und physiologische Untersuchungen innerhalb der Gattung Diplotaxis, Beiträge zur Biologie der Pflanzen, 28, p. 254-295.
591) Lubienski, M., Bennert, H.W.; Körner, S. (2010): Two new triploid hybrids in Equisetum subgenus Hippochaete for Central Europe and notes on the taxonomic value of "Equisetum trachyodon forma Fuchsii" (Equisetaceae, Pteridophyta), Nova Hedwigia; Zeitschrift für Kryptogamenkunde, 90, p. 321-341. DOI: http://dx.doi.org/10.1127/0029-5035/2010/0090-0321.
592) Lubienski, M., Bennert, H.W.; Körner, S. (2012): Equisetum ×ascendens Lubienski & Bennert (Subg. Hippochaete, Equisetaceae), eine neue Schachtelhalm-Sippe für die Flora Nordrhein-Westfalens, Jahrbücher des Bochumer Botanischen Vereins, 3, p. 7-20.
593) Ludwig, W. (1961): Cochlearia officinalis s. str. und Cochlearia pyrenaica in Hessen, Hessische Floristische Briefe, 10, p. 51-53.
594) Ludwig, W. (1962): Neues Fundorts-Verzeichnis zur Flora von Hessen (= Supplement zu H. Klein †: Flora von Hessen und Mainfranken). Teil 1 (Vorbemerkungen; Pteridophyta), Jahrbücher des Nassauischen Vereins für Naturkunde, 96, p. 5-45.
595) Ludwig, W. (1964): Schriftenschau. Floristische Beiträge zur geobotanischen Geländearbeit in Mitteldeutschland (VII). - Wiss. Zeitschr. Martin-Luther-Univ. Halle-Wittenberg, math.-naturwiss. Reihe, 12 (9), S. 669-728, Halle "Okt. 1963" (eingegangen Februar 1964), Hessische Floristische Briefe, 13, p. 24.
596) Ludwig, W. (1982): Scleranthus verticillatus in Hessen - "neu" für die Bundesrepublik Deutschland, Hessische Floristische Briefe, 32, p. 22-24.
597) Ludwig, W. (1985): Parietaria judaica in Hessen – ein Überblick, Hessische Floristische Briefe, 34, p. 18-23.
598) Ludwig, W.; Lenski, I. (1969): Zur Kenntnis der hessischen Flora, Jahrbücher des Nassauischen Vereins für Naturkunde, 100, p. 112-133.
599) Luttikhuizen, P.C.; Stift, M.; Kuperus, P.; van Tienderen, P.H. (2017): Genetic diversity in diploid vs. tetraploid Rorippa amphibia (Brassicaceae), Molecular Ecology, 16, p. 3544-3553. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-294X.2007.03411.x.
600) Lysak, M.A.; Koch, M.A.; Pecinka, A.; Schubert, I. (2005): Chromosome triplication found across the tribe Brassiceae, Genome research, 15, p. 516-525. DOI: http://dx.doi.org/10.1101/gr.3531105.
601) Macel, M.; Dostálek, T.; Esch, S.; Bucharová, A.; van Dam, N.M.; Tielbörger, K.; Verhoeven, K.J.F.; Münzbergová, Z. (2017): Evolutionary responses to climate change in a range expanding plant, Opera botanica a Societate Botanice Lundensi, 184, p. 543-554.Supplementary material 1. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s00442-017-3864-x.
602) Macháčková, P.; Majeský, L.; Hroneš, M.; Hřibová, E.; Trávníček, B.; Vašut, R.J. (2018): New chromosome counts and genome size estimates for 28 species of Taraxacum sect. Taraxacum, Comparative Cytogenetics, 12, p. 403-420. DOI: http://dx.doi.org/10.3897/CompCytogen.v12i3.27307.
603) Macková, L.; Nosková, J.; Ďurišová, Ľ.; Urfus, T. (2020): Insights into the cytotype and reproductive puzzle of Cotoneaster integerrimus in the Western Carpathians, Plant Systematics and Evolution, 306: 58Supplementary material 1-7. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s00606-020-01684-6.
604) Majeský, Ľ., Hroneš, M., Kitner, M., Válová, L., Mártonfiová, L., Płachno, B.J., Conti, F., Dančák. M. (2022): Pinguicula vulgaris in central Europe: when does one species turn into another?, Preslia, 94, p. 275-304. DOI: http://dx.doi.org/10.23855/preslia.2022.275.
605) Małecka, J. (1969): Further cyto-taxonomic studies in the genus Taraxacum section Erythrosperma Dt. T., Acta Biologica Cracoviensia. Series Botanica, 12, p. 57-70, pl. 15-16.
606) Małecka, J. (1970): Cyto-taxonomic studies in the genus Taraxacum section Palustria Dahlstedt, Acta Biologica Cracoviensia. Series Botanica, 13, p. 155-168, pl. 28-33.
607) Malling, H. (1957): The chromosome number of Honckenya peploides (L.) Ehrh., with a note on its mode of sex determination, Hereditas. Genetisk Arkiv, 43, p. 517-525. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1601-5223.1957.tb03454.x.
608) Mandák, B.; Vít, P.; Krak, K.; Trávníček, P.; Havrdová, A.; Hadincová, V.; Zákravský, P.; Jarolímová, V.; Bacles, C.F.E.; Douda, J. (2016): Flow cytometry, microsatellites and niche models reveal the origins and geographical structure of Alnus glutinosa populations in Europe, Annals of Botany, 117, p. 107-120.Supplementary Data. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcv158.
609) Mandák, B.; Krak, K.; Vít, P.; Pavlíková, Z.; Lomonosova, M.N.; Habibia, F.; Wang, L.; Jellen, E.N.; Douda, J. (2016): How genome size variation is linked with evolution within Chenopodium sensu lato, Perspectives in plant ecology, evolution and systematics, 23, p. 18-32.Appendix. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.ppees.2016.09.004.
610) Mandáková, T.; Marhold, K.; Lysak, M.A. (2014): The widespread crucifer species Cardamine flexuosa is an allotetraploid with a conserved subgenomic structure, The New Phytologist; a British botanical journal, 201, p. 982–992.Fig. S1. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/nph.12567.
611) Manton, I. (1932): lntroduction to the General Cytology of the Cruciferae, Annals of Botany, 46, p. 509-556. DOI: https://dx.doi.org/10.1093/oxfordjournals.aob.a090334.
612) Manton, I. (1934): The problem of Biscutella laevigata L., Zeitschrift für induktive Abstammungs- und Vererbungslehre, 67, p. 41-57. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01744017.
613) Manton, I. (1935): The cytological history of Watercress (Nasturtium officinale R. Br.), Zeitschrift für induktive Abstammungs- und Vererbungslehre, 69, p. 132-157, pl. I-II. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01762872.
614) Manton, I. (1937): The Problem of Biscutella laevigata L. II. The Evidence from Meiosis, Annals of Botany, 51, p. 439-462, pl. XIX-XX. DOI: https://dx.doi.org/10.1093/oxfordjournals.aob.a083479.
615) Manton, I.; Reichstein, T. (1963): Die Chromosomenzahlen von Cystopteris sudetica A. Br. et Milde von Berchtesgaden (Bayern) sowie von Cystopteris dickieana Sim s. l. vom Foostock (Kanton Glarus, Schweiz), Bauhinia. Zeitschrift der Basler Botanischen Gesellschaft, 2, p. 307-312, 331-336.
616) Marhold, K. (1999): Taxonomic evalutions of the tetraploid populations of Cardamine amara (Brassicaceae) of the Eastern Alps and adjacent areas, Botanica Helvetica, 109, p. 67-84. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-73287.
617) Marhold, K.; Huthmann, M.; Hurka, H. (2002): Evolutionary history of the polyploid complex of Cardamine amara (Brassicaceae): isozyme evidence, Plant Systematics and Evolution, 233, p. 15-28. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s00606-002-0213-1.
618) Marhold, K.; Jongepierová, I.; Krahulcová,A.; Kučera, J. (2005): Morphological and karyological differentiation of Gymnadenia densiflora and G. conopsea in the Czech Republic and Slovakia, Preslia, 77, p. 159–176.
619) Marhold, K.; Šlenker, M.; Kudoh, H.; Zozomová-Lihová, J. (2016): Cardamine occulta, the correct species name for invasive Asian plants previously classified as C. flexuosa, and its occurrence in Europe, PhytoKeys, 62, p. 57-62. DOI: http://dx.doi.org/10.3897/phytokeys.62.7865.
620) Marhold, K.; Breitwieser, I. (2012): IAPT/IOPB chromosome data 13, Taxon, 61, p. 889-902.Supplementary data. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/tax.614023.
621) Marhold, K.; Breitwieser, I. (2012): IAPT/IOPB chromosome data 14, Taxon, 61, p. 1336-1345.Supplementary data. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/tax.616027.
622) Marhold, K. (2009): IAPT/IOPB chromosome data 8, Taxon, 58, p. 1281-1289.Supplementary data . DOI: https://dx.doi.org/10.1002/tax.584017.
623) Marhold, K. (2015): IAPT/IOPB chromosome data 19, Taxon, 64, p. 1068-1074.Supplementary data. DOI: https://dx.doi.org/10.12705/645.34.
624) Marhold, K.; Kučera, J. (2016): IAPT/IOPB chromosome data 21, Taxon, 65, p. 673-676.Supplementary data. DOI: http://dx.doi.org/10.12705/653.44.
625) Marhold, K.; Kučera, J. (2017): IAPT/IOPB chromosome data 26, Taxon, 66, p. 1487–1499.Supplementary data. DOI: https://dx.doi.org/10.12705/666.30.
626) Marsden-Jones, E.M.; Turrill, W.B. (1952): Studies on Ranunculus ficaria, Journal of Genetics, 50, p. 522-534, pl. 22-28. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF02986847.
627) Maude, P.F. (1940): Chromosome numbers in some British plants, The New Phytologist; a British botanical journal, 39, p. 17-32. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1469-8137.1940.tb07119.x.
628) Meierott, L. (2002): Vorläufige Bemerkungen zu Achillea pratensis Saukel & Länger in Franken, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 72, p. 125-128.
629) Meierott, L. (2008): Flora der Haßberge und des Grabfeldes, p. Band 1: 1-688, Band 2: 689-1448, Eching: IHW
630) Meierott, L. (2015): Pulmonaria collina W. Sauer - in Bayern nicht ausgestorben, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 85, p. 117-120.
631) Meierott, L.: Unpublished chromosome count
632) Meijers, T. (1957): Een onderzoek van het Linneon Valeriana officinalis L in Nederland. Proefschrift ter verkrijging van de graad van doctor in de wis- en naturkunde, Rijksuniversiteit te Leiden, Leiden, p. 1-122, Afb. 1-23.
633) Meijers, T. (1960): Over methoden ter onderscheiding van verschillende cytotypen van Valeriana officinalis L., Pharmaceutisch Weekblad, 95, p. 269-278.
634) Melchers, G. (1935): Über reziprok verschiedene Merkmalsausbildung in der F1 der Kreuzung Saxifraga adscendens L. × S. tridactylites L. unter Berticksichtigung des Entwicklungsstadiums, Zeitschrift für induktive Abstammungs- und Vererbungslehre, 69, p. 263-277. DOI: http://dx.doi.org/ 10.1007/BF01762877.
635) Melichárková, A.; Španiel, S.; Brišková, D.; Marhold, K.; Zozomová-Lihová, J. (2017): Unravelling allopolyploid origins in the Alyssum montanum–A. repens species complex (Brassicaceae): low-copy nuclear gene data complement plastid DNA sequences and AFLPs, Botanical Journal of the Linnean Society, 184, p. 485–502. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/botlinnean/box039.
636) Melichárková, A.; Šlenker, M.; Zozomová-Lihová, J.; Skokanová, K.; Šingliarová, B.; Kačmárová, T.; Caboňová, M.; Kempa, M.; Šrámková, G.; Mandáková,T.; Lysák, M.A.; Svitok, M.; Mártonfiová, L.; Marhold, K. (2020): So Closely Related and Yet So Different: Strong Contrasts Between the Evolutionary Histories of Species of the Cardamine pratensis Polyploid Complex in Central Europe, Frontiers in Plant Science, 11Supplementary Material. DOI: http://dx.doi.org/10.3389/fpls.2020.588856.
637) Melzheimer, G.; Melzheimer, V.; Damboldt, J. (1976): Die Ranunculus auricomus-Sippen West-Berlins, Botanische Jahrbücher für Systematik, Pflanzengeschichte und Pflanzengeographie, 95, p. 339-372.
638) Melzheimer, V.; Damboldt, J. (1973): Zur Morphologie und Cytologie tetraploider Sippen von Silene vulgaris (Caryophyllaceae), Willdenowia, 7, p. 83-100.
639) Mereďa, P.; Hodálová, I.; Mártonfi, P.; Kučera, J.; Lihová, J. (2008): Intraspecific Variation in Viola suavis in Europe: Parallel Evolution of White-flowered Morphotypes, Annals of Botany, 102, p. 443-462. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcn117.
640) Merxmüller, H. (1982): Hieracium schneidii - ein unbekannter bayerischer Endemit, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 53, p. 91-95.
641) Merxmüller, H.; Buttler, K.P. (1964): Die Chromosomenzahlen der mitteleuropäischen und alpinen Draben, Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 77, p. 411-415. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/10.1111/j.1438-8677.1964.tb03556.x.
642) Merxmüller, H.; Grau, J. (1964): Chromosomenzahlen aus der Gattung Myosotis L., Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 76, p. 23-29. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/10.1111/j.1438-8677.1963.tb02981.x.
643) Merxmüller, H.; Grau, J. (1969): Dysploidie bei Pulmonaria, Revue Roumaine de biologie. Série de botanique, 14, p. 57-63.
644) Merxmüller, H.; Heubl, G.R. (1983): Karyologische und palynologische Studien zur Verwandtschaft der Polygala chamaebuxus L., Botanica Helvetica, 93, p. 133-144. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-65243.
645) Merxmüller, H.; Lippert, W. (1978): Studien an bayerischen Sumpf-Löwenzähnen, Hoppea. Denkschriften der Regensburgischen botanischen Gesellschaft, 37, p. 273-290.
646) Metzing, D.; Cordes, H.; Kuhbier, H. (1996): Biosystematische Untersuchungen an Suaeda maritima (Chenopodiaceae), Drosera; naturkundliche Mitteilungen aus Nordwestdeutschland, 1996, p. 1-26.
647) Meudt, H.M.; Rojas-Andrés, B.M.; Prebble, J.M.; Low, E.; Garnock-Jones, P.J.; Albach, D.C. (2015): Is genome downsizing associated with diversification in polyploid lineages of Veronica?, Botanical Journal of the Linnean Society, 178, p. 243–266.Fig. S1-3, Tab. S1-S4. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/boj.12276.
648) Meusel, H.; Kästner, A. (1990): Lebensgeschichte der Gold- und Silberdisteln. Monographie der mediterran-mitteleuropäischen Compositen-Gattung Carlina. Band I. Merkmalsspektren und Lebensräume der Gattung, Denkschriften, Österreichische Akademie der Wissenschaften. Mathematisch-naturwissenschaftliche Klasse, 127, p. 1-294, Taf. I-Taf. XXXII.
649) Meve, U.: Unpublished chromosome count
650) Meyer, D.E. (1952): Untersuchungen über Bastardierung in der Gattung Asplenium, Bibliotheca Botanica, 123, p. [1-4], 1-34, 1 tab..
651) Meyer, D.E. (1957): Zur Zytologie der Asplenien Mitteleuropas (I-XV), Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 70, p. 57-66. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1957.tb01303.x.
652) Meyer, D.E. (1958): Zur Zytologie der Asplenien Mitteleuropas (XVI-XX), Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 71, p. 11-20. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1958.tb01354.x.
653) Meyer, D.E. (1958): Die Chromosomenzahlen der Asplenien Mitteleuropas, Willdenowia, 2, p. 41-52.
654) Meyer, D.E. (1959): Zur Zytologie der Asplenien Mitteleuropas (XXI-XXIII), Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 72, p. 37-48. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1959.tb01411.x.
655) Meyer, D.E. (1962): Zur Zytologie der Asplenien Mitteleuropas (XXIX. Abschluß), Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 74, p. 449-461. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1962.tb01861.x.
656) Meyer, D.E. (1964): Über neue und seltene Asplenien Europas, Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 77, p. 3-13. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/10.1111/j.1438-8677.1964.tb03490.x.
657) Meyer, N.; Gregor, T. Meierott, L.; Paule, J. (2014): Diploidy suggests hybrid origin and sexuality in Sorbus subgen. Tormaria from Thuringia, Central Germany, Plant Systematics and Evolution, 300, p. 2169-2175. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s00606-014-1043-7.
658) Meyer, N.; Feulner, M.; Voss, T.; Rich,T.; Gregor, T.; Paule, J. (2020): Sorbus dubronensis, eine neue endemische Art aus der Untergattung Aria (Sorbus s. l., Rosaceae) für Süddeutschland, und ihre Abgrenzung zu verwandten Arten, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 90
659) Meyer, N.; Meierott, L. (2021): Ergänzende Beiträge zur Sorbus-Flora von Bayern, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 91
660) Meyerson, L.A.; Cronin, J.T.; Bhattarai, G.P.; Brix, H.; Lambertini, C.; Lučanová, M.; Rinehart, S.; Suda, J.; Pyšek, P. (2016): Do ploidy level and nuclear genome size and latitude of origin modify the expression of Phragmites australis traits and interactions with herbivores?, Biological invasions, 18, p. 2531-2549. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s10530-016-1200-8.
661) Michler, B. (1989): Pflanzensoziologische, bodenkundliche und cytogenetische Untersuchungen zur wechselnden Proazulenführung innerhalb des Achillea millefolium Formenkreises. Diplomarbeit, Naturwissenschaftliche Fakultät II der Universität Erlangen-Nürnberg, Erlangen, p. [1-6], 1-99, Beilagen 1-19.
662) Michler, B.; Arnold, C.-G. (1999): Predicting presence of proazulenes in the Achillea millefolium group, Folia Geobotanica. A Journal of Plant Ecology and Systematics, 34, p. 143-161. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF02803081.
663) Mitra, K. (1964): Chromosome numbers in some plants, Science and culture, 30, p. 344-345.
664) Mlinarec, J.; Šatović, Z.; Mihelj, D.; Malenica, N.; Besendorfer, V. (2012): Cytogenetic and phylogenetic studies of diploid and polyploid members of Tribe Anemoninae (Ranunculaceae), Plant Biology, 14, p. 525-536. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.2011.00519.x.
665) Mlinarec, J.; Franjević, D.; Harapin, J.; Besendorfer, V. (2016): The impact of the Tekay chromoviral elements on genome organisation and evolution of Anemone s.l. (Ranunculaceae), Plant Biology, 18, p. 332-347. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/plb.12393.
666) Mohr, D.R.; Dillenberger, M.S.; Kadereit, J.W. (2020): Die Verwandtschaft von Onosma arenaria vom Mainzer Sand, Kochia, 15, p. 11-18.
667) Moldenhauer, A. (1957): Ein Beitrag zur Cytologie der Gattung Globularia. Hausarbeit für das Staatsexamen für das Lehrfach an der Oberstufe der deutschen demokratischen Schule, Jena, p. [1-3], 1-17 & Karte.
668) Morisset, P. (1978): Chromosome numbers in Ononis L. series Vulgares Širj., Watsonia. Journal of the Botanical Society of the British Isles, 12, p. 145-153.
669) Morton, J.K.; Venn, J.; Semple, J.C. (2018): Chromosome Number Determinations in Solidago (Asteraceae: Astereae), Rhodora; journal of the New England Botanical Club, 119, p. 341-348. DOI: http://dx.doi.org/10.3119/17-03.
670) Motzkus, B. (1974): Beitrage zur Kenntnis einiger Chromosomenzahlen der Gattung Coronilla L., Feddes Repertorium. Zeitschrift für Botanische Taxonomie und Geobotanik, 84, p. 741-746. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/fedr.19730840907.
671) Moulalis, D.; Illies, Z.M. (1975): Vergleichende zytologische Untersuchungen der Chromosomenstruktur von Abies borisii regis Mattf., A. cephalonica Loud. und A. alba Mill., Silvae genetica; Zeitschrift für Forstgenetik und Forstpflanzenzüchtung, 24, p. 115-118.
672) Mráz, P.; Šingliarová, B.; Urfus, T.; Krahulec, F. (2008): Cytogeography of Pilosella officinarum (Compositae): Altitudinal and Longitudinal Differences in Ploidy Level Distribution in the Czech Republic and Slovakia and the General Pattern in Europe, Annals of Botany, 101, p. 59-71. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcm282.
673) Mráz, P.; Garcia-Jacas, N.; Gex-Fabry, E.; Suanna, A.; Barres, L.; Müller-Schärer, H. (2012): Allopolyploid origin of highly invasive Centaurea stoebe s.l. (Asteraceae), Naturalia Monspeliensia. Série botanique, 62, p. 612-623. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.ympev.2011.11.006.
674) Mráz, P.; Tarbush, E.; Müller-Schärer, H. (2014): Drought tolerance and plasticity in the invasive knapweed Centaurea stoebe s.l. (Asteraceae): effect of populations stronger than those of cytotype and range, Annals of Botany, 114, p. 289-299. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcu105.
675) Mráz, P.; Zdvořak, P.; Hartmann, M.; Štefánek, M.; Chrtek, J. (2019): Can obligate apomixis and more stable reproductive assurance explain the distributional successes of asexual triploids in Hieracium alpinum (Asteraceae)?, Plant Biology, 21, p. 227-236.Fig. S1. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/plb.12930 .
676) Mráz, P.; Zdvořák, P. (2019): Reproductive pathways in Hieracium s.s. (Asteraceae): strict sexuality in diploids and apomixis in polyploids, Annals of Botany, 123, p. 391–403.Supplementary data. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcy137.
677) Mrkvicka, A.C. (1992): Liste der Chromosomenzahlen europäischer Orchideen, Mitteilungsblatt, Arbeitskreises Heimische Orchideen Baden-Württemberg; Beiträge zur Erhaltung und Erforschung der Heimischen Orchideen, 24, p. 125-140.
678) Müller, H.A.C. (1912): Kernstudien an Pflanzen. I. u. II., Archiv für Zellforschung, 8, p. 1-50, taf. I-II.
679) Müller, W. (1962): Zur Zytologie der Gattung Globularia. Diplomarbeit, Institut für Spezielle Botanik der Friedrich-Schiller-Universität Jena, Jena, p. [1-3], 1-44 & [1].
680) Müller, F.; Uhlemann, I. (1982): Contribution à la cytotaxonomie de la section Cyclostigma Griseb. du genre Gentiana L., Feddes Repertorium. Zeitschrift für Botanische Taxonomie und Geobotanik, 93, p. 625-722. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/fedr.19820930902.
681) Münzbergová, Z.; Šurinová, M.; Castro, S. (2013): Absence of gene flow between diploids and hexaploids of Aster amellus at multiple spatial scales, Heredity; an international journal of genetics, 110, p. 123-130. Supplementary information. DOI: http://dx.doi.org/10.1038/hdy.2012.87.
682) Nagai, K.; Sasaoka, T. (1930): The number of chromosomes in the cultivated Brassica [main title in Japanese], Japanese journal of genetics, 5, p. 151-158, pl. V.
683) Nathewet, P.; Yanagi, T.; Hummer, K.E.; lwatsubo, Y. & Sone, K. (2009): Karyotype Analysis in Wild Diploid, Tetraploid and Hexaploid Strawberries, Fragaria (Rosaceae), Cytologia; international journal of cytology, 74, p. 355-364. DOI: http://dx.doi.org/10.1508/cytologia.74.355.
684) Natho, G. (1959): Variationsbreite und Bastardbildung bei mitteleuropäischen Birkensippen, Feddes Repertorium specierum novarum regni vegetabilis; Zeitschrift für systematische Botanik, 61, p. 211-273. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/fedr.19590610304.
685) Nauenburg, J.D. (1986): Untersuchungen zur Variabilität, Ökologie und Systematik der Viola tricolor-Gruppe in Mitteleuropa. Dissertation zur Erlangung des Doktorgrades, Mathematisch-naturwissenschaftliche Fachbereiche der Georg August-Universität zu Göttingen, Göttingen, p. [1-4], 1-124 & [1].
686) Nauenburg, J.D. (1988): Zur Karyologie und Taxonomie der heimischen Schwermetallsippen der Gattung Viola, Sekt. Melanium, Decheniana. Verhandlungen des Naturhistorischen Vereins der Rheinlande und Westfalens, 141, p. 96-102.
687) Nebelung, H. (2014): Einfluss der Straßenbegleitbegrünung aus gebietsfremden Saatgut auf heimische Pflanzenpopulationen am Beispiel von Leucanthemum vulgare Lam.. Master Thesis, Justus-Liebig-Universität , Gießen, p. 1-57. 6 Anlagen auf CD
688) Neitzel, J. (1978): Cytotaxonomische Untersuchungen an Puccinellia maritima (Huds.) Parl. in Schleswig-Holstein. Dissertation zur Erlangung des Doktorgrades, Fachbereich Mathematik-Naturwissenschaften der Christian-Albrechts-Universität zu Kiel, Kiel, p. 1-106, [1-2].
689) Netroufal, F. (1927): Zytologische Studien über die Kulturrassen von Brassica oleracea, Oesterreichische Botanische Zeitschrift. Gemeinnütziges Organ für Botanik, 76, p. 101-115, tab. I-II. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01246243.
690) Neuffer, B.; Auge, H.; Mesch, H.; Amarell, U.; Brandl, R. (1999): Spread of violets in polluted pine forests: morphological and molecular evidence for the ecological importance of interspecific hybridization, Molecular Ecology, 8, p. 365-377. DOI: http://dx.doi.org/10.1046/j.1365-294X.1998.00566.x.
691) Neuroth, R. (1980): Cytotaxonomische Studien an europäischen Sippen des Polypodium vulgare Komplexes in Europa. Diplomarbeit, Fachbereich Biologie Universität Kaiserslautern & Fachber. Biologie Philipps-Universität Marburg, Kaiserslautern & Marburg, p. [1-3], 1-89, [1-2].
692) Nielsen, I. (1975): Chromosome Counts in the Genus Trifolium, Botanisk Tidsskrift, 70, p. 180-183.
693) Nierbauer, K.U.; Paule, J.; Zizka, G. (2016): Invasive tall annual willowherb (Epilobium brachycarpum C. Presl) in Central Europe originates from high mountain areas of western North America, Biological invasions, 18, p. 3265-3275 . DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s10530-016-1216-0.
694) Nierbauer, K.U.; Paule, J.; Zizka, G. (2017): Heteroploid reticulate evolution and taxonomic status of an endemic species with bicentric geographical distribution, AoB Plants, 9, p. plx002.Supplementary Data. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aobpla/plx002.
695) Nilsson, Ö. (1966): Studies in Montia L. and Claytonia L. and allied genera II. Some Chromosome Numbers, Botaniska Notiser, 119, p. 464-468.
696) Noack, K.L. (1939): Über Hypericum-Kreuzungen VI. Fortpflanzungsverhältnisse und Bastarde von Hypericum perforatum L., Zeitschrift für induktive Abstammungs- und Vererbungslehre, 76, p. 569-601. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01740899.
697) Nordborg, G. (1963): Studies in Sanguisorba officinalis L., Botaniska Notiser, 116, p. 276-288.
698) Nordenskiöld, H. (1945): Cyto-genetic Studies in the Genus Phleum, Acta agriculturae Suecana, 1, p. 1-137.
699) Nordenskiöld, H. (1951): Cyto-taxonomical studies in the genus Luzula. I. Somatic chromosomes and chromosome numbers, Hereditas. Genetisk Arkiv, 37, p. 325-355. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1601-5223.1951.tb02898.x.
700) Nygren, A. (1962): On Poa badensis, Poa concinna, Poa pumila, Poa xerophila and the possible origin of Poa alpina, Kungl. Vetenskapssamhällets i Uppsala Årsbok = Annales Academiae Regiae Scientiarum Upsaliensis, 6, p. 5-32.
701) Oberprieler, C. (2011): AFLP fingerprinting suggests an allopolyploid origin of two members of the Leucanthemum vulgare aggregate (Compositae, Anthemideae) in central Europe, Nordic Journal of Botany, 29, p. 370-377. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1756-1051.2011.01025.x.
702) Oberprieler, C.; Greiner, R.; Konowalik, K.; Vogt, R. (2014): The reticulate evolutionary history of the polyploid NW Iberian Leucanthemum pluriflorum clan (Compositae, Anthemideae) as inferred from nrDNA ETS sequence diversity and eco-climatological niche-modelling, Molecular Phylogenetics and Evolution, 70, p. 1478-1491. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.ympev.2013.10.013.
703) Ochsmann, J. (1997): Ein Bestand von Centaurea x psammogena Gáyer (Centaurea diffusa Lam. x Centaurea stoebe L.) am NSG Sonnenstein (Thüringen), Floristische Rundbriefe, 31, p. 118-125.
704) Ochsmann, J. (1999): Chromosomenzahlen einiger europäischer Centaurea-Sippen, Haussknechtia. Mitteilungen der Thüringischen Botanischen Gesellschaft, 7, p. 59-65.
705) Ochsmann, J. (2000): Morphologische und molekularsystematische Untersuchungen an der Centaurea stoebe L.-Gruppe (Asteraceae-Cardueae) in Europa, Dissertationes Botanicae, 324, p. i-ix, 1-242.
706) Ockendon, D.J. (1968): Biosystematic Studies in the Linum perenne Group, The New Phytologist; a British botanical journal, 67, p. 787-813. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1469-8137.1968.tb06396.x.
707) Ohle, H.: Unpublished chromosome count
708) Ohri, D.; Ahuja, M.R. (1990): Giemsa C-Banded Karyotype in Quercus L. (Oak), Silvae genetica; Zeitschrift für Forstgenetik und Forstpflanzenzüchtung, 39, p. 216-219.
709) Oja, T.; Laarmann, H. (2002): Comparative study of the ploidy series Bromus sterilis, B. diandrus and B. rigidus (Poaceae) based on chromosome number, morphology and isozymes, Plant Biology, 4, p. 484-491. DOI: http://dx.doi.org/10.1055/s-2002-34133.
710) Olšavska, K.; Perný, M.; Löser, C.J.; Stimper, R.; Hodálová, I. (2013): Cytogeography of European perennial species of Cyanus (Asteraceae), Botanical Journal of the Linnean Society, 173, p. 230-257. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/boj.12083.
711) Orsenigo, S.; Gentili, R.; Smolders, A.J.P.; Efremov, A.; Rossi, G.; Ardenghi, N.M.G.; Citterio, S.; Abeli, T. (2017): Reintroduction of a dioecious aquatic macrophyte (Stratiotes aloides L.) regionally extinct in the wild. Interesting answers from genetics, Aquatic conservation; marine and freshwater ecosystems, 27, p. 10-23. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/aqc.2626.
712) Ownbey, M.; McCollum, G.D. (1954): The chromosomes of Tragopogon, Rhodora; journal of the New England Botanical Club, 56, p. 7-21.
713) Paule, J.; Sharbel, T.; Dobeš, C. (2011): Apomictic and sexual lineages of the Potentilla argentea L. group (Rosaceae): Cytotype and molecular genetic differentiation, Taxon, 60, p. 721-732.Supplementary data. DOI: https://dx.doi.org/10.1002/tax.603008.
714) Paule, J.; Kolář, F.; Dobeš, C. (2015): Arctic-alpine and serpentine differentiation in polyploid Potentilla crantzii, Preslia, 87, p. 195-215.Electronic appendix.
715) Paule, J.; Dunkel, F.G.; Schmidt, M.; Gregor, T. (2018): Climatic differentiation in polyploid apomictic Ranunculus auricomus complex in Europe, BMC Ecology, 18, p. 18:16.Additional files 1-5. DOI: http://dx.doi.org/10.1186/s12898-018-0172-1.
716) Pecinka, A.; Suchánková, P.; Lysak, M.A.; Trávníček, B.; Doležel, J. (2006): Nuclear DNA Content Variation among Central European Koeleria Taxa, Annals of Botany, 98, p. 117-122.Supplementary Data. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcl077.
717) Pelka, V. (1991): Biosystematische Untersuchungen an Senecio vulgaris L. und Senecio squalidus L.. Diplomarbeit, Ruhr-Universität Bochum, Bochum, p. 1-162.
718) Perdereau, A.; Klaas, M.; Barth, S.; Hodkinson, T.R. (2017): Plastid genome sequencing reveals biogeographical structure and extensive population genetic variation in wild populations of Phalaris arundinacea L. in northwestern Europe, Global Change Biology Bioenergy, 9, p. 46-56. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/gcbb.12362.
719) Persson, K. (1974): Biosystematic studies in the Artemisia maritima complex in Europe, Opera botanica a Societate Botanice Lundensi, 35, p. 1-188.
720) Peterson, D. (1936): Stellaria-Studien. Zur Zytologie, Genetik, Ökologie und Systematik der Gattung Stellatia, insbesondere der media-Gruppe, Botaniska Notiser, 1936, p. 281-419.
721) Pfeiffer, H.H. (1942): Polarisationsmikroskopische Befunde an den Pollentetraden einiger Cyperaceen-Arten, Veröffentlichungen aus dem Deutschen Kolonial- und Überseemuseum in Bremen, 3, p. 238-243.
722) Pils, G. (1980): Systematik, Verbreitung und Karyologie der Festuca violacea-Gruppe (Poaceae) im 0stalpenraum, Plant Systematics and Evolution, 136, p. 73-124. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF00985314.
723) Platzer, H. (1962): Untersuchungen über die phänotypische und karyotypische Variabilität der europäischen Unkrauthirsen aus den Gattungen Setaria, Digitaria und Echinochloa, Zeitschrift für Pflanzenzüchtung, 47, p. 330-368.
724) Podlech, D. (1962): Beitrag zur Kenntnis der Subsektion Heterophylla (Witas.) Fed. der Gattung Campanula L., Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 75, p. 237-244. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1962.tb02534.x.
725) Polatschek, A. (1966): Cytotaxonomische Beiträge zur Flora der Ostalpenländer, II, Oesterreichische Botanische Zeitschrift. Gemeinnütziges Organ für Botanik, 113, p. 101-147. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01373250.
726) Polatschek, A. (2013): Revision der Gattung Erysimum (Cruciferae): Teil 5. Nord-, West-, Zentraleuropa, Rumänien und westliche Balkan-Halbinsel bis Albanien, Annalen des Naturhistorischen Museums in Wien. Serie B, Botanik und Zoologie, 115, p. 75-218.
727) Poppendieck, H.-H.; Kasprik, W. (1993): Arum alpinum Schott & Kotschy auch in Schleswig-Holstein gefunden, Kieler Notizen zur Pflanzenkunde in Schleswig-Holstein und Hamburg, 22, p. 8-17.
728) Prager, L.; Schuwerk, H.; Schuwerk, L. (1984): Zur Verbreitung der Leucanthemum-Arten im Altmühljura und den benachbarten Gebieten, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 56, p. 231-233.
729) Prančl, J.; Kaplan, Z.; Trávníček, P.; Jarolímová, V. (2014): Genome Size as a Key to Evolutionary Complex Aquatic Plants: Polyploidy and Hybridization in Callitriche (Plantaginaceae), PLOS ONE, 9, p. e105997.Supporting Information. DOI: http://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0105997.
730) Prančl, J.; Koutecký, P.; Trávníček, P.; Jarolímová, V.; Lučanová, M.; Koutecká, M.; Kaplan, Z. (2018): Cytotype variation, cryptic diversity and hybridization in Ranunculus sect. Batrachium revealed by flow cytometry and chromosome numbers, Preslia, 90, p. 195–223. DOI: http://dx.doi.org/10.23855/preslia.2018.195.
731) Prančl, J.; Fehrer, J.; Caklová, P.; Bambasová, V.; Lučanová, M.; Kaplan, Z. (2020): Intricate evolutionary history of Callitriche (Plantaginaceae) taxa elucidated by a combination of DNA sequencing and genome size, Taxon, 69, p. 1016-1041.Supplementary data. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/tax.12315.
732) Preitschopf, A. (1989): Achillea millefolium: Vorkommen - Ploidiestufe - Proazulenführung. Diplomarbeit, Naturwissenschaftliche Fakultät II der Universität Erlangen-Nürnberg, Erlangen, p. [1-4], 1-115 & [1-2].
733) Prescher, G. (1985): Cytotaxonomische Untersuchungen an der Gattung Luzula. Diplomarbeit, Fachbereich Biologie - Botanik - Philipps-Universität Marburg/Lahn, Marburg/Lahn, p. [1-3], 1-54, [1-2].
734) Proctor, M.C.F. (1955): Some chromosome counts in the european Cistaceae, Watsonia. Journal of the Botanical Society of the British Isles, 3, p. 154-159.
735) Ptáček, J. (2018): Mikroevoluční procesy u Cystopteris fragilis agg. Microevolutionary processes in Cystopteris fragilis agg.. Diplomová práce, Univerzita Karlova, Praha, p. 1-90.
736) Puente Molins, M.; Corral, J.M.; Aliyu, O.M.; Koch, M.A.; Betzin, A.; Maron, J.L.; Sharbel, T.F. (2014): Biogeographic variation in genetic variability, apomixis expression and ploidy of St. John's wort (Hypericum perforatum) across its native and introduced range, Annals of Botany, 113, p. 417-427.Supplementary Data. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mct268.
737) Puff, C. (1974): Biosystematik der Formenkreise um Galium palustre und G. trifidum (Rubiaceae) auf der Nord- und Südhemisphäre. Dissertation, Philosophische Fakultät Universität Wien, Wien, p. 1-398.
738) Rahn, K. (1954): Experimental and Cytological Studies in Plantago media, Botanisk Tidsskrift, 51, p. 300-307.
739) Rahn, K. (1956): Chromosome numbers in Plantago, Botanisk Tidsskrift, 53, p. 369-378.
740) Rasbach, H. (1998): Athyrium x reichsteinii, die Hybride zwischen Wald-Frauenfarn und Alpen-Frauenfarn im Allgäu - eine cytologische Bestätigung, Mitteilungen des Naturwissenschaftlichen Arbeitskreises der Volkshochschule Kempten (Allgäu), 35, p. 23-26.
741) Rasbach, H.; Rasbach, K.; Reichstein, T.; Schneller, J.J.; Vida, G. (1979): Asplenium x lessinense Vida et Reichst. in den Bayerischen Alpen und seine Fähigkeit zur spontanen Chromosomenverdoppelung, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 50, p. 23-27.
742) Rasbach, H.; Rasbach, K.; Reichstein, T.; Schneller, J.J.; Vida, G. (1979): Asplenium x lessinense Vida et Reichst. in den Bayerischen Alpen und seine Fähigkeit zur spontanen Chromosomenverdoppelung, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 50, p. 23-27.
743) Rasbach, H.; Rasbach, K.; Reichstein, T.; Schneller, J. (1983): Tetraploide Dryopteris x tavelii Rothm. im nördlichen Schwarzwald, Farnblätter; Organ der Schweizerischen Vereinigung der Farnfreunde, 10, p. 1-13.
744) Rasbach, H.; Reichstein, T.; Schneller, J.J. (1991): Hybrids and polyploidy in the genus Athyrium (Pteridophyta) in Europe. 2. Origin and description of two triploid hybrids and synthesis of allotetraploids, Botanica Helvetica, 101, p. 209-225. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-70314.
745) Rasbach, H.: Unpublished chromosome count
746) Rätzel, S. (1999): Notizen über Pseudofumaria alba (Miller) LidÉn subsp. alba und Pulmonaria rubra Schott et Kotschy bei Frankfurt a. d. Oder, Verhandlungen des Botanischen Vereins der Provinz Brandenburg, 132, p. 153-165.
747) Rätzel, S.; Kummer, V.; Ristow, M. (2021): Neuigkeiten zu Farn- und Samenpflanzen von Berlin und Brandenburg II, Verhandlungen des Botanischen Vereins der Provinz Brandenburg, 152, p. 151-227.
748) Reese, G. (1951): Ergänzende Mitteilungen über die Chromosomenzahlen mitteleuropäischer Gefäßpflanzen. I., Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 64, p. 240-255. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1951.tb02132.x.
749) Reese, G. (1953): Ergänzende Mitteilungen über die Chromosomenzahlen mitteleuropäischer Gefässpflanzen. II, Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 66, p. 66-74. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1953.tb00094.x.
750) Reese, G. (1954): Euploidie, Aneuploidie und B-Chromosomen bei Caltha palustris L., Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 44, p. 203-268. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01929518.
751) Reese, G. (1962): Zur intragenerischen Taxonomie der Gattung Ruppia L. Ein cytosystematischer Beitrag, Zeitschrift für Botanik, 50, p. 237-264.
752) Reese, G. (1963): Über die deutschen Ruppia- und Zannichellia-Kategorien und ihre Verbreitung in Schleswig-Holstein, Schriften des Naturwissenschaftlichen Vereins für Schleswig-Holstein, 34, p. 44-70.
753) Reese, G. (1967): Cytologische und taxonomische Untersuchungen an Zannichellia palustris L., Biologisches Centralblatt, 86 Supplement, p. 277-306.
754) Reese, G. (1969): Cytotaxonomische Untersuchungen an di- und tetraploiden Sippen von Eryngium campestre L. und einem Artbastard mit 2n=15, Oesterreichische Botanische Zeitschrift. Gemeinnütziges Organ für Botanik, 117, p. 223-247. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01409276.
755) Regele, D.; Grünebach, M.; Erschbamer, B.; Schönswetter, P. (2017): Do ploidy level, morphology, habitat and genetic relationships in Alpine Vaccinium uliginosum allow for the discrimination of two entities?, Preslia, 89, p. 291-308. DOI: https://dx.doi.org/10.23855/preslia.2017.291.
756) Reichert, H.; Gregor, T.; Meierott, L. (2017): Euphorbia saratoi (= E. podperae, E. pseudovirgata auct., E. virgata var. orientalis, E. virgultosa), Euphorbiaceae, ein erfolgreicher Neophyt, Kochia, 11, p. 1-36.
757) Reichstein, T. (1981): Hybrids in European Aspleniaceae (Pteridophyta) : significance, recognition, genome analysis, and fertility; checklist of species and hybrids; description of some new hybrids and cytology of several already known hybrids, Botanica Helvetica, 91, p. 89-139. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-64305.
758) Reinhardt, J. (1988): Zur Zytotaxonomie einiger Dactylorhiza fuchsii-(DRUCE) SOO-Sippen im Eichsfeld, Mitteilungen des Arbeitskreises ,,Heimische Orchideen" [in: Kulturbund der DDR. Zentralvorstand der Gesellschaft für Natur und Umwelt. Zentraler Fachausschuß Botanik], 17, p. 14-18.
759) Rejlová, L.; Chrtek, J.; Trávníček, P.; Lučanová, M.; Vít, P.; Urfus, T. (2019): Polyploid evolution: The ultimate way to grasp the nettle, PLOS ONE, 14, p. 1-24.S1-S7. DOI: http://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0218389.
760) Renner, O. (1942): Europäische Wildarten von Oenothera, Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 60, p. 448-466.
761) Renner, O. (1956): Europäische Wildarten von Oenothera. III, Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 47, p. 219-254. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01915153.
762) Rességuier, P. (2016): Festuca heteropachys, Schlaffer Schwingel, im Spessart, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 86, p. 231-235.
763) Rewicz, A.; Tomczyk, P.P.; Kiedrzyński, M.; Zielińska, K.M.; Jędrzejczyk, I.; Rewers, M.; Kiedrzyńska, E.; Rewicz, T. (2018): Morphometric traits in the fine-leaved fescues depend on ploidy level: the case of Festuca amethystina L., PeerJ, 6, p. 1-22. DOI: http://dx.doi.org/10.7717/peerj.5576.
764) Risse, K. (1929): Beiträge zur Zytologie der Dipsacaceen, Botanisches Archiv; Zeitschrift für d. gesamte Botanik u. ihre Grenzgebiete, 23, p. 266-288.
765) Ritz, C.M.; Köhnen, I.; Groth, M.; Theißen, G.; Wissemann, V. (2011): To be or not to be the odd one out - Allelespecific transcription in pentaploid dogroses (Rosa L. sect. Caninae (DC.) Ser), BMC Plant Biology, 11, p. 1-14. DOI: http://dx.doi.org/10.1186/1471-2229-11-37.
766) Ritz, C.M.; Wissemann, V. (2011): Microsatellite Analyses of Artificial and Spontaneous Dogrose Hybrids Reveal the Hybridogenic Origin of Rosa micrantha by the Contribution of Unreduced Gametes, The Journal of Heredity, 102, p. 217-227.Supplementary data. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/jhered/esq124.
767) Robertson, I.H. (1981): Chromosome numbers in Brachypodium Beauv. (Gramineae), Genetica; Nederlandsch tijdschrift voor erfelijkheids- en afstammingsleer, 56, p. 55-60. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF00126930.
768) Robson, N.K.B.; Preston, A. (1968): Chromosome numbers in Hypericum and related genera, Brittonia; a series of botanical papers, 20, p. 96-106. DOI: http://dx.doi.org/10.2307/2805614.
769) Rohweder, H. (1929): Über Kernuntersuchungen an Dianthus-Arten. (Vorläufige Mitteilung.), Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 47, p. 81-86. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1929.tb01582.x.
770) Rohweder, H. (1937): Beziehungen zwischen Chromosomengröße und Vitalität innerhalb der Gattung Dianthus, Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 27, p. 478-499.
771) Rohweder, H. (1939): Weitere Beiträge zur Systematik und Phylogenie der Caryophyllaceen unter besonderer Berücksichtigung der karyologischen Verhältnisse., Beihefte zum Botanischen Centralblatt, Abteilung B. Systematik, Pflanzengeographie, angewandte Botanik etc., 59, p. 1-58.
772) Rojas-Andrés, B.M.; Albach, D.C.; Martínez-Ortega, M.M. (2015): Exploring the intricate evolutionary history of the diploid–polyploid complex Veronica subsection Pentasepalae (Plantaginaceae), Botanical Journal of the Linnean Society, 179, p. 670-692.Supplementary data. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/boj.12345.
773) Romerio, M. (1965): Contribution à la cytotaxinomie du groupe de l'Asperula cynanchica L., Bulletin de la Société Neuchâteloise des Sciences Naturelles, 88, p. 65-76. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-88950.
774) Rooks, F.; Jarolímová, V.; Záveská Drábková, L.; Kirschner, J. (2011): The elusive Juncus minutulus: a failure to separate tetra- and hexaploid individuals of the Juncus bufonius complex in a morphometric comparison of cytometrically defined groups, Preslia, 83, p. 565–589.
775) Rosche, C.; Durka, W.; Hensen, I.; Mráz, P.; Hartmann, M.; Müller-Schärer, H.; Lachmuth, S. (2016): The population genetics of the fundamental cytotype-shift in invasive Centaurea stoebe s.l.: genetic diversity, genetic differentiation and small-scale genetic structure differ between cytotypes but not between ranges, Biological invasions, 18, p. 1895-1910. DOI: http://dx.doi.org/ 10.1007/s10530-016-1133-2.
776) Rosche, C.; Hensen, I.; Mráz, P.; Durka, W.; Hartmann, M.; Lachmuth, S. (2017): Invasion success in polyploids: the role of inbreeding in the contrasting colonization abilities of diploid versus tetraploid populations of Centaurea stoebe s.l., Journal of Ecology, 105, p. 425-435. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/1365-2745.12670.
777) Rosenbaumová, R.; Plačková, I.; Suda, J. (2004): Variation in Lamium subg. Galeobdolon (Lamiaceae) – insights from ploidy levels, morphology and isozymes, Plant Systematics and Evolution, 244, p. 219-244. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s00606-003-0071-5.
778) Rosenthal, C. (1936): Chromosomenstudien an Pulsatilla, Jahrbücher für Wissenschaftliche Botanik, 83, p. 809-844.
779) Rotreklová, O. (2004): Hieracium bauhini group in Central Europe: chromosome numbers and breeding systems, Preslia, 76, p. 313-330.
780) Rotreklová, O.; Krahulcová, A.; Vaňková, D.; Peckert, T.; Mráz, P. (2002): Chromosome numbers and breeding systems in some species of Hieracium subgen. Pilosella from Central Europe, Preslia, 74, p. 27-44.
781) Rotreklová, O.; Krahulcová, A.; Mráz, P.; Mrázová, V.; Mártonfiová, L.; Peckert, T.; Šingliarová, B. (2005): Chromosome numbers and breeding systems of some European species of Hieracium subgen. Pilosella, Preslia, 77, p. 177-195.
782) Rotreklová, O.; Krahulcová, A. (2016): Estimating paternal efficiency in an agamic polyploid complex: pollen stainability and variation in pollen size related to reproduction mode, ploidy level and hybridogenous origin in Pilosella (Asteraceae), Folia Geobotanica. A Journal of Plant Ecology and Systematics, 51, p. 175-186. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s12224-016-9240-5.
783) Rottgardt, K. (1956): Morphologische, cytologische und physiologische Untersuchungen von Ökotypen in Schleswig-Holstein, Beiträge zur Biologie der Pflanzen, 32, p. 225-278.
784) Rousi, A. (1961): Cytotaxonomical studies on Vicia cracca L. and V. tenuifolia Roth I. Chromosome numbers and karyotype evolution, Hereditas. Genetisk Arkiv, 47, p. 81-110. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1601-5223.1961.tb01861.x.
785) Rube, G. (1972): Dactylorhiza sphagnicola (Höppner) Soó in der Lüneburger Heide, Jahresbericht des Naturwissenschaftlichen Vereins in Wuppertal, 25, p. 138-139.
786) Rube, G.; Heise, K. (1975): Neufund von Dryopteris borreri NEWM. (Dreiwertiger Spreuschuppenfarn) in Nordosthessen, Beiträge zur Naturkunde in Osthessen, 9/10, p. 169-173.
787) Rudloff, K.F. (1928): Zur Kenntnis der Oenothera purpurata Klebahn und Oenothera rubricaulis Klebahn, Zeitschrift für induktive Abstammungs- und Vererbungslehre, 51, p. 191-235. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01847270.
788) Rutishauser, A. (1954): Die Entwicklungserregung des Endosperms bei pseudogamen Ranunculusarten, Mitteilungen der Naturforschenden Gesellschaft Schaffhausen, 25, p. 1-45.
789) Ruttle, M.L. (1930): Cytological and embryological studies on the genus Mentha, Gartenbauwissenschaft, 4, p. 428-468.
790) Sadanaga, K. (1962): Cytology of three species of Helictotrichon, Canadian journal of genetics and cytology, 46, p. 302-306.
791) Sahlin, C.I. (1983): Zwei neue Taraxacum-Arten aus den bayerischen Alpen, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 54, p. 19-21.
792) Sahlin, C.I. (1984): Zur Taraxacum-Flora Bayerns, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 55, p. 49-57.
793) Sahlin, C.I.; Lippert, W. (1983): Die Taraxacum-Arten der bayerischen Alpen, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 54, p. 23-45.
794) Sander, H., Alkemeyer, M.; Hansel, R. (1962): Über Solanum dulcamara L., Archiv der Pharmazie, 295, p. 6-12. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/ardp.19622950102.
795) Sarazin, A., Keil, P., Gausmann, P. Fuchs, R. (2013): Bemerkenswerte neophytische Sippen in der Pteridophyten-Flora Nord-West-Deutschlands, Berichte des Instituts für Landschafts- und Pflanzenökologie der Universität Hohenheim, Beiheft, 22, p. 43-62.
796) Sauer, W. (1975): Karyo-systematische Untersuchungen an der Gattung Pulmonaria (Boraginaceae) Chromosomen-Zahlen, Karyotyp-Analysen und allgemeine Hinweise auf die Entwicklungsgeschichte, Bibliotheca Genetica, 131, p. [1-2], 1-85.
797) Sauer, W.; Chmelitschek, H. (1976): Beiträge zur Kenntnis ausdauernder Wildhafer: Die Gattung Avenula (Dumort.) in den Ostalpen, Mitteilungen der Botanischen Staatssammlung München, 12, p. 513-608.
798) Sauer, W.; Gruber, G. (1979): Beitrag zur Kenntnis der Gattung Pulmonaria in Bayern: Kritische Sippen, Verbreitung und allgemeine Hinweise auf die Arealbildung, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 50, p. 127-160.
799) Sauer, W.; Thiv, M. (1995): Die Gattung Pulmonaria (Boraginaceae) in Baden-Württemberg, Jahreshefte, Gesellschaft für Naturkunde in Württemberg, 151, p. 281-344.
800) Sauer, W.: Unpublished chromosome count
801) Saukel, J.; Länger, R. (1992): Achillea pratensis Saukel & Länger, spec, nova, eine tetraploide Sippe der Achillea millefolium-Gruppe, Phyton. Annales rei Botanicae, 32, p. 159-172.
802) Scharfenberg, K. (1977): Beiträge zur Kenntnis der Sippenstruktur der Gattung Dactylorhiza Necker ex Nevski in den Bezirken Cottbus, Potsdam, Frankfurt (Oder) und Neubrandenburg, Gleditschia. Beiträge zur botanischen Taxonomie und deren Grenzgebiete, 5, p. 65-127.
803) Scheerer, H. (1937): Experimentelle und zytologische Untersuchungen innerhalb der Veronica-Gruppe Pentasepala, Flora, 131, p. 287-323.
804) Scheerer, H. (1939): Chromosomenzahlen aus der schleswig-holsteinischen Flora. I., Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 29, p. 636-642. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01908960.
805) Scheerer, H. (1940): Chromosomenzahlen aus der schleswig-holsteinischen Flora. II., Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 30, p. 716-725. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01917180.
806) Schelhorn, M. von (1940): Zur Cytogenetik von Medicago falcata, L., Züchter; Zeitschrift für theoretische und angewandte Genetik, 17/18, p. 92-93.
807) Scherbantin, A.M.E. (2009): Methodenentwicklung zur durchflusszytometrischen Bestimmung der Chromosomenzahlen in der Gattung Potentilla (Rosaceae). Diplomarbeit, Universität Wien, Wien, p. 1-121.
808) Scheriau, C.L. (2011): Evolutionary history of Hypericum perforatum L.. Dissertation, Faculties for the Natural Sciences and for Mathematics of the Ruperto-Carola University, Heidelberg, p. 1-66. extra material 1-6
809) Schiemann, E. (1951): Offene Fragen in der Gattung Fragaria, Zeitschrift für Pflanzenzüchtung, 29, p. 464-472.
810) Schippmann, U. (1989): 111. Fundmeldung [Cardaminopsis halleri], Botanik und Naturschutz in Hessen, 3, p. 59.
811) Schippmann, U. (1991): Revision der europäischen Arten der Gattung Brachypodium Palisot de Beauvois (Poaceae), Boissiera; mémoires des Conservatoire et de l’Institut de Botanique Systématique de l’Université de Genève, 45, p. 1-249, [1].
812) Schlaepfer, D.R. (2008): Ecological significance of ploidy level of native and invasive populations of Solidago gigantea. Dissertation for the degree of Doctor of Sciences, ETH Zurich, Zurich, p. [1-8], 1-156.
813) Schlaepfer, D.R.; Edwards, P.E.; Semple, J.C.; Billeter, R. (2008): Cytogeography of Solidago gigantea (Asteraceae) and its invasive ploidy, Journal of Biogeography, 35, p. 2119-2127.Supporting Information. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-2699.2008.01937.x.
814) Schlenker, G. (1936): Experimentelle Untersuchungen in der Sektion Beccabunga Griseb. der Gattung Veronica, Flora, 130, p. 305-350, taf. 2.
815) Schmickl, R.; Paule, J.; Klein, J.; Marhold, K.; Koch, M.A. (2012): The Evolutionary History of the Arabidopsis arenosa Complex: Diverse Tetraploids Mask the Western Carpathian Center of Species and Genetic Diversity, PLOS ONE, 7, p. e42691.Supporting Information. DOI: http://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0042691.
816) Schmid, M. (2003): Morphologie, Vergesellschaftung, Ökologie, Verbreitung und Gefährdung der Sumpf-Löwenzähne (Taraxacum sect. Palustria Dahlst., Asteraceae) Süddeutschlands, Bibliotheca Botanica, 155, p. I-IX, 1-268.
817) Schmidt, P.A. (1961): Zytotaxonomische Untersuchungen an europäischen Viola-Arten der Sektion Nomimium, Oesterreichische Botanische Zeitschrift. Gemeinnütziges Organ für Botanik, 108, p. 20-88. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01297773.
818) Schmidt, B. (geb. Motzkus) (1979): Beitrage zur Kenntnis der Sippenstruktur der Gattung Coronilla L., Feddes Repertorium. Zeitschrift für Botanische Taxonomie und Geobotanik, 90, p. 257-361. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/fedr.19790900502.
819) Schneider, U. (1964): Die Sippen der Gattung Odontites in Norddeutschland, Feddes Repertorium specierum novarum regni vegetabilis; Zeitschrift für systematische Botanik, 69, p. 180-185, taf. III-VIII.
820) Schneller, J.J.; Rasbach, H. (1984): Hybrids and Polyploidy in the Genus Athyrium (Pteridophyta) in Europe, Botanica Helvetica, 94, p. 81-99. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-65866.
821) Schöfer, G. (1954): Untersuchungen über die Polymorphie einheimischer Veilchen, Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 43, p. 537-565. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01937990.
822) Scholte, G.A.M. (1978): Biosystematic studies in the collective species Stellaria media (L.) Vill. I, Proceedings, Koninklijke Nederlandse Akademie van Wetenschappen. Series C, biological and medical sciences, 81, p. 442-456.
823) Scholz, H. (1960): Bestimmungsschlüssel für die Sammelart Polygonum aviculare L., Verhandlungen des Botanischen Vereins der Provinz Brandenburg, 98-100, p. 180-182.
824) Scholz, H. (1999): 50 Jahre Chenopodium lobodontum spec. nova in Berlin, Verhandlungen des Botanischen Vereins von Berlin und Brandenburg, 132, p. 5-17.
825) Scholz, H. (2008): Die Gattung Bromus (Poaceae) in Mitteleuropa Synopse und tabellarischer Bestimmungsschlüssel, Kochia, 3, p. 1-18.
826) Scholz, H. (2008): Some comments on the genus Bromus (Poaceae) and three new species, Willdenowia, 38, p. 411-422. DOI: http://dx.doi.org/10.3372/wi.38.38203.
827) Scholz, C.; Uhlemann, I. (2001): Leucanthemum ircutianum DC. in Brandenburg und Sachsen, Berichte der Arbeitsgemeinschaft Sächsischer Botaniker, Neue Folge, 18, p. 79-84.
828) Scholz, C.; Uhlemann, I. (2001): Leucanthemum ircutianum DC. und Leucanthemum vulgare LAM. in Sachsen-Anhalt, Mitteilungen zur floristischen Kartierung in Sachsen-Anhalt, 6, p. 43-48.
829) Schönfelder; P. (1968): Chromosomenzahlen einiger Arten der Gattung Biscutella L., Oesterreichische Botanische Zeitschrift. Gemeinnütziges Organ für Botanik, 115, p. 363-371. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01373314.
830) Schotsman, H. (1961): Races chromosomiques chez Callitriche stagnalis Scop. et Callitriche obtusangula Legall, Berichte der Schweizerischen Botanischen Gesellschaft, 71, p. 5-17. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-50179.
831) Schotsman, H. (1961): Contribution à l'étude des Callitriche du canton de Neuchâtel, Bulletin de la Société Neuchâteloise des Sciences Naturelles, 84, p. 89-101. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-88909.
832) Schröder, C.N.; Hojka, J.; Schmickl, R.E. (2021): Arabidopsis arenosa auf Rügen: Erweiterung des Areals diploider Vorkommen auf die Flora Deutschlands, Kochia, 14, p. 95-116.
833) Schuhwerk, F. (2008): Zur Gliederung der Hieracium bifidum-Gruppe in Bayern und benachbarten Gebieten, Mitteilungen der Arbeitsgemeinschaft Geobotanik in Schleswig-Holstein und Hamburg, 65, p. 375-392.
834) Schuhwerk, F. (2010): Chromosomenzahlen von Hieracium (Compositae, Lactuceae) - Teil 5, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 80, p. 141-160.
835) Schuhwerk, F.; Lippert, W. (1997): Chromosomenzahlen von Hieracium (Compositae, Lactuceae) Teil 1, Sendtnera. Mitteilungen der Botanischen Staatssammlung und des Instituts für Systematische Botanik der Universität München, 4, p. 181-206.
836) Schuhwerk, F.; Lippert, W. (1999): Chromosomenzahlen von Hieracium (Compositae, Lactuceae) Teil 3, Sendtnera. Mitteilungen der Botanischen Staatssammlung und des Instituts für Systematische Botanik der Universität München, 6, p. 197-214.
837) Schuhwerk, F.; Lippert, W. (2002): Chromosomenzahlen von Hieracium (Compositae, Lactuceae) Teil 4, Sendtnera. Mitteilungen der Botanischen Staatssammlung und des Instituts für Systematische Botanik der Universität München, 8, p. 167-194.
838) Schulze, G. (1997): Asplenium onopteris L. - Anmerkungen zu seinem angeblichen Vorkommen in Deutschland, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 68, p. 151-166.
839) Schumacher, A. (1971): Über eine farnreiche Halde im Sauerland (Kreis Olpe), Decheniana. Verhandlungen des Naturhistorischen Vereins der Rheinlande und Westfalens, 123, p. 253-265.
840) Schwarz, O. (1963): Chromosomenzahlen, Lebensformen und Evolution der Gattung Globularia L., Drudea. Mitteilungen des Geobotanischen Arbeitskreises Sachsen-Thüringen, 3, p. 5-16.
841) Schwarz, O.C. (2004): Beiträge zur Biologie, Chorologie, Ökologie und Taxonomie der neophytischen Melde Atriplex micrantha und verwandter Arten. Abhandlung zur Erlangung der Würde eines Doktors der Naturwissenschaften (Dr. rer. nat.), Fakultät Geo- und Biowissenschaften der Universität Stuttgart, Stuttgart, p. I-XVI, 1-322.
842) Schwarz, O.; Bässler, M. (1964): Danthonia (Sieglingia) decumbens, ein bemerkenswerter Fall chromosomaler und ökologischer Divergenz, Oesterreichische Botanische Zeitschrift. Gemeinnütziges Organ für Botanik, 111, p. 193-207. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01373764.
843) Seal, A.G. (1983): DNA variation in Festuca, Heredity; an international journal of genetics, 50, p. 225-236. DOI: http://dx.doi.org/10.1038/hdy.1983.26.
844) Seavey, S.R.; Boufford, D.E. (1983): Observations of chromosomes in Circaea (Onagraceae), American Journal of Botany, 70, p. 1476-1481. DOI: https://dx.doi.org/10.1002/j.1537-2197.1983.tb10851.x.
845) Sebald, O.; Seybold, S.; Philippi, G. (1990): Die Farn- und Blütenpflanzen Baden-Württembergs. Band 1: Allgemeiner Teil. Spezieller Teil (Pteridophyta, Spermatophyta), p. 1-624, Stuttgart (Hohenheim): Ulmer
846) Seeger, O. (1997): Cytologische und morphologische Untersuchungen an zahlreichen Populationen von Ranunculus auricomus agg. aus Mittel- und Nordhessen. Diplomarbeit, Philipps-Universität Marburg, Marburg, p. [1], 1-139, Anhang, Diskette.
847) Seitz, W. (1969): Die Taxonomie der Aconitum napellus-Gruppe in Europa, Feddes Repertorium. Zeitschrift für Botanische Taxonomie und Geobotanik, 80, p. 1-76. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/fedr.19690800102.
848) Seitz, W. (1972): Beitrag zur Zytotaxonomie von Ranunculus plantanifolius L. und R. aconitifolius L., Beiträge zur Biologie der Pflanzen, 48, p. 255-264.
849) Seitz, S. (1988): Morphologische und cytosystematische Untersuchungen in der Vicia tenuifolia-Gruppe. Diplomarbeit, Fachbereich Biologie der Philipps-Universität Marburg, Marburg, p. [1-3], 1-75, [1-2].
850) Sheffield, F.M.L. (1927): Cytological Studies of certain Meiotic Stages in Oenothera, Annals of Botany, 41, p. 779-816, pl. 34-36. DOI: https://dx.doi.org/10.1093/oxfordjournals.aob.a090102.
851) Shimotomai, N. (1938): Chromosomenzahlen bei einigen Arten von Chrysanthemum, Zeitschrift für induktive Abstammungs- und Vererbungslehre, 74, p. 30-33. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01907997.
852) Shivas, M.G. (1961): Contributions to the cytology and taxonomy of species of Polypodium in Europe and America. II. Taxonomy, Journal of the Linnean Society. Botany, 58, p. 27-38, pl. I. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1095-8339.1961.tb01078.x.
853) Simola, L.K. (1964): On the cytology of Lathyrus pratensis, Annales Academiae Scientiarum Fennicae. Ser. A, IV, biologica, 78, p. 1-19.
854) Šlenker, M.; Zozomová-Lihová, J.; Mandáková, T.; Kudoh, H.; Zhao, Y.; Soejima, A.; Yahara, T.; Skokanová, K.; Španiel, S.; Marhold, K. (2018): Morphology and genome size of the widespread weed Cardamine occulta: how it differs from cleistogamic C. kokaiensis and other closely related taxa in Europe and Asia, Botanical Journal of the Linnean Society, 187, p. 456–482. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/botlinnean/boy030.
855) Slovák, M.; Šingliarová, B., Mráz, P. (2007): Chromosome numbers and mode of reproduction in Picris hieracioides s.l. (Asteraceae), with notes on some other Picris taxa, Nordic Journal of Botany, 25, p. 238-244. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.0107-055X.2007.00112.x.
856) Slovák, M.; Vít, P.; Urfus, T.; Suda. J. (2009): Complex pattern of genome size variation in a polymorphic member of the Asteraceae, Nordic Journal of Botany, 36, p. 372-384. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-2699.2008.02005.x.
857) Šmarda, P. (2008): DNA ploidy level variability of some fescues (Festuca subg. Festuca, Poaceae) from Central and Southern Europe measured in fresh plants and herbarium specimens, Biológia; časopis Slovenskej akadémie vied, 63, p. 349-367. DOI: http://dx.doi.org/10.2478/s11756-008-0052-9.
858) Šmarda, O.; Müller, J., Vrána, J., Kočí, K. (2005): Ploidy level variability of some Central European fescues (Festuca subg. Festuca, Poaceae), Biológia; časopis Slovenskej akadémie vied, 60, p. 25-36. DOI: http://dx.doi.org/10.2478/s11756-008-0052-9.
859) Šmarda, P.; Šmerda, J.; Knoll, A.; Bureš, P.; Danihelka, J. (2007): Revision of Central European taxa of Festuca ser. Psammophilae Pawlus: morphometrical, karyological and AFLP analysis, Plant Systematics and Evolution, 266, p. 197-232. DOI: http://dx.doi.org/0.1007/s00606-007-0532-3.
860) Šmarda, P.; Bureš, P.; Horová, L.; Foggi, B.; Ross, G. (2008): Genome Size and GC Content Evolution of Festuca: Ancestral Expansion and Subsequent Reduction, Annals of Botany, 101, p. 421-433. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcm307.
861) Šmarda, P.; Knápek, O.; Březinová, A.; Horová, L.; Grulich, V.; Danihelka, J.; Veselý, P.; Šmerda, J.; Rotreklová, O.; Bureš, P. (2019): Genome sizes and genomic guanine+cytosine (GC) contents of the Czech vascular flora with new estimates for 1700 species, Preslia, 91, p. 117–142.Appendix 1-2. DOI: http://dx.doi.org/10.23855/preslia.2019.117.
862) Šmarda, P.; Bureš, P. (2006): Intraspecific DNA content variability in Festuca pallens on different geographical scales and ploidy levels, Annals of Botany, 98, p. 665-678. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcl150.
863) Šmarda, P.; Kočí, K. (2003): Chromosome Number Variability in Central European Members of the Festuca ovina and F. pallens Groups (Sect. Festuca), Folia Geobotanica. A Journal of Plant Ecology and Systematics, 38, p. 65-95. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF02803128.
864) Smettan, H. (1994): Das Alpen-Labkraut (Galium anisophyllon Vill.) in Baden-Württemberg, Jahreshefte, Gesellschaft für Naturkunde in Württemberg, 150, p. 129-136.
865) Smit, P.G. (1967): Taxonomical and ecological studies in Caltha palustris L. (preliminary report), Proceedings, Koninklijke Nederlandse Akademie van Wetenschappen. Series C, biological and medical sciences, 70, p. 500-510.
866) Smit, P.G. (1968): Taxonomical and ecological studies in Caltha palustris L, II, Proceedings, Koninklijke Nederlandse Akademie van Wetenschappen. Series C, biological and medical sciences, 71, p. 280-291.
867) Smit, P.G. (1973): A revision of Caltha (Ranunculaceae), Blumea; tijdschrift voor de systematiek en de geografie der planten (A journal of plant taxonomy and plant geography), 21, p. 119-150.
868) Smolka, A. (2017): Zytologische und genetische Studien an zwei heimischen Veilchenarten und ihren Hybriden (Viola epipsila Ledeb. und V. palustris L.). Besondere Lernleistung im Fach Biologie, Augustum-Annen-Gymnasium Görlitz, Görlitz, p. 1-56, [1-3].
869) Smolka, A. (2020): Zytologische und genetische Untersuchungen zu Viola epipsila, V. palustris und ihrer Hybride V. ×fennica, Kochia, 15, p. 45-55.
870) Snogerup, S. (1958): Studies in the Genus Juncus. Some cytological observations, Botaniska Notiser, 111, p. 249-250.
871) Sommer, S. (1990): Isozymanalyse zur Ermittlung genetischer Variabilität und mikroevolutiver Prozesse bei Centaurea sect. Jacea (Asteraceae). Dissertation zur Erlangung des Doktorgrades, Fachbereich Biologie/Chemie/Geowissenschaften der Universität Bayreuth, Bayreuth, p. [1-8], 1-133, I-XXIII, [1-3].
872) Španiel, S.; Marhold, K.; Filová, B.; Zozomová-Lihová, J. (2011): Genetic and morphological variation in the diploid–polyploid Alyssum montanum in Central Europe: taxonomic and evolutionary considerations, Plant Systematics and Evolution, 294, p. 1-25. DOI: http://dx.doi.org/10.​1007/​s00606-011-0438-y.
873) Španiel, S.; Marhold, K.; Thiv, M.; Zozomová-Lihová, M. (2012): A new circumscription of Alyssum montanum ssp. montanum and A. montanum ssp. gmelinii (Brassicaceae) in Central Europe: molecular and morphological evidence, Botanical Journal of the Linnean Society, 169, p. 378-402. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1095-8339.2012.01225.
874) Hügin, G. (1987): Infraspecific classification of Alyssum diffusum (Brassicaceae) in Italy, Willdenowia, 16, p. 453-478. DOI: https://doi.org/10.3372/wi.42.42104.
875) Speta, F. (1974): Chromosomenzahlen und Strukturen der Arbeitskerne diverser Angiospermen, Naturkundliches Jahrbuch der Stadt Linz, 20, p. 155-180.
876) Speta, F. (1984): Über Oberösterreichs wildwachsende Laucharten (Allium L, Alliaceae), Linzer biologische Beiträge, 16, p. 45-81.
877) Speta, F. (2000): Beitrag zur Kenntnis von Ornithogalum s.I. (Hyacinthaceae) in Oberösterreich, Beiträge zur Naturkunde von Oberösterreich, 9, p. 743-792.
878) Šrámková, G.; Kolář, F.; Záveská, E.; Lučanová, M.; Španiel, S.; Kolník; M.; Marhold. K. (2019): Phylogeography and taxonomic reassessment of Arabidopsis halleri – a montane species from Central Europe, Plant Systematics and Evolution, 10, p. 885–898.Supplementary Material 1-9. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s00606-019-01625-y.
879) Šrámková-Fuxová, G.; Záveská, E.; Kolář, F.; Lučanová, M.; Španiel, S.; Marhold, K. (2017): Range-wide genetic structure of Arabidopsis halleri (Brassicaceae): glacial persistence in multiple refugia and origin of the Northern Hemisphere disjunction, Botanical Journal of the Linnean Society, 185, p. 321-342. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/botlinnean/box064.
880) Stace, C.A. (2001): IOPB Chromosome Data 17, Newsletter, International Organization of Plant Biosystematists, 33, p. 22-26.
881) Stählin, A. (1928): Ein zytologischer Beitrag zur Frage nach den Verwandtschaftsbeziehungen der Saatluzerne (Medicago sativa L.), Pflanzenbau; Halbmonatsschrift für Saatwesen, Anbau und Pflege der Kulturpflanzen, 5, p. 152-153.
882) Stark, C.; Michalski, S.G.; Babik, W.; Winterfeld, G.; Durka, W. (2011): Strong genetic differentiation between Gymnadenia conopsea and G. densiflora despite morphological similarity, Plant Systematics and Evolution, 293, p. 213–226.Supplementary Material. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s00606-011-0439-x.
883) Starlinger, F. (2003): Karyosystematik und Verbreitung der Sippen des Polyploidkomplexes Molinia caerulea agg. (Poaceae). Dissertation zur Erlangung des Akademischen Grades Doktor der Philosophie, Fakultät für Naturwissenschaften und Mathematik der Universität Wien, p. 1-78.
884) Staudt, G. (1952): Cytogenetische Untersuchungen an Fragaria orientalis Los. und ihre Bedeutung für Artbildung und Geschlechtsdifferenzierung in der Gattung Fragaria L., Zeitschrift für induktive Abstammungs- und Vererbungslehre, 84, p. 361-416. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF00309475.
885) Staudt, G.; Schuster, M.; Büttner, R. (1997): Die Chromosomenzahl von Fragaria moschata Weston, Botanische Jahrbücher für Systematik, Pflanzengeschichte und Pflanzengeographie, 119, p. 93-97.
886) Staudt, G.; Schuster, M.; Büttner, R. (1997): Fragaria ×bifera Duch.: Origin and taxonomy, Botanische Jahrbücher für Systematik, Pflanzengeschichte und Pflanzengeographie, 119, p. 93-97. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/0006-8152/2003/0125-0053.
887) Štěpánková, J. (1993): Remarks on the karyogeography of Myosotis alpestris in Europe, Preslia, 65, p. 325-334.
888) Štěpánková, J. (1996): Karyological variation in the group Myosotis alpestris (Boraginaceae), Folia Geobotanica & Phytotaxonomica, 31, p. 251-262.
889) Stergianou, K.K.; Fowler, K. (1990): Chromosome numbers and taxonomic implications in the fern genus Azolla (Azollaceae), Plant Systematics and Evolution, 173, p. 223-239. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF00940865.
890) Stift, M.; Bregman, R.; Oostermeijer, J.G.B.; van Tienderen, P.H. (2010): Other tetraploid species and conspecific diploids as sources of genetic variation for an autotetraploid, American Journal of Botany, 97, p. 1858-1866.Appendix S1-S3. DOI: http://dx.doi.org/10.3732/ajb.1000048.
891) Stolze, K.V. (1925): Die Chromosomenzahlen der hauptsächlichsten Getreidearten nebst allgemeinen Betrachtungen über Chromosomen, Chromosomenzahl und Chromosomengröße im Pflanzenreich, Bibliotheca Genetica, 8, p. [1-3], 1-71.
892) Strandhede, S.-O. (1966): Morphological variation and taxonomy in European Eleocharis, subser. Palustres, Opera botanica a Societate Botanice Lundensi, 10, p. 1-187.
893) Strasburger, E. (1902): Ein Beitrag zur Kenntnis von Ceratophyllum submersum und phylogenetische Erörterungen, Jahrbücher für Wissenschaftliche Botanik, 37, p. 477-526, tab. IX-XI.
894) Strey, M. (1931): Karyologische Studien an Borraginoideae, Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 14, p. 682-730. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01917158.
895) Strobl, W.; Wittmann, H. (1988): Morphologische, soziologische und karyologische Studien an Anthriscus nitida (Wahlenb.) Hazsl., einer häufig übersehenen Art der heimischen Flora, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft, 59, p. 51-63.
896) Ströhlein, H.; Sundermann, H. (1972): Chromosomenzählungen bei Erdorchideen, Jahresbericht des Naturwissenschaftlichen Vereins in Wuppertal, 25, p. 75-80.
897) Stubbe, W. (1953): Genetische und zytologische Untersuchungen an verschiedenen Sippen von Oenothera suaveolens, Zeitschrift für induktive Abstammungs- und Vererbungslehre, 85, p. 180-209.
898) Styles, B.T. (1962): The taxonomy of Polygonum aviculare and its allies in Britain, Watsonia. Journal of the Botanical Society of the British Isles, 5, p. 177-214.
899) Suda, J.; Krahulcová, A.; Trávníček, P.; Rosenbaumová, R.; Peckert, T.; Krahulec, F. (2007): Genome Size Variation and Species Relationships in Hieracium Subgenus Pilosella (Asteraceae) as Inferred by Flow Cytometry, Annals of Botany, 100, p. 1323-1335.Supplementary Data. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcm218.
900) Suda, J.; Lysák, M.A. (2001): A taxonomic study of the Vaccinium sect. Oxycoccus (Hill) W.D.J. Kock (Ericaceae) in the Czech Republic and adjacent territories, Folia Geobotanica. A Journal of Plant Ecology and Systematics, 36, p. 303-320. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF02803183.
901) Suda, J.; Lysák, M.A. (2001): A taxonomic study of the Vaccinium sect. Oxycoccus (Hill) W.D.J. Koch (Ericaceae ) in the Czech Republic and adjacent territories, Folia Geobotanica. A Journal of Plant Ecology and Systematics, 36, p. 303-320. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF02803183.
902) Sveshnikova, I.N. (1927): Karyological studies on Vicia, Trudy po prikladnoi botanike, genetike i selektsii, 27, p. 37-72.
903) Takahata, Y.; Hinata, K. (1978): A description of the genetic stocks in subtribe Brassicineae by chromosome numbers and numerical characters, Cruciferae newsletter. EUCARPIA, 3, p. 47-51.
904) Tamura, M.N.; Schwarzbach, A.E.; Kruse, S.; Reski, R. (1997): Biosystematic studies on the genus Polygonatum (Convallariaceae) IV. Molecular phylogenetic analysis based on restriction site mapping of the chloroplast gene trnK, Feddes Repertorium. Zeitschrift für Botanische Taxonomie und Geobotanik, 108, p. 159-168. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/fedr.19971080306.
905) Teppner, H.; Ehrendorfer, F.; Puff, C. (1976): Karyosystematic Notes on the Galium palustre-Group (Rubiaceae), Taxon, 25, p. 95-97. DOI: http://dx.doi.org/10.2307/1220412.
906) Teppner, H.; Wetschnig, W. (1980): Zur Karyologie von Poa hybrida, P. chaixii, P. sylvicola und P. stiriaca (Poaceae) unter besonderer Berücksichtigung von B-Chromosomen, Phyton. Annales rei Botanicae, 20, p. 47-63.
907) Teuber, D.; Gregor, T. (2012): Festuca csikhegyensis und Festuca pallens in Hessen, Botanik und Naturschutz in Hessen, 25, p. 55-70.
908) 't Hart, H. (1987): Natural hybrids in Sedum (Crassulaceae). 1. Two new hybrids of S. series Rupestria and a new locality of S. X brevierei, Botanische Jahrbücher für Systematik, Pflanzengeschichte und Pflanzengeographie, 109, p. 1-16.
909) 't Hart, H.; Sandbrink, J.M.; Csikos, I.; van Ooyen, A.; van Brederode, J. (1993): The allopolyploid origin of Sedum rupestre subsp. rupestre (Crassulaceae), Plant Systematics and Evolution, 184, p. 195-206. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF00937435.
910) 't Hart, H.; van den Berg, A.J.J. (1982): The white-flowered European Sedum species. 2 Cytotaxonomic notes on S. album L. and S. gypsicolum Boiss. & Reuter, Proceedings, Koninklijke Nederlandse Akademie van Wetenschappen. Series C, biological and medical sciences, 85, p. 677-691.
911) Thiv, M. (1995): Vergleichende karyologische und biogeographische Untersuchungen an den Lungenkräutern (Pulmonaria L., Boraginaceae) Baden-Württembergs. Diplomarbeit, Fakultät für Biologie der Universität Tübingen, Tübingen, p. 1-49.
912) Thomas, R.G. (1958): Sexuality in Diploid and Hexaploid Races of Mercurialis annua L, Annals of Botany, 22, p. 55-72 . DOI: https://dx.doi.org/10.1093/oxfordjournals.aob.a083597.
913) Thompson, M.M. (1995): Chromosome Numbers of Rubus Species at the National Clonal Germplasm Repository, HortScience, 30, p. 1447-1452.
914) Tischler, G. (1918): Untersuchungen über den Riesenwuchs von Phragmites communis var. Pseudodonax, Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 36, p. 549-558, tab. XVII. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1918.tb07308.x.
915) Tischler, G. (1929): Revisionen früherer Chromosomenzählungen und anschließende Untnersuchungen, Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 8, p. 685-697. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF01916892.
916) Tischler, G. (1936): Die Bedeutung der Polyploidie für die Verbreitung der Angiospermen, erläutert an den Arten Schleswig-Holsteins, mit Ausblicken auf andere Florengebiete, Botanische Jahrbücher für Systematik, Pflanzengeschichte und Pflanzengeographie, 67, p. 1-36.
917) Tischler, G. (1937): Die Halligenflora der Nordsee im Lichte cytologischer Forschung, Cytologia; international journal of cytology, Fujii Jubil. Vol., p. 162-170.
918) Titz, W. (1969): Zur Cytotaxonomie yon Arabis hirsuta agg. (Cruciferae). IV. Chromosomenzahlen von A. saqittata (BERTOL.) DC. und A. hirsuta (L.) SCOP. s. str. aus Europa, Oesterreichische Botanische Zeitschrift. Gemeinnütziges Organ für Botanik, 117, p. 195-200. DOI: https://dx.doi.org/10.1007/BF01376936.
919) Titz, W. (1972): Evolution of the Arabis hirsuta group in central Europe, Taxon, 21, p. 121-128. DOI: http://dx.doi.org/10.2307/1219236.
920) Titz, W. (1978): Experimentelle Systematik und Genetik der kahlen Sippen in der Arabis hirsuta-Gruppe (Brassicaceae), Botanische Jahrbücher für Systematik, Pflanzengeschichte und Pflanzengeographie, 100, p. 110-139.
921) Titz, E. (1984): Die Arzneibaldriane Deutschlands mit besonderer Berücksichtigung Bayerns, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 55, p. 25-48.
922) Titz, E. (1979): "Valeriana versifolia" und andere oktoploide Arznei-Baldriane in den Schweizer Alpen und angrenzenden Regionen, Berichte der Schweizerischen Botanischen Gesellschaft, 89, p. 251-277. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-63121.
923) Titz, W.; Titz, E. (1991): Die diploiden und tetraploiden Arznei-Baldriane der Schweiz und angrenzender Regionen (Valerianaceae), Botanica Helvetica, 81, p. 169-188. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-64308.
924) Tomasello, S.; Oberprieler, C. (2017): Frozen ploidies: a phylogeographical analysis of the Leucanthemopsis alpina polyploid complex (Asteraceae, Anthemideae), Botanical Journal of the Linnean Society, 183, p. 211-235.Supplementary data. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/botlinnean/bow009.
925) Tomczyk, P.P.; Kiedrzyński, M.; Jedrzejczyk, I.; Rewers, M.; Wasowicz, P. (2020): The transferability of microsatellite loci from a homoploid to a polyploid hybrid complex: an example from fine-leaved Festuca species (Poaceae), PeerJ, p. 1-18. DOI: http://dx.doi.org/10.7717/peerj.9227.
926) Trávníček, P.; Jersáková, J.; Kubátová, B.; Krejčíková, J.; Bateman, R.M.; Lučanová, M.; Krajníková, E.; Těšitelová, T.; Štípková, Z.; Amardeilh, J.P.; Brzosko, E.; Jermakowicz, E.; Cabanne O.; Durka, W.; Efimov, O.; Hedrén, M.; Hermosilla, C.E.; Kreutz, K.; Kull, T.; Tali, K.; Marchand, O.; Rey, M.; Schiestl, F.P.; Curn, V.; Suda, J. (2012): Minority cytotypes in European populations of the Gymnadenia conopsea complex (Orchidaceae) greatly increase intraspecific and intrapopulation diversity, Annals of Botany, 110, p. 977-986.Supplementary Data. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcs171.
927) Trávníček, P.; Eliášová, A.; Suda, J. (2010): The distribution of cytotypes of Vicia cracca in Central Europe: the changes that have occurred over the last four decades, Preslia, 82, p. 149-163.Electronic appendix.
928) Trávníček, P.; Dočkalová, Z.; Rosenbaumová, R.; Kubátová, B.; Szeląg, Z.; Chrtek, J. (2011): Bridging global and microregional scales: ploidy distribution in Pilosella echioides (Asteraceae) in central Europe, Annals of Botany, 107, p. 443-454. DOI: http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcq260.
929) Treier, U.A.; Broennimann, O.; Normand, S.; Guisan, A.; Schaffner, U.; Steinger, T.; Müller-Schärer, H. (2009): Shift in cytotype frequency and niche space in the invasive plant Centaurea maculosa, Ecology, 90, p. 1366-1377.Appendix A-C. DOI: http://dx.doi.org/10.1890/08-0420.1.
930) Tremetsberger, K.; König, C.; Samuel, R.; Pinsker, W.; Stuessy, T.F. (2002): Infraspecific genetic variation in Biscutella laevigata (Brassicaceae): new focus on Irene Manton’s hypothesis, Plant Systematics and Evolution, 233, p. 163-181. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s00606-002-0189-x.
931) Turała-Szybowska, C. (1977): Karyological studies in Ranunculus fluitans Lam. from Thuringia and Vilnius with its surroundings, Acta Biologica Cracoviensia. Series Botanica, 20, p. 1-9.
932) Turesson, G. (1938): Chromosome Stability in Linnean Species, Lantbrukshögskolans annaler, 5, p. 405-416.
933) Tyler, T.; Jönsson, J. (2009): Ploidy level analysis of apomictic Hieracium (Asteraceae) reveal unexpected patterns and variation, Nordic Journal of Botany, 27, p. 490-502. DOI: http://dx.doi.org/0.1111/j.1756-1051.2009.00476.x.
934) Uhl, A. (2007): Erstnachweis von Minuartia mediterranea in Deutschland, Kochia, 2, p. 21-24.
935) Uhlemann, I. (1998): Taraxacum sectio Macrodonta M. P. Christiansen. A karyological analysis, Taraxacum Newsletter, 20, p. 2-5.
936) Uhlemann, I. (1999): Karyotaxonomical studies in Taraxacum sect. Hamata I, Taraxacum Newsletter, 21, p. 2-4.
937) Uhlemann, I. (2000): Chromosome number reports in Taraxacum I, Taraxacum Newsletter, 22, p. 1-3.
938) Uhlemann, I. (2001): Distribution of reproductive systems and taxonomic concepts in the genus Taraxacum F.H.Wigg. (Asteraceae, Lactuceae) in Germany, Feddes Repertorium. Zeitschrift für Botanische Taxonomie und Geobotanik, 112, p. 15-35. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/fedr.20011120105.
939) Uhlemann, I. (2004): New species of the genus Taraxacum (Asteraceae) from Germany I, Schlechtendalia. Veröffentlichungen aus dem Institut für Geobotanik und Botanischer Garten der Martin-Luther-Universität Halle-Wittenberg, 12, p. 119-136.
940) Uhlemann, I. (2009): Cytologische und morphologische Untersuchungen am Valeriana officinalis-Komplex in Sachsen und Brandenburg, Sächsische Floristische Mitteilungen, 12, p. 89-100.
941) Uhlemann, I. (2012): Cytologische Untersuchungen an Milchsternen der Ornithogalum umbellatum-Gruppe in Sachsen, Sächsische Floristische Mitteilungen, 15, p. 90-96.
942) Uhlemann, I.; Kirschner, J.; Øllgaard, H.; Štepáněk, J. (2007): Four New Species of Taraxacum sect. Ruderalia (Asteraceae-Cichorieae) from Central Europe and Scandinavia, Phyton. Annales rei Botanicae, 47, p. 103-121.
943) Uhlemann, I.; Ritz, C.M.; Peñailillo, P. (2009): Relationships in Taraxacum section Arctica s.l. (Asteraceae, Cichorieae) and allies based on nrITS, Feddes Repertorium. Zeitschrift für Botanische Taxonomie und Geobotanik, 120, p. 35-47. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/fedr.200811193.
944) Ulrich, K.; Naujoks, G.; Ewald, D. (2012): Polyploide Bäume für den Kurzumtrieb, A F Z / Der Wald, 15, p. 17-20.
945) Urbanska-Worytkiewicz, K. (1980): Cytological variation within the family of "Lemnaceae", Veröffentlichungen des Geobotanischen Institutes der Eidg. Techn. Hochschule, Stiftung Rübel, in Zürich, 70, p. 30-101. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-308615.
946) Urbanska-Worytkiewicz, K.; Landolt, E. (1974): Biosystematic investigations in Cardamine pratensis L. s.l : I. Diploid taxa from Central Europe and their fertility relationships, Berichte des Geobotanischen Institutes der Eidg. Techn. Hochschule, Stiftung Rübel, 42, p. 42-139. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-377678.
947) Vaarama, A. (1949): The chromosome number of Fumaria officinalis, Hereditas. Genetisk Arkiv, 35, p. 251-252. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1601-5223.1949.tb02873.x.
948) Vaarama, A.; Hiirsalmi, H. (1967): Chromosome studies on some old world species of the genus Scrophularia, Hereditas. Genetisk Arkiv, 58, p. 333-358. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1601-5223.1967.tb02161.x.
949) van Dijk, P.; Hartogt, M.; van Delden, W. (1992): Single cytotype areas in autopolyploid Plantago media L., Biological Journal of the Linnean Society, 46, p. 315-331. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1095-8312.1992.tb00867.x.
950) van Dijk, P.; Bakx-Schotman, T. (1997): Chloroplast DNA phylogeography and cytotype geography in autopolyploid Plantago media, Molecular Ecology, 6, p. 345-352. DOI: http://dx.doi.org/10.1046/j.1365-294X.1997.00199.x.
951) van Loon, J.C. (1984): Chromosome numbers in Geranium from Europe. II. The annual species, Proceedings, Koninklijke Nederlandse Akademie van Wetenschappen. Series C, biological and medical sciences, 87, p. 279-296.
952) van Loon, J.C. (1984): Chromosome numbers in Geranium from Europe. 1. The perennial species, Proceedings, Koninklijke Nederlandse Akademie van Wetenschappen. Series C, biological and medical sciences, 87, p. 263-277.
953) van Raamsdonk, L.W.D. (1986): Pollenfertility and Seed Formation in the Ornithogalum umbellatum/angustifolium Complex (Liliaceae/Scilloideae), Plant Systematics and Evolution, 149, p. 287-297. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF00983312.
954) van Raamsdonk, L.W.D. (1986): Biosystematic studies on the umbellatum-angustifolium complex of the genus Ornithogalum. (Liliaceae). II. Genome characterization and evolution, Nordic Journal of Botany, 6, p. 525-544. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1756-1051.1986.tb00453.x.
955) van Raamsdonk, L.D.W.; Heringa, J. (1987): Biosystematic studies on the umbellatum-angustifolium complex of the genus Ornithogalum. (Liliaceae). III. Morphological analysis, Nordic Journal of Botany, 7, p. 631-637. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1756-1051.1987.tb02031.x.
956) van Vierssen, W.; van Wijk, R.J. (1982): On the identity and autecology of Zannichellia peltata Bertol. in Western Europe, Aquatic botany; international scientific journal dealing with applied and fundamental research on submerged floating and emergent plants in marine and freshwater ecosystems, 13, p. 367-383. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/0304-3770(82)90072-9.
957) Velebil, J.; Trávníček, B.; Sochor, M.; Havlíček, P. (2016): Five new bramble species (Rubus, Rosaceae) in the flora of the Czech Republic, Dendrobiology, 75, p. 141-155. DOI: http://dx.doi.org/10.12657/denbio.075.014.
958) Viinikka, Y. (1976): Najas marina L. (Najadaceae). Karyotypes, cultivation and morphological variation, Annales Botanici Fennici, 13, p. 119-131.
959) Vít, P.; Krak, K.; Trávníček, P.; Douda, J.; Lomonosova, M.N.; Mandák, B. (2016): Genome size stability across Eurasian Chenopodium species (Amaranthaceae), Botanical Journal of the Linnean Society, 182, p. 637-649.Supplementary data. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/boj.12474.
960) Vít, P.; Douda, J.; Krak, K.; Havrdová, A.; Mandák, B. (2017): Two new polyploid species closely related to Alnus glutinosa in Europe and North Africa – An analysis based on morphometry, karyology, flow cytometry and microsatellites, Taxon, 66, p. 567-583.Supplementary data. DOI: http://dx.doi.org/10.12705/663.4.
961) Vitek, E.; Kiehn, M. (1990): Chromosomenzählungen an Euphrasia rostkoviana (Scrophulariaceae) und verwandten Taxa, Flora, 184, p. 31-41.
962) Vogel, G. (1936): Die männliche Haploid-Generation von Pinus silvestris und ihre Beziehung zur Hohlkornbildung. lnaugural-Dissertation zur Erlangung der Doktorwürde, Philosophische Fakultät der Friedrich-Wilhelm-Universität, Berlin, p. 1-51, [1].
963) Vogt, R.; Prem, C. (1985): Die Cochlearia pyrenaica-Gruppe in Zentraleuropa, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 56, p. 5-52.
964) Vogt, R.; Lippert, W. (1988): Zur Verbreitung der Gattung Cochlearia L. in Bayern, Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 59, p. 133-135.
965) Vogt, R.: Unpublished chromosome count
966) Volz, S.M.; Renner, S.S. (2008): Hybridization, polyploidy, and evolutionary transitions between monoecy and dioecy in Bryonia (Cucurbitaceae), American Journal of Botany, 95, p. 1297-1306.Appendix S1-S3. DOI: http://dx.doi.org/10.3732/ajb.0800187.
967) Weihe, von. K.; Reese, G. (1968): Deschampsia wibeliana (Sonder) Parlatore. Beiträge zur Monographie einer Art des Tidegebietes, Botanische Jahrbücher für Systematik, Pflanzengeschichte und Pflanzengeographie, 88, p. 1-48.
968) Wagenitz, G. (1974): Zur Bestimmung der Leucanthemum-Arten in Mitteleuropa nördlich der Alpen, Göttinger Floristische Rundbriefe. Zeitschrift für Arealkunde, Floristik und Systematik, 10, p. 80-85.
969) Walker, S. (1955): Cytogenetic studies in the Dryopteris spinulosa complex - I, Watsonia. Journal of the Botanical Society of the British Isles, 3, p. 193-209.
970) Walter, J.; Vekslyarska, T.; Dobeš, C. (2015): Flow cytometric, chromosomal and morphometric analyses challenge current taxonomic concepts in the Portulaca oleracea complex (Portulacaeae, Caryophyllales), Botanical Journal of the Linnean Society, 179, p. 144–156.Supporting Information 1-5. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/boj.12309.
971) Walters, S.M. (1967): Chromosome numbers of European species of Potentilla L. Grex Aureae Wolf, Acta Facultatis Rerum Naturalium Universitatis Comenianae. Botanica, 14, p. 7-11.
972) Walther, E. (1949): Zur Morphologie und Systematik des Arzneibaldrians in Mitteleuropa, Mitteilungen der Thüringischen Botanischen Gesellschaft, Beiheft, 1, p. 1-108.
973) Watson, P.J. (1958): The Distribution in Britain of Diploid and Tetraploid Races within the Festuca ovina Group, The New Phytologist; a British botanical journal, 57, p. 11-18. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1469-8137.1958.tb05914.x.
974) Wegener, K.-A. (1966): Ein Beitrag zur Zytologie von Orchideen aus dein Gebiet der DDR, Wissenschaftliche Zeitschrift der Ernst-Moritz-Arndt-Universität Greifswald. Mathematisch-naturwissenschaftliche Reihe, 15, p. 1-7.
975) Wegener, K.-A. (1976): Chromosomenzahlen aus Wurzelspitzen von Alchemilla-Arten der Sektionen Pentaphyllon Rothm. und Brevicaulon Rothm., Biologisches Centralblatt, 86, p. 771-792.
976) Wei, N.; Cronn, R.; Liston, A.; Ashman, T.-L. (2018): Functional trait divergence and trait plasticity confer polyploid advantage in heterogeneous environments, The New Phytologist; a British botanical journal, p. [1-12].Supporting Information; Fig.S1-Fig.S8, MethodsS1, TableS1-TableS8 . DOI: http://dx.doi.org/10.1111/nph.15508.
977) Weimarck, G. (1967): Apomixis and Sexuality in Hierochloë australis and in Swedish H. odorata on Different Polyploid Levels, Botaniska Notiser, 120, p. 209-235.
978) Weimarck, G. (1971): Variation and Taxonomy of Hierochloë (Gramineae) in the Northern Hemisphere, Botaniska Notiser, 124, p. 129-175.
979) Weimarck, G. (1982): B Chromosomes in Heracleum sphondylium s. lat. in Europe, Monographs in systematic botany from the Missouri Botanical Garden, 6, p. 293-303.
980) Weimarck, G. (1986): Hierochloe hirta subsp. praetermissa subsp. nova (Poaceae), an Asiatic E European taxon extending to N and C Europe, Symbolae Botanicae Upsaliensis, 27, p. 175-181.
981) Weinedel-Liebenau, F. (1928): Zytologische Untersuchungen an Artemisia-Arten, Jahrbücher für Wissenschaftliche Botanik, 69, p. 636-686.
982) Wenderoth, C.; Wenderoth, K. (1994): Zur Verbreitung karyologisch untersuchter Moosbeeren (Vaccinium oxycoccus s. l.) in Teilen Mitteleuropas (Mittel-und Süddeutschland sowie Österreich), Berichte der Bayerischen Botanischen Gesellschaft zur Erforschung der Heimischen Flora, 64, p. 147-155.
983) Westergaard, M. (1943): Cyto-taxonomical studies on Calamagrostis epigeios (L.) Roth, Ammophila arenaria (L.) Link, and their hybrids (Ammophila baltica (Flügge) Link), Biologiske skrifter, 2, p. 1-66.
984) Wetschnig, W. (1983): Zur Karyologie von Dactylis glomerata L. (Poaceae) am Südost-Rand der Alpen, Phyton. Annales rei Botanicae, 23, p. 271-305.
985) Wettstein, W. von; Propach, H. (1939): Sichtungsarbeit zur Birkenzüchtung, Züchter; Zeitschrift für theoretische und angewandte Genetik, 11, p. 279-280.
986) Wetzel, G. (1929): Chromosomenzahlen bei den Fagales, Botanisches Archiv; Zeitschrift für d. gesamte Botanik u. ihre Grenzgebiete, 25, p. 257-282, 1 tab. [1].
987) Wiebecke, W. (1989): Beiträge zur Karyosystematik von Euphorbia und verwandten Gattungen. Dissertation zur Erlangung des akademischen Grades Doktor der Philosophie, Universität Wien, Wien, p. 1-188, [1], [Abb. 1-46] [1-2].
988) Wieffering, J.H. (1983): Chromosome numbers, scutellarin and iridoid patterns in the genus Galeopsis L. (Labiatae), Botanica Helvetica, 93, p. 239-253. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-65250.
989) Wille, I. (1998): Symphytum officinale (Boraginaceae) in Süd- und Mittelhessen. Cytologisch-morphologische Untersuchungen zur Abgrenzung der Sippen, Botanik und Naturschutz in Hessen, 10, p. 87-119.
990) Wilschut, R.A.; Oplaat, C.; Basten Snoek, L.; Kirschner, J.; Verhoeven, K.J.F. (2016): Natural epigenetic variation contributes to heritable flowering divergence in a widespread asexual dandelion lineage, Molecular Ecology, 25, p. 1759-1768.Supporting Information. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/mec.13502.
991) Winge, Ö. (1940): Taxonomical and evolutionary studies in Erophila based on cytogenetic investigations, Compte rendu de l’Académie des Sciences, Paris. Série 3, Sciences de la vie, 23, p. 41-74, pl. [1-37].
992) Winterfeld, G. (2004): Molekular-cytogenetische Untersuchungen an Hafergräsern (Aveneae) und anderen Poaceae. Dissertation, Mathematisch-Naturwissenschaftlich-Technische Fakultät der Martin-Luther-Universität , Halle-Wittenberg, p. [1-5], 1-182 & [Anhang: 1-88].
993) Winterfeld, G. (2006): Molekular-cytogenetische Untersuchungen an Hafergräsern (Aveneae) und anderen Poaceae, Stapfia, 86, p. I-VII, 1-170.
994) Wittmann, H. (1985): Beitrag zur Systematik der Ornithogalum-Arten mit verlängert-traubiger Infloreszenz, Stapfia, 13, p. 1-116, Tab. 1.
995) Woess, F. von (1941): Experimentelle Untersuchungen zum Artbildungsproblem an Arenaria serpyllifolia und Arenaria marschlinsii, Zeitschrift für induktive Abstammungs- und Vererbungslehre, 79, p. 444-472. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF02362231.
996) Wolff, P. (1991): Das Wohlriechende Mariengras, Hierochloe odorata (L.) P. B., eine neue Pflanzenart für Rheinland-Pfalz, Pfälzer Heimat, 42, p. 171-178.
997) Wolkinger, F. (1967): Chromosomenzahlen von Pulmonaria maculosa, obscura und mollis, Phyton. Annales rei Botanicae, 12, p. 91-95.
998) Wörz, A. (1995): Über die Arten der Sektion Leptogalium Lange sensu Ehrendorfer der Gattung Galium (Rubiaceae) auf der Schwäbischen Alb, Jahreshefte, Gesellschaft für Naturkunde in Württemberg, 151, p. 439-450.
999) Wörz, A. (2001): On the intraspecific classification of Astrantia major L. (Apiaceae - Saniculoideae), Botanische Jahrbücher für Systematik, Pflanzengeschichte und Pflanzengeographie, 123, p. 303-319.
1000) Wulff, H.D. (1934): Untersuchungen an Pollenkörnern und Pollenschläuchen von Impatiens parviflora, Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 52, p. 43-47. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1934.tb01652.x.
1001) Wulff, H.D. (1936): Ein Vergleich zwischen Kultur- und Griffelpräparaten von Pollenschläuchen von Narthecium ossifragum, Beihefte zum Botanischen Centralblatt. Abt. 1, Anatomie, Histologie, Morphologie und Physiologie der Pflanzen, 54, p. 83-98.
1002) Wulff, H.D. (1937): Chromosomenstudien an der schleswig-holsteinischen Angiospermen-Flora. I, Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 55, p. 262-269. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1937.tb01253.x.
1003) Wulff, H.D. (1937): Karyologische Untersuchungen an der Halophytenflora Schleswig-Holsteins, Jahrbücher für Wissenschaftliche Botanik, 84, p. 812-840.
1004) Wulff, H.D. (1938): Chromosomenstudien an der schleswig-holsteinischen Angiospermen-Flora. II, Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 56, p. 247-254. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1938.tb01112.x.
1005) Wulff, H.D. (1939): Chromosomenstudien an der schleswig-holsteinischen Angiospermen-Flora. III, Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 57, p. 84-91. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1939.tb00500.x.
1006) Wulff, H.D. (1939): Chromosomenstudien an der schleswig-holsteinischen Angiospermen-Flora. IV, Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 57, p. 424-431. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1939.tb00535.x.
1007) Wulff, H.D. (1940): Über die Ursache der Sterilität des Kalmus (Acorus calamus L.), Planta. Archiv für wissenschaftliche Botanik. (Zeitschrift für wissenschaftliche Biologie. Abt. E), 31, p. 478-491. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/BF02090468.
1008) Wulff, H.D. (1950): Chromosomenstudien an der schleswig-holsteinischen Angiospermen-Flora. V, Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft, 63, p. 64-70. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1438-8677.1950.tb01482.x.
1009) Yeater, K.M.; Bollero, G.A.; Bullock, D.G.; Rayburn, A.L. (2004): Flow cytometric analysis for ploidy level differentiation of 45 hairy vetch accessions, The Annals of applied biology, 145, p. 123-127. DOI: http://dx.doi.org/10.1111/j.1744-7348.2004.tb00367.x.
1010) Zandee, M.; van Scheepen, J. (1981): Studies in the Holcus lanatus - Holcus mollis complex (Poaceae [ = Gramineae]) 1. A cytotaxonomic survey, Proceedings, Koninklijke Nederlandse Akademie van Wetenschappen. Series C, biological and medical sciences, 84, p. 479-491.
1011) Zander, B.; Wiegleb, G. (1987): Biosystematische Untersuchungen an Populationen von Ranunculus subgen. Batrachium in Nordwest-Deutschland, Botanische Jahrbücher für Systematik, Pflanzengeschichte und Pflanzengeographie, 109, p. 81-130.
1012) Zeltner, L. (1962): Deuxième contribution à l'étude cytologique des genres Blackstonia Huds. et Centaurium Hill. (Gentianacées), Bulletin de la Société Neuchâteloise des Sciences Naturelles, 85, p. 83-95. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-88920.
1013) Zeltner, L. (1970): Recherches de biosystématique sur les genres Blackstonia Huds. et Centaurium Hill, Bulletin de la Société Neuchâteloise des Sciences Naturelles, 93, p. 5-164. DOI: http://dx.doi.org/10.5169/seals-88999.
1014) Zhmyleva, A.P.; Kondo, K. (2006): Comparison of somatic chromosomes in some species of Chrysanthemum sensu lato in Russia, Chromosome Botany, 1, p. 13-22. DOI: http://dx.doi.org/10.3199/iscb.1.13.
1015) Ziegler, M. (1985): Karyologische Untersuchungen in der Ornithogalum nutans-Gruppe. Diplomarbeit, Fachbereich Biologie - Botanik - Philipps-Universität Marburg, Marburg, p. [1-3], 1-49, [1-2].
1016) Zonneveld, B.J.M. (2019): The DNA weights per nucleus (genome size) of more than 2350 species of the Flora of The Netherlands, of which 1370 are new to science, including the pattern of their DNA peaks, Forum Geobotanicum, 8, p. 24-78.Supplement. DOI: http://dx.doi.org/10.3264/FG.2019.1022.
1017) Zozomová-Lihová, J.; Málanová-Krásná, I.; Vít, P.; Urfus, P.; Senko, D.; Svitok, M.; Kempa, M.; Marhold, K. (2015): Cytotype distribution patterns, ecological differentiation, and genetic structure in a diploid–tetraploid contact zone of Cardamine amara, American Journal of Botany, 102, p. 1380-1395.Appendix S1-S7. DOI: http://dx.doi.org/10.3732/ajb.1500052.